ACTN-4基因在口腔鳞状细胞癌表达及对SCC15细胞凋亡的影响研究
发布时间：2021-10-05 08:32
目的:探讨ACTN-4在口腔鳞状细胞癌组织表达及抑制其表达对癌细胞增殖、凋亡的影响。方法:qPCR检测ACTN-4在口腔鳞状细胞癌组织中的mRNA表达;免疫组化检测ACTN-4在口腔鳞状细胞癌组织蛋白表达情况;将口腔鳞状细胞癌SCC15细胞分为空白组（细胞无特殊的处理）、NC组（细胞中转染脂质体2000及NC siRNA）及si-ACTN-4（细胞中转染脂质体2000及设计合成的ACTN-4特异性siRNA）,Western blotting检测转染siRNA 48h后细胞ACTN-4、Bcl-2、Bax、AKT和p-AKT表达,流式细胞术检测细胞凋亡率;MTT法检测转染siRNA 24h、48h和72h的细胞增殖情况。结果:（1）ACTN-4在口腔鳞癌组织mRNA表达明显高于癌旁组织（P<0.05）。（2）ACTN-4定位于口腔癌细胞的胞浆或胞膜,以胞浆或胞膜中呈现出明显的黄色或棕褐色的阳性细胞,其阳性细胞表现出弥漫性分布;（3）ACTN-4特异性siRNA转染SCC15细胞48h后,si-ACTN-4组ACTN-4蛋白表达明显低于空白组（P<0.05）。（4）si-AC...
【文章来源】：山西医科大学山西省
【文章页数】：48 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
口腔癌组织中ACTN-4mRNA相对表达量
山西医科大学（博）硕士学位论文14图2口腔癌组织HE染色结果注：1A：口底中分化鳞状细胞癌HE染色×100；1B：口底中分化鳞状细胞癌HE染色×200；2A：舌高分化鳞状细胞癌HE染色×100；2B：舌高分化鳞状细胞癌HE染色×200；3A：左颊中分化鳞状细胞癌HE染色×100；3B：左颊中分化鳞状细胞癌HE染色×200；4A：牙龈高分化鳞状细胞癌HE染色×100；4B：牙龈高分化鳞状细胞癌HE染色×200图3ACTN-4蛋白在口腔鳞状细胞癌组织中的表达注：A：口底中分化鳞状细胞癌×400；B：右舌高分化鳞状细胞癌×400；C：左颊中分化鳞状细胞癌×400；D：牙龈高分化鳞状细胞癌×4002.2ACTN-4对SCC15细胞的影响2.2.1转染效果合成ACTN-4特异性siRNA，将其转染口腔鳞癌细胞，同时转染阴性siRNA及空白细胞作为对照，采用Westernblotting检测转染siRNA后的细胞中ACTN-4表达情况，结果表1和图4所示，与空白组相比，NC组ACTN-4蛋白表达无显著差异，si-ACTN-4组ACTN-4蛋白表达显著降低，差异有统计学意义（P＜0.05）。说明ACTN-4的抑制表达载体转染人口腔鳞癌SCC15细胞成功。
山西医科大学（博）硕士学位论文14图2口腔癌组织HE染色结果注：1A：口底中分化鳞状细胞癌HE染色×100；1B：口底中分化鳞状细胞癌HE染色×200；2A：舌高分化鳞状细胞癌HE染色×100；2B：舌高分化鳞状细胞癌HE染色×200；3A：左颊中分化鳞状细胞癌HE染色×100；3B：左颊中分化鳞状细胞癌HE染色×200；4A：牙龈高分化鳞状细胞癌HE染色×100；4B：牙龈高分化鳞状细胞癌HE染色×200图3ACTN-4蛋白在口腔鳞状细胞癌组织中的表达注：A：口底中分化鳞状细胞癌×400；B：右舌高分化鳞状细胞癌×400；C：左颊中分化鳞状细胞癌×400；D：牙龈高分化鳞状细胞癌×4002.2ACTN-4对SCC15细胞的影响2.2.1转染效果合成ACTN-4特异性siRNA，将其转染口腔鳞癌细胞，同时转染阴性siRNA及空白细胞作为对照，采用Westernblotting检测转染siRNA后的细胞中ACTN-4表达情况，结果表1和图4所示，与空白组相比，NC组ACTN-4蛋白表达无显著差异，si-ACTN-4组ACTN-4蛋白表达显著降低，差异有统计学意义（P＜0.05）。说明ACTN-4的抑制表达载体转染人口腔鳞癌SCC15细胞成功。
【参考文献】：
期刊论文
