当前位置:主页 > 硕博论文 > 医学硕士论文 >

n-3不饱和脂肪酸通过激活Nrf2-ARE信号通路对6-OHDA及α-synuclein帕金森病模型小鼠的保护作用

发布时间:2017-12-12 14:26

  本文关键词:n-3不饱和脂肪酸通过激活Nrf2-ARE信号通路对6-OHDA及α-synuclein帕金森病模型小鼠的保护作用


  更多相关文章: DHA n-3PUFAs 帕金森病 Nrf2-ARE α-突触核蛋白 氧化应激


【摘要】:[研究背景]帕金森病(Parkinson's Disease.PD)是世界第二大进行性神经退行性疾病,是发病最多的运动障碍疾病。PD的主要病理特征为黑质致密部部位多巴胺能神经元退行性变性和死亡以及包含错误折替α-突触核蛋白(α-synuclein,α-syn)的路易氏体的形成。目前PD的发病机制仍不清楚,研究表明有多种损伤机制参与其中,氧化应激、神经炎症、突触核蛋白稳态、线粒体功能障碍等都参与了 PD发病过程中多巴胺能神经元的损伤。Nrf2-ARE信号通路是细胞抵抗氧化应激损伤最重要的内源性通路之一。其在PD中所发挥的作用逐渐成为近年来的研究热点之一。Nrf2(Nuclear transcription factor NF-E2-related factor 2)转录升高时可诱导抗氧化反应元件(Antioxidant responsive element,ARE)相关蛋白转录,从而对抗细胞氧化应激反应产生的损伤,起到保护作用。正常生理状态下,Nrf2存在于细胞质中。当受到氧化应激时,Nrf2进入细胞核与特定的DNA位点ARE结合,启动相关保护蛋白如血红素加氧酶(Heme oxygenase,HO-1)以及谷胱甘肽(glutathione.GSH)相关调节酶的转录,以此产生对抗活性氧产生的氧化损伤。众多研究表明,氧化应激在PD发病过程中发挥重要作用。因此,对抗活性氧产生的损伤是PD的一个重要的治疗方向。Nrf2-ARE信号通路作为机体最重要的抗氧化通路,在对抗氧化应激损伤方面具有重大潜力。激活该通路可为PD的治疗提供新策略。寻找一种副作用少的高效Nrf2诱导剂可为PD病人提供更高的生活质量。n-3 不饱和脂肪酸(n-3 polyunsaturated fatty acids,n-3 PUFAs)是人体一种重要的脂肪酸,参与了大脑的发育以及视网膜的组成,n-3 PUFAs主要包括DHA(Docosahexaenoicacid)和 EPA(EicosapentaenoicAcid)等,其中 DHA 是脑内不饱和脂肪酸的主要组成部分,同时DHA也是神经细胞细胞膜的主要成分。研究表明,n-3 PUFAs的摄入可降低PD的发病风险。我们研究n-3 PUFAs是否是通过激活 Nrf2-ARE 信号通路对 6-hydroxydopamine(6-OHDA)及 α-syn 过表达 PD 模型发挥保护作用。[研究目的]研究n-3 PUFAs是否通过激活Nrf2-ARE信号通路对6-OHDA及α-syn过表达PD小鼠模型产生抗氧化应激和抗炎保护作用及作用机制。[研究方法]体外实验:1.给予不同浓度的DHA预处理SH-SY5Y细胞24 h,MTT法检测细胞的增殖情况,观察不同浓度的DHA是否会影响细胞自身的活性。2.分别给予SH-SY5Y和BV2细胞不同浓度的DHA预处理8 h或24 h,用western blot方法检测Nrf2及下游蛋白HO-1的表达情况,观察DHA是否可诱导Nrf2的蛋白表达。并在不同时间点用80 μM的DHA预处理细胞,观察Nrf2及下游蛋白HO-1的表达是否随时间的变化而变化。3.采用6-OHDA损伤SH-SY5Y细胞建立PD氧化应激损伤细胞模型,给予SH-SY5Y细胞不同浓度的DHA预处理8 h,加入100μM的6-OHDA损伤24 h,MTT法检测细胞存活率,流式细胞术检测细胞的凋亡情况和细胞内ROS的变化,采用TUNEL染色观察细胞凋亡情况,评价DHA对细胞的保护作用。4.给予BV2细胞不同浓度的DHA预处理8 h,加入LPS损伤24 h,用real time RT-PCR方法检测细胞内炎症相关因子mRNA水平,观察DHA是否可以减轻LPS诱导的炎症反应。5.采用Nrf2小干扰RNA干扰SH-SY5Y细胞Nrf2的表达,给予SH-SY5Y细胞不同浓度的DHA预处理8 h,用western blot检测Nrf2蛋白表达情况,验证Nrf2 siRNA的干扰效率。并给予SH-SY5Y细胞不同浓度的DHA刺激8 h,加入6-OHDA损伤24 h,使用流式细胞仪检测细胞的凋亡情况。评价DHA对SH-SY5Y细胞的保护作用是否仍然存在,以探索DHA是否是通过激活Nrf2实现其保护作用。