当前位置:主页 > 硕博论文 > 农业博士论文 >

溶藻弧菌中σ~E和群体感应系统介导的毒力调控机制

发布时间:2018-12-29 13:11
【摘要】:群体感应系统是一种广泛存在于不同种属细菌中,对细菌的各种生理机制起重要调控作用的信号转导机制。这种机制使细菌能像多细胞生物一样进行细菌细胞间的交流、通讯和信号转导。溶藻弧菌(Vibrio alginolyticus)是一种海水养殖业中重要的病原菌,也是一种重要的食源性病原菌。溶藻弧菌毒力因子的表达受环境因子(如温度和菌群密度)的严格调控,但是人们对其分子机制仍知之甚少。可替换σ因子RpoE在细菌中广泛参与调控毒力相关基因的表达并响应温度、盐度和渗透压等环境应激。本课题中,我们考察了RpoE对LuxR表达的调控作用。缺失突变株ArpoE在不同应激条件下存活能力明显弱于野生株,在斑马鱼中的定殖能力也显著减弱。在溶藻弧菌中,胞外碱性丝氨酸蛋白酶Asp的表达受温度调控,在37℃下表达量最高,而缺失株ArpoE在任何温度下都不表达Asp,表明RpoE参与温度影响毒力相关基因的调控过程。RpoE参与温度依赖性毒力调控作用,依赖于群体感应中枢调节子LuxR。EMSA、DNase Ⅰ footprinting和体外转录实验结果表明,RpoE直接结合到luxR启动子的-10区和-35区,激活该基因的转录。ChIP和EMSA实验结果表明,在30~37℃时,RpoE直接结合到luxR、rpoH和rpoE的启动子上,当温度继续升高至42℃时,RpoE对luxR启动子的亲和力减弱,但是对rpoH和rpoE的启动子仍然具有很高的亲和力。因此,RpoE以一种温度依赖的方式,通过对不同启动子亲和力的差异,实现RpoE在调控毒力基因的表达和响应温度应激之间的转换。温度介导RpoE释放至胞质中,启动毒力表达和/或应激响应依赖于蛋白酶DegS对反sigma因子RseA的切割作用。溶藻弧菌可以感知温度的变化,实现毒力表达和响应温度应激,并进行两种生理状态的转换。群体感应系统不但感知高细胞密度,实现对毒力的调控作用,而且还能感知低细胞密度的生理状态,对某些基因的表达实现调控作用。这两种不同的调控模式中,在高密度下主要依赖于LuxR蛋白进行调控,在低密度下主要通过AphA蛋白进行调控。通过RNA-seq方法鉴定出溶藻弧菌中有511个基因的表达受到了LuxR蛋白的调控,ChIP-seq方法在全基因组上鉴定出有128个基因被LuxR蛋白直接调控。用EMSA和qRT-PCR方法验证了上述组学实验结果,确定了LuxR结合在启动子序列上的结合模序。LuxR蛋白直接结合到T6SS2的启动上,调控T6SS的杀菌作用,LuxR蛋白还通过直接结合到aphA的启动子上,抑制该基因的表达。这些结果表明,LuxR蛋白是群体感应高密度下重要的调控因子,直接或间接调控很多基因的表达。本实验还考察了AphA蛋白的主要功能及其在低密度时参与的基因表达调控作用。AphA主要通过影响胞外蛋白酶、运动性、生物被膜以及在宿主体内定殖来实现对溶藻弧菌毒力的调控。AphA对碱性丝氨酸蛋白酶Asp的调控主要通过LuxR蛋白来实现。通过ChIP-seq方法,鉴定出溶藻弧菌全基因组上有48个基因在低密度下被AphA蛋白直接调控,确定了AphA结合在启动子序列上的结合模序。除了调控LuxR、sRNA、代谢和运动性相关基因的表达,AphA蛋白还直接结合到自身的启动子上抑制其自身的表达。这些结果表明,AphA蛋白是低密度下重要的群体感应调控因子。
[Abstract]:......
【学位授予单位】:华东理工大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2016
【分类号】:S941.4

【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 简纪常,叶剑敏,吴灶和;溶藻弧菌脂多糖对石斑鱼免疫功能的影响[J];水生生物学报;2004年01期

