Ihh信号通路在咬合升高致TMJOA髁突软骨中的表达变化及作用机制研究
【学位单位】:山西医科大学
【学位级别】:硕士
【学位年份】:2020
【中图分类】:R782.6
【部分图文】:
山西医科大学硕士学位论文8第二步——口内手术:牙齿表面经过清洁处理后,将标准尺寸的铝片置于口腔的上颌后牙列。将3M流动树脂注入铝片围墙中,光固化以形成咬合垫。以形成上颌后牙的第一磨牙的咬合垫高度为1.5mm、第三磨牙的咬合垫高度为1mm的楔形咬合升高模型。第三步——修整边缘:切下铝板的多余部分,并使用特殊的正畸蓝胶封闭锐利的边缘(图1A)。图1A“三明治”咬合升高的具体步骤(3)动物处置咬合升高后的第3、7、14和28天,进行腹主动脉采血,离心后得到血清。随后用过量的水合氯醛杀死大鼠。取出大鼠的双侧髁突组织,将左侧髁突组织固定于多聚甲醛中,进行切片制作;将右侧髁突组织暂时保存在-80℃液氮中,随后进行基因检测。1.2.2大鼠血清Ihh的ELISA检测(1)六个标准品的配制:按照实验说明书的步骤对试剂盒内的标准品进行梯度稀释,随后开始配置六个标准品。(2)进行孔板设置及加样:分别设置三种孔板:标准品孔、空白样品孔及待测样品孔。待测样品孔的加样方法是每孔先加入40ul的样品稀释液,再加10ul的待测样品;标准品孔则需在酶标板内准确加样配置好的各种标准品,每孔50ul;空白样品孔中除了不加酶标试剂及待测样品以外,其余每步的操作步骤与其他两种孔板相同。(3)加酶:各孔加入100ul的酶试剂。(4)温育:使用封板膜进行小心地封板,将铺板置于37℃的恒温水浴箱内,开始计时30分钟的温育。(5)洗涤:小心地揭掉封板膜,垂直倒向地弃去孔板内的液体并拍干残液,随
山西医科大学硕士学位论文15运用单因素方差分析对组间的数据进行比较,将实验组咬合升高第三天与咬合升高第七天相比,以及实验组咬合升高第三天与咬合升高第十四天相比,发现各组间血清Ihh浓度的差异具有统计学意义(P<0.05)。而且,实验组咬合升高第七天血清内Ihh浓度与咬合升高第二十八天相比,以及实验组咬合升高第十四天血清内Ihh浓度与咬合升高第二十八天相比,差异都是具有统计学的意义(P<0.05)(表3)。表3Elisa检测出各组别血清中的Ihh浓度组别Ihh的血清浓度(ng/ml)n对照组第三天0.18±0.026实验组第三天0.19±0.01**#6对照组第七天0.19±0.026实验组第七天0.23±0.02****6对照组第十四天0.21±0.036实验组第十四天0.22±0.03***6对照组第二十八天0.18±0.026实验组第二十八天0.19±0.016总计48*:与对照组比较,P<0.05**:与实验组第七天比较,P<0.05#:与实验组第十四天比较,P<0.05***:与实验组第二十八天比较,P<0.05图2ELISA检测各组别血清内Ihh的浓度(ng/ml)
山西医科大学硕士学位论文16*:与对照组比较,P<0.05**:与实验组第七天比较,P<0.05#:与实验组第十四天比较,P<0.05***:与实验组第二十八天比较,P<0.052.3实验组大鼠与对照组大鼠TMJ髁突软骨的形态学比较形态学染色表明,实验组髁突软骨变性的严重程度与咬合升高发生的时间密切相关。但是在不同时间段的HE或番红O固绿染色中,对照组间的组织学切片均没有发现可检测到的差异,故我们随机选择对照组第三天、七天、十四天或第二十八天的一张切片进行图像采集。2.3.1实验组大鼠与对照组大鼠TMJ髁突软骨的HE染色比较HE染色结果显示,大鼠的髁突软骨由外向内依次可分为纤维层,增殖层,肥大层和软骨内骨化层。咬合升高三天的实验组切片显示出软骨细胞的簇集现象。之后,实验组的软骨层结构更加紊乱,细胞萎缩,细胞核被密集染色。增殖层中的软骨细胞出现排列紊乱,甚至一些细胞的核仁呈现完全消失。此外,软骨空腔增加,留下空白阴影,提示出现早期的骨关节炎软骨病变(图3)。图3咬合升高后不同时间段的髁突软骨HE染色A,B,C,D和E分别代表对照组、实验组第3天、实验组第7天、实验组第14天和实验组第28天髁突软骨的HE染色图像(×100)2.3.2实验组大鼠与对照组大鼠TMJ髁突软骨的番红O固绿染色比较番红O固绿染色表明,早期实验组髁突软骨的染色较深,中晚期颜色变浅。咬合升高第三天,实验组髁突软骨的肥大层内出现了软骨细胞的聚集。在第七天实验组
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