体内实验:1.采用单侧纹状体立体定位注射6-OHDA建立PD氧化应激损伤动物模型。C57BL/6小鼠分为正常对照组、6-OHDA模型组、6-OHDA+ n-3 PUFAs 2 g/kg组及6-OHDA+ n-3 PUFAs 4 g/kg组,造模前提前灌胃给药35天。注射6-OHDA 1天后,无痛处死小鼠,取小鼠纹状体,用western blot检测Nrf2蛋白表达情况,观察n-3 PUFAs是否可诱导Nrf2蛋白表达。2.采用单侧纹状体立体定位注射6-OHDA建立PD氧化应激损伤动物模型。C57BL/6小鼠分为正常对照组、6-OHDA模型组、6-OHDA+ n-3 PUFAs 2 g/kg组及6-OHDA+ n-3 PUFAs 4 g/kg组,造模前提前灌胃给药35天。注射6-OHDA 21天后麻醉无痛处死小鼠,心脏灌流,取全脑进行冰冻切片,对黑质和纹状体部位进行酪氨酸羟化酶(tyrosine hydroxylase,TH)免疫组化染色,观察多巴胺能神经元及神经纤维损伤情况。。3.采用单侧纹状体立体定位注射6-OHDA建立PD氧化应激损伤动物模型。C57BL/6小鼠分为正常对照组、6-OHDA模型组、6-OHDA+ n-3 PUFAs 2 g/kg组及6-OHDA+ n-3 PUFAs 4 g/kg组,造模前提前灌胃给药35天。注射6-OHDA 7天及14天后,麻醉无痛处死小鼠,心脏灌流,取全脑进行冰冻切片,对黑质纹状体部位进行GFAP及IBA1荧光染色,观察小胶质细胞和星形胶质细胞的激活情况。4.采用单侧纹状体立体定位注射6-OHDA建立PD氧化应激损伤动物模型。C57BL/6小鼠分为正常对照组、6-OHDA模型组、6-OHDA+ n-3 PUFAs 2 g/kg组及6-OHDA+ n-3 PUFAs 4 g/kg组,造模前提前灌胃给药35天。注射6-OHDA 21天后麻醉无痛处死小鼠,取纹状体部位,用HPLC-MS法检测纹状体内多巴胺(dopamine,DA)及其代谢产物二羟苯乙酸(dihydroxyphnylacetic acid,DOPAC)及高香草酸(homovanillicacid,HVA)含量。5.采用单侧纹状体立体定位注射6-OHDA建立PD氧化应激损伤动物模型。C57BL/6小鼠分为正常对照组、6-OHDA模型组、6-OHDA+ n-3 PUFAs 2 g/kg组及6-OHDA+ n-3 PUFAs 4 g/kg组,造模前提前灌胃给药35天。分别于注射6-OHDA 7天、14天及21天后,对小鼠皮下注射阿扑吗啡诱导小鼠转圈,统计30 min内小鼠逆时针旋转圈数,评价模型小鼠的行为学改变。6.采用单侧黑质立体定位注射AAV-α-syn构建α-syn过表达PD动物模型。C57BL/6小鼠分为正常对照组、6-OHDA模型组、6-OHDA+ n-3 PUFAs 2 g/kg组及6-OHDA+ n-3 PUFAs 4 g/kg组,造模前提前灌胃给药14天。造模后继续灌胃给药21天。造模10周后麻醉无痛处死小鼠,取出全脑,进行冰冻切片,对黑质部位的多巴胺能神经元进行TH荧光染色,观察多巴胺能神经元状态。7.采用单侧黑质立体定位注射AAV-α-syn构建α-syn过表达PD动物模型。C57BL/6小鼠分为正常对照组、6-OHDA模型组、6-OHDA+ n-3 PUFAs 2 g/kg组及6-OHDA+ n-3 PUFAs 4 g/kg组,造模前提前灌胃给药14天。造模后继续灌胃给药21天。分别于造模后14天、21天对小鼠进行旷场试验,观察其行为学变化。[实验结果]1.DHA在0-200 μ范围内不影响SH-SY5Y细胞活性。2.DHA可诱导细胞内Nrf2及HO-1的表达,并且有一定的剂量依赖性。8 h的预处理可以使Nrf2的表达达到最高水平。3.DHA可以减少6-OHDA所致的SH-SY5Y细胞死亡,减轻细胞的凋亡和降低细胞内ROS水平;并且DHA可减轻LPS所致BV2细胞炎症反应。4.Nrf2 siRNA处理后,DHA的保护作用消失。5.n-3 PUFAs可在C57BL/6小鼠中诱导Nrf2表达。并可显著改善6-OHDA PD小鼠黑质纹状体通路多巴胺能神经元的损伤,减轻6-OHDA所致神经炎症,改善小鼠的运动缺陷。6.n-3 PUFAs可显著改善α-syn PD小鼠黑质多巴胺能神经元的减少,减轻小鼠脑内炎症反应,对小鼠的行为学也有一定改善。[结论]n-3 PUFAs可对6-OHDA及α-syn PD小鼠发挥神经保护作用,此作用可能通过激活Nrf2-ARE通路实现。
【学位授予单位】:山东大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2017
【分类号】:R742.5;R-332