[1]阿托伐他汀调控MMP-9、Cleaved Caspase-3、Bcl-2和Bax蛋白表达对胃癌细胞增殖、周期和凋亡的影响[J]. 王玲,周巧直,王晓燕,吴云娜,樊爱平. 胃肠病学和肝病学杂志. 2018(11)
[2]PI3K/AKT信号通路调控MKP3表达促进胶质母细胞瘤细胞增殖的实验研究[J]. 侯兵,郭志旺,周涛,吴涛. 临床肿瘤学杂志. 2018(07)
[3]PTEN/PI3K/AKT信号通路在胃癌中的研究进展[J]. 张扬,熊建波,陈和平,李正荣. 重庆医学. 2018(19)
[4]中药降糖复方水提取物对KK-Ay糖尿病小鼠骨骼肌糖代谢PI3K/Akt信号通路的影响[J]. 洪金妮,黎巍威,张宁,富宏,王学美. 药物评价研究. 2017(10)
[5]硒化麒麟菜多糖对膀胱癌细胞生长、凋亡的作用及Bax、Bcl-2、caspase-3蛋白表达的影响[J]. 刘安,刘龙强,张建勋. 现代泌尿外科杂志. 2017(09)
[6]RNA干扰血管内皮生长因子受体2基因表达提高结肠癌细胞对奥沙利铂敏感性的研究[J]. 杨平,魏建昌,陈华翠,张通,曾山崎,曹杰. 中国医药导报. 2017(20)
[7]ACTN4在肝癌组织中的表达及其临床意义[J]. 于皎,王霄霞,唐宾. 现代肿瘤医学. 2017(16)
[8]CK2α通过PI3K/Akt/GSK-3β信号通路调控肺腺癌A549细胞的侵袭及迁移[J]. 吴爱兵,黎明春,麦宗炯,李姝君,杨志雄. 中国肺癌杂志. 2017(04)
[9]生物钟基因Period2对裸鼠卵巢癌移植瘤生长和血管生成抑制作用的机制研究[J]. 李翠丽,王朝霞,李莉,李风艳. 现代妇产科进展. 2017(03)
[10]RNAi沉默GTPBP4基因对结肠癌RKO细胞增殖及凋亡的影响[J]. 曾沁,刘勋,陈明,杨志惠. 肿瘤防治研究. 2017(01)
硕士论文
[1]沉默HK2基因表达对乳腺癌MDA-MB231细胞放疗敏感性影响的体外研究[D]. 张丹.安徽医科大学 2017
[2]PI3K/AKT信号转导通路与人舌鳞癌细胞TCA8113顺铂耐药的相关性研究[D]. 齐长娥.佳木斯大学 2014
[3]细胞骨架蛋白MICAL-L2和ACTN4在上皮性卵巢癌中的表达及其功能研究[D]. 朱琳艳.苏州大学 2014
[4]P-Akt和P-mTOR在口腔鳞状细胞癌中的表达及临床意义[D]. 王德勇.蚌埠医学院 2013
[5]姜黄素联合5-氟尿嘧啶对HepG2细胞PI3K/AKT信号通路及相关调控分子的影响[D]. 金萌.河北医科大学 2013
本文编号：3419370
【文章来源】：山西医科大学山西省
【文章页数】：48 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
口腔癌组织中ACTN-4mRNA相对表达量
山西医科大学（博）硕士学位论文14图2口腔癌组织HE染色结果注：1A：口底中分化鳞状细胞癌HE染色×100；1B：口底中分化鳞状细胞癌HE染色×200；2A：舌高分化鳞状细胞癌HE染色×100；2B：舌高分化鳞状细胞癌HE染色×200；3A：左颊中分化鳞状细胞癌HE染色×100；3B：左颊中分化鳞状细胞癌HE染色×200；4A：牙龈高分化鳞状细胞癌HE染色×100；4B：牙龈高分化鳞状细胞癌HE染色×200图3ACTN-4蛋白在口腔鳞状细胞癌组织中的表达注：A：口底中分化鳞状细胞癌×400；B：右舌高分化鳞状细胞癌×400；C：左颊中分化鳞状细胞癌×400；D：牙龈高分化鳞状细胞癌×4002.2ACTN-4对SCC15细胞的影响2.2.1转染效果合成ACTN-4特异性siRNA，将其转染口腔鳞癌细胞，同时转染阴性siRNA及空白细胞作为对照，采用Westernblotting检测转染siRNA后的细胞中ACTN-4表达情况，结果表1和图4所示，与空白组相比，NC组ACTN-4蛋白表达无显著差异，si-ACTN-4组ACTN-4蛋白表达显著降低，差异有统计学意义（P＜0.05）。说明ACTN-4的抑制表达载体转染人口腔鳞癌SCC15细胞成功。
