当前位置:主页 > 硕博论文 > 农业博士论文 >

小孢子培养结合诱变处理创制大白菜突变体及其功能基因组学研究

发布时间:2020-10-16 13:42
   大白菜(Brassica campestris ssp. pekinensis (Lour) Olsson)属于十字花科芸薹属A基因组,是我国广泛栽培的重要蔬菜作物。随着大白菜基因组序列信息的释放,其基因组学研究进入了功能基因组时代。鉴于突变体是植物功能基因组学研究的理想材料,本项研究以大白菜小孢子DH系‘FT’为试材,将游离小孢子培养技术与人工诱变相结合,建立了一种快速创制纯合突变体的新方法;以创制的大白菜突变体为试材,利用分子标记、基因定位以及转录组测序等方法,开展功能基因组学研究。主要研究结果如下:1.游离小孢子培养结合60Co-γ射线诱变处理,快速创制出5份大白菜纯合突变体用60Co-γ射线(20、40、60 Gy)诱变处理小孢子发育处于单核靠边期的花蕾,再从花蕾中分离小孢子进行培养,在获得的1,483株小孢子再生植株中,鉴定出467株变异植株。经M1代鉴定,筛选出5份突变体材料,突变率为0.34%。与野生型DH系'FT’相比,突变体材料分别表现出花瓣退化、生育迟缓、雄性不育、叶片黄化和不结球等特征性状。2.游离小孢子培养结合EMS(甲基磺酸乙酯)诱变处理,快速创制出7份大白菜纯合突变体用EMS (0.04%,0.08%,0.12%)诱变处理分离纯化后的小孢子,再进行小孢子培养,获得1,304株小孢子再生植株。经Mo和M1代鉴定,筛选出7份突变体材料,突变率为0.46%。与野生型DH系‘FT’相比,突变体材料分别表现出雌性不育、早抽薹、生长缓慢、叶片黄化和叶球变长等特征性状。3.利用分子标记和RNA-Seq技术,对花瓣退化突变基因pdm进行精细定位和候选基因预测花瓣退化突变体pdm的表现特征是花瓣皱缩不开展。遗传分析结果表明,该突变性状由一对隐性核基因控制。构建F2分离群体,选取1,419株表现突变性状的隐性纯合体作为定位群体,将突变基因pdm定位在A01染色体的Indelhsn26和SSRhsn123两个标记之间,遗传距离各为0.04 cM,物理距离约为285.2 kb。经与大白菜参考基因组序列比对,在目标区域内共有28个基因。基于野生型‘FT’与突变体pdm的比较转录组分析,预测Bra040093为突变基因pdm的候选基因.Bra040093编码过氧化物酶酰基辅酶A氧化酶1(ACX1),参与茉莉酸生物合成。该基因在野生型‘FT’与突变体pdm之间有2个SNPs差异。qRT-PCR分析结果表明,Bra040093在野生型'FT’中的表达量显著高于突变体pdm。4.利用RNA-Seq技术,筛选到与生育迟缓突变体drm表型相关的差异表达基因生育迟缓突变体drm的表现特征是生长发育缓慢,叶球较小,苗期伴有轻度的叶片黄化。遗传分析结果表明,该突变性状由一对隐性核基因控制。与野生型‘FT’相比,突变体drm叶片的叶绿素含量明显降低、叶绿体结构异常、光合速率下降、叶绿素荧光动力学参数发生变化。利用RNA-Seq技术,对野生型‘FT’与突变体drm的叶片进行比较转录组分析,共检测到338个差异表达基因。经GO和KEGG pathway分析,筛选到一些参与叶绿素降解和光合作用的差异表达基因,包括叶绿素酶(chlorophyllase)和1,5-二磷酸核酮糖羧化酶/加氧酶(Ribulose-1,5-bisphosphate carboxylase/oxygenase; Rubisco)。选取与叶绿素降解和光合作用相关的差异表达基因进行qRT-PCR分析,推测突变基因drm可能阻碍了叶绿素生物合成和叶绿体发育,进而影响植株的生长和发育。5.利用RNA-Seq技术,筛选到与雌性不育突变体fsm表型相关的差异表达基因雌性不育突变体fsm的表现特征是雌蕊败育,但是雄蕊正常可育,其它花器官表型也发生了较大变异。遗传分析结果表明,该突变性状由一对隐性核基因控制。与野生型‘FT’相比,突变体fsm的胚珠发育异常。利用RNA-Seq技术,对野生型‘FT’和突变体fsm的花蕾进行比较转录组分析,共检测到1,872个差异表达基因。经GO和KEGG pathway分析,筛选到一些参与胚珠发育的差异表达基因,包括PRETTY FEW SEEDS 2 (PFS2)和温度诱导的脂质运载蛋白(temperature-induced lipocalin; TIL),同时鉴定出多个与花发育和开花相关的基因。利用qRT-PCR技术,分析了其中的18个差异表达基因的表达模式,包括2个与胚珠发育相关的基因和16个与花发育和开花相关的基因,推测突变基因fsm可能影响了胚珠的发育,使之不能完成正常的受精过程。
【学位单位】:沈阳农业大学
【学位级别】:博士
【学位年份】:2016
【中图分类】:S634.1
【部分图文】:

叶片,材料,突变体,柱头外露


西阁團??跑麵画??图2-2?Mo代筛选出的变异檀株特征??Fig.?2-2?Mutant?charac化ristics?in?the?M〇?generation??a:白化苗;b:叶片边缘银齿;c:叶片(野生型);d:花瓣黄色(右)和野生型;e-f:花瓣数目变异;g:桂头外露(轻,??左);h:柱头外露(重);i:柱头外露(轻,中),柱头外露(重,右)和野生型??a:?A化ino?plantlets;?b:?Jagged?leaf?blades;?C:?Leaf?blades?(wild?type):?d:?Yellow?petals?(right)?and?wUd?type;?e_f:?Variable??number?of?petals:?g:?Slight?stigma?exposure?(left);?h:?Severe?stigma?exposure;?i:?Slight?stigma?exposure?(middle),?severe??stigma?exposure?(right)?and?wild?type??2.2.3突变体的特征特性??(1)叶片突变体??在Ml代,仅鉴定出1株叶片突变体,突变频率为0.07%。与野生型‘FT’相比,突??变体在整个生长发育周期中均表现为叶片黄化(图2-扣),而且花序(图2-化)和种芙??(图2-3C)也表现出黄化现象,经流式细胞仪鉴定此突变体为二倍体。??图2-3?M|代鉴定出的叶片突变材料??Fig.?2-3?Leaf?mutant??a:叶片黄化突变体(左)和野生型(右);b:叶片黄化突变体的花序(右

材料,突变体,柱头外露,野生型


西阁團??跑麵画??图2-2?Mo代筛选出的变异檀株特征??Fig.?2-2?Mutant?charac化ristics?in?the?M〇?generation??a:白化苗;b:叶片边缘银齿;c:叶片(野生型);d:花瓣黄色(右)和野生型;e-f:花瓣数目变异;g:桂头外露(轻,??左);h:柱头外露(重);i:柱头外露(轻,中),柱头外露(重,右)和野生型??a:?A化ino?plantlets;?b:?Jagged?leaf?blades;?C:?Leaf?blades?(wild?type):?d:?Yellow?petals?(right)?and?wUd?type;?e_f:?Variable??number?of?petals:?g:?Slight?stigma?exposure?(left);?h:?Severe?stigma?exposure;?i:?Slight?stigma?exposure?(middle),?severe??stigma?exposure?(right)?and?wild?type??2.2.3突变体的特征特性??(1)叶片突变体??在Ml代,仅鉴定出1株叶片突变体,突变频率为0.07%。与野生型‘FT’相比,突??变体在整个生长发育周期中均表现为叶片黄化(图2-扣),而且花序(图2-化)和种芙??(图2-3C)也表现出黄化现象,经流式细胞仪鉴定此突变体为二倍体。??图2-3?M|代鉴定出的叶片突变材料??Fig.?2-3?Leaf?mutant??a:叶片黄化突变体(左)和野生型(右);b:叶片黄化突变体的花序(右

材料,突变体,柱头外露,野生型


西阁團??跑麵画??图2-2?Mo代筛选出的变异檀株特征??Fig.?2-2?Mutant?charac化ristics?in?the?M〇?generation??a:白化苗;b:叶片边缘银齿;c:叶片(野生型);d:花瓣黄色(右)和野生型;e-f:花瓣数目变异;g:桂头外露(轻,??左);h:柱头外露(重);i:柱头外露(轻,中),柱头外露(重,右)和野生型??a:?A化ino?plantlets;?b:?Jagged?leaf?blades;?C:?Leaf?blades?(wild?type):?d:?Yellow?petals?(right)?and?wUd?type