【相似文献】

中国期刊全文数据库 前6条

1 李琳;张燕军;何鹏程;马文君;李远红;;Effect of n-3 PUFAs on arterial stiffness in patients with cardiovascular disease[J];South China Journal of Cardiology;2012年02期

2 汪芳;;n-3多不饱和脂肪酸类药物在心血管疾病中的临床应用进展[J];中国新药杂志;2011年15期

3 马晓磊;张向阳;黄延红;;海洋微藻PUFAs及合成酶基因在肿瘤预防和治疗中的应用[J];济宁医学院学报;2013年04期

4 段叶辉;印遇龙;李丽立;李凤娜;杨焕胜;孙效名;;n-3 PUFAs对脂质代谢和炎症-免疫的调节机制[J];生物技术通报;2012年03期

5 周婷婷;彭咏梅;王艳艳;马丽萍;元冬娟;康景轩;;不同智力水平人群n-3 PUFAs差异及膳食补充对体内脂肪酸组成的影响研究[J];中国儿童保健杂志;2011年02期

6 陈明锴;何东平;李道忠;胡怀友;瞿永华;陈涛;;微生物油脂PUFAs微囊粉胶囊剂的安全性观察[J];武汉大学学报(医学版);2007年03期

中国重要会议论文全文数据库 前4条

1 欧阳红生;逄大欣;聂代邦;;Fat-1的生物学功能及其研究进展[A];全国动物生理生化第十次学术交流会论文摘要汇编[C];2008年

2 张东平;李俊岭;余应新;张新宇;于志强;傅家谟;;不同部位鱼肉中PUFAs和含卤有机污染物共摄入益害研究[A];第六届全国环境化学大会暨环境科学仪器与分析仪器展览会摘要集[C];2011年

3 Xiu-Ju Zhao;Zhiguo Liu;;Application of Lipidomics in Food Supplements[A];第十二届全国脂质与脂蛋白学术会议论文汇编[C];2014年

4 潘建国;段怡;郑尧隆;李立群;何冰;;油菜花粉PUFAs对高血脂症大鼠血脂主要指标影响的研究[A];中国孢粉学分会七届一次学术年会论文摘要集[C];2005年

中国博士学位论文全文数据库 前2条

1 黄敏军;优化内源性多不饱和脂肪酸构成下调mTORC1活性延缓骨关节炎发病[D];南方医科大学;2014年

2 张晾;不同比率n-6/n-3多不饱和脂肪酸对动脉粥样硬化发展的干预机制探讨[D];山东师范大学;2009年

中国硕士学位论文全文数据库 前10条

1 邓张双;PUFAs真菌选育及营养生理研究[D];华中科技大学;2005年

2 张m:榛;ω-3 PUFAs对高脂诱导C57BL/6J小鼠肝损伤的影响[D];武汉轻工大学;2015年

3 付慧聪;母孕期和哺乳期n-3多不饱和脂肪酸缺乏对子代成年期小鼠脑神经发生及凋亡的影响[D];首都医科大学;2016年

4 丁珍;乳母乳汁多不饱和脂肪酸水平与FADS2基因多态性的关系研究[D];吉林大学;2016年

5 彭云峰;产EPA/DHA北极细菌的筛选及其聚酮合酶途径的研究[D];中国农业科学院;2016年

6 马爽爽;内源性ω-3 PUFAs增加对小鼠体重及肠道益生菌的影响[D];青岛大学;2016年

7 王丽芳;蚕蛹油PUFAs和ALA对肝细胞胆固醇代谢的影响及其分子机制[D];陕西师范大学;2016年

8 韩民兴;n-3不饱和脂肪酸通过激活Nrf2-ARE信号通路对6-OHDA及α-synuclein帕金森病模型小鼠的保护作用[D];山东大学;2017年

9 何东平;高产PUFAs菌株的选育及其制备工艺的研究[D];中国科学院武汉病毒研究所;2001年

10 王顺合;ω-3多不饱和脂肪酸在肠道内的分布、机体吸收和抗炎症作用[D];江南大学;2015年



本文编号:1282841

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/shoufeilunwen/mpalunwen/1282841.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户0e74f***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com