山西医科大学（博）硕士学位论文14图2口腔癌组织HE染色结果注：1A：口底中分化鳞状细胞癌HE染色×100；1B：口底中分化鳞状细胞癌HE染色×200；2A：舌高分化鳞状细胞癌HE染色×100；2B：舌高分化鳞状细胞癌HE染色×200；3A：左颊中分化鳞状细胞癌HE染色×100；3B：左颊中分化鳞状细胞癌HE染色×200；4A：牙龈高分化鳞状细胞癌HE染色×100；4B：牙龈高分化鳞状细胞癌HE染色×200图3ACTN-4蛋白在口腔鳞状细胞癌组织中的表达注：A：口底中分化鳞状细胞癌×400；B：右舌高分化鳞状细胞癌×400；C：左颊中分化鳞状细胞癌×400；D：牙龈高分化鳞状细胞癌×4002.2ACTN-4对SCC15细胞的影响2.2.1转染效果合成ACTN-4特异性siRNA，将其转染口腔鳞癌细胞，同时转染阴性siRNA及空白细胞作为对照，采用Westernblotting检测转染siRNA后的细胞中ACTN-4表达情况，结果表1和图4所示，与空白组相比，NC组ACTN-4蛋白表达无显著差异，si-ACTN-4组ACTN-4蛋白表达显著降低，差异有统计学意义（P＜0.05）。说明ACTN-4的抑制表达载体转染人口腔鳞癌SCC15细胞成功。
【参考文献】：
期刊论文
[1]阿托伐他汀调控MMP-9、Cleaved Caspase-3、Bcl-2和Bax蛋白表达对胃癌细胞增殖、周期和凋亡的影响[J]. 王玲,周巧直,王晓燕,吴云娜,樊爱平. 胃肠病学和肝病学杂志. 2018(11)
[2]PI3K/AKT信号通路调控MKP3表达促进胶质母细胞瘤细胞增殖的实验研究[J]. 侯兵,郭志旺,周涛,吴涛. 临床肿瘤学杂志. 2018(07)
[3]PTEN/PI3K/AKT信号通路在胃癌中的研究进展[J]. 张扬,熊建波,陈和平,李正荣. 重庆医学. 2018(19)
[4]中药降糖复方水提取物对KK-Ay糖尿病小鼠骨骼肌糖代谢PI3K/Akt信号通路的影响[J]. 洪金妮,黎巍威,张宁,富宏,王学美. 药物评价研究. 2017(10)
[5]硒化麒麟菜多糖对膀胱癌细胞生长、凋亡的作用及Bax、Bcl-2、caspase-3蛋白表达的影响[J]. 刘安,刘龙强,张建勋. 现代泌尿外科杂志. 2017(09)
[6]RNA干扰血管内皮生长因子受体2基因表达提高结肠癌细胞对奥沙利铂敏感性的研究[J]. 杨平,魏建昌,陈华翠,张通,曾山崎,曹杰. 中国医药导报. 2017(20)
[7]ACTN4在肝癌组织中的表达及其临床意义[J]. 于皎,王霄霞,唐宾. 现代肿瘤医学. 2017(16)
[8]CK2α通过PI3K/Akt/GSK-3β信号通路调控肺腺癌A549细胞的侵袭及迁移[J]. 吴爱兵,黎明春,麦宗炯,李姝君,杨志雄. 中国肺癌杂志. 2017(04)
[9]生物钟基因Period2对裸鼠卵巢癌移植瘤生长和血管生成抑制作用的机制研究[J]. 李翠丽,王朝霞,李莉,李风艳. 现代妇产科进展. 2017(03)
[10]RNAi沉默GTPBP4基因对结肠癌RKO细胞增殖及凋亡的影响[J]. 曾沁,刘勋,陈明,杨志惠. 肿瘤防治研究. 2017(01)
硕士论文
[1]沉默HK2基因表达对乳腺癌MDA-MB231细胞放疗敏感性影响的体外研究[D]. 张丹.安徽医科大学 2017
[2]PI3K/AKT信号转导通路与人舌鳞癌细胞TCA8113顺铂耐药的相关性研究[D]. 齐长娥.佳木斯大学 2014
[3]细胞骨架蛋白MICAL-L2和ACTN4在上皮性卵巢癌中的表达及其功能研究[D]. 朱琳艳.苏州大学 2014
[4]P-Akt和P-mTOR在口腔鳞状细胞癌中的表达及临床意义[D]. 王德勇.蚌埠医学院 2013
[5]姜黄素联合5-氟尿嘧啶对HepG2细胞PI3K/AKT信号通路及相关调控分子的影响[D]. 金萌.河北医科大学 2013
本文编号：3419370
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