2 叶剑敏,简纪常,吴后波,吴灶和;溶藻弧菌脂多糖的化学成分分析及其对石斑鱼的毒性[J];水生生物学报;2004年05期

3 陈寅儿,金珊,王国良;鲈鱼溶藻弧菌病的血液生理生化指标研究[J];台湾海峡;2005年01期

4 鄢庆枇;陈强;邹文政;马u!;庄峙厦;王小如;;不同环境条件对溶藻弧菌粘附大黄鱼肠粘液的影响[J];水产学报;2006年02期

5 陈强;鄢庆枇;马u!;;溶藻弧菌致病性研究进展[J];海洋科学;2006年08期

6 鄢庆枇;陈强;马u!;庄峙厦;王小如;;病原性溶藻弧菌对大黄鱼鳃黏液黏附作用研究[J];海洋学报(中文版);2007年06期

7 彭喜春;张宁;冉艳红;桂博;陈龙;;海产品中溶藻弧菌的筛选及其致病因子的研究[J];现代食品科技;2008年04期

8 丁文超;胡健饶;史雨红;李明云;陈炯;;环介导恒温扩增技术快速检测溶藻弧菌[J];分子细胞生物学报;2009年01期

9 徐先栋;谢珍玉;王世锋;宣雄智;周永灿;;致病溶藻弧菌脂多糖对点带石斑鱼毒性和免疫原性的影响[J];海洋科学;2010年03期

10 郝聚敏;李晶蕊;汤学敏;郑江;黎中宝;鄢庆枇;;溶藻弧菌适配子亲和力测定条件的优化及其特异性研究[J];安徽农业科学;2011年32期

相关会议论文 前10条

1 郑江;汤学敏;;一种基于适配子的溶藻弧菌的应用检测技术[A];中国水产学会鱼病专业委员会2013年学术研讨会论文摘要汇编[C];2013年

2 鄢庆枇;陈强;邹文政;郭国军;;致病性溶藻弧菌对大黄鱼黏液的黏附研究[A];2007年中国水产学会学术年会暨水产微生态调控技术论坛论文摘要汇编[C];2007年

3 罗鹏;苏婷;胡超群;任春华;;溶藻弧菌的普通溶血现象及相关基因定位[A];2010年中国水产学会学术年会论文摘要集[C];2011年

4 邬长祥;吴灶和;简纪常;鲁义善;;不同地区溶藻弧菌的分子分型及毒力基因的分布特征研究[A];渔业科技创新与发展方式转变——2011年中国水产学会学术年会论文摘要集[C];2011年

5 梁海鹰;吴灶和;简纪常;鲁义善;蔡佳;;溶藻弧菌鞭毛蛋白双基因融合表达载体的构建[A];渔业科技创新与发展方式转变——2011年中国水产学会学术年会论文摘要集[C];2011年

6 陈偿;赵晶晶;刘助红;龙云映;邓益琴;;不同菌相溶藻弧菌的生理生化差异及其分子机制[A];中国水产学会鱼病专业委员会2013年学术研讨会论文摘要汇编[C];2013年

7 李正义;贾俊涛;曹际娟;徐彪;姜英辉;;一株分离自冻墨鱼的溶藻弧菌的鉴定及其低温下细胞脂肪酸的变化[A];第五届全国微生物资源学术暨国家微生物资源平台运行服务研讨会论文摘要集[C];2013年

8 陈偿;胡超群;张吕平;陈晓燕;沈琪;任春华;;海水养殖动物主要病原细菌—溶藻弧菌的分子生物学研究[A];甲壳动物学分会成立20周年暨刘瑞玉院士从事海洋科教工作55周年学术研讨会论文(摘要)集[C];2002年

9 姚邵云;简纪常;吴灶和;;溶藻弧菌主要外膜蛋白的纯化及其免疫保护性研究[A];中国水产学会第五届青年学术年会摘要集[C];2004年

10 王秀英;吴灶和;简纪常;鲁义善;;溶藻弧菌外膜蛋白W基因及克隆表达[A];2008年中国水产学会学术年会论文摘要集[C];2008年

相关博士学位论文 前6条

1 顾丹;溶藻弧菌中σ~E和群体感应系统介导的毒力调控机制[D];华东理工大学;2016年

2 钱荣华;溶藻弧菌主要毒力相关基因的克隆、表达及其免疫原性研究[D];浙江大学;2007年

3 盛丽莉;病原细菌溶藻弧菌和铜绿假单胞菌中致病相关系统的调控机制[D];华东理工大学;2012年

4 伦立民;文昌鱼谷丙转氨酶组织定位及在LPS和溶藻弧菌处理后急性炎症相关因子的变化[D];中国海洋大学;2008年

5 刘欢;溶藻弧菌群体感应系统元件Hfq和LuxT的功能研究[D];华东理工大学;2012年

6 孙星;养殖文蛤溶藻弧菌、颉颃菌的筛选与鉴定及其颉颃物质的研究[D];南京农业大学;2012年

相关硕士学位论文 前10条

1 张燕飞;溶藻弧菌双组份调控系统KdpDE减毒活疫苗的构建及其交叉免疫保护性研究[D];广东海洋大学;2015年

2 刘文竹;tssJ基因对溶藻弧菌运动性和生物膜形成的影响[D];海南大学;2015年

3 郭敏;溶藻弧菌可替换sigma因子σ~x的鉴定[D];华东理工大学;2016年

4 邱明生;溶藻弧菌HY9901Ⅲ型分泌系统效应蛋白的功能研究[D];广东海洋大学;2016年

5 李静;溶藻弧菌Ⅲ型分泌系统“针状样”毒力装置相关基因功能的研究[D];广东海洋大学;2016年

6 范雪亭;溶藻弧菌野生株和突变株ΔtssJ的差异表达序列分析及其TssJ多抗制备[D];海南大学;2016年

7 贺红红;溶藻弧菌双精氨酸蛋白转运系统和六型分泌系统的研究[D];华东理工大学;2011年

8 纪勇;用于溶藻弧菌快速检测的免疫磁珠技术的研究[D];集美大学;2011年

9 郑玉琦;溶藻弧菌耐四种抗生素的蛋白质组学研究[D];广东海洋大学;2011年

10 邬长祥;我国南方养殖海域溶藻弧菌的遗传多样性及部分毒力基因的分布特征研究[D];广东海洋大学;2012年



本文编号:2394870

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/shoufeilunwen/nykjbs/2394870.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户78b1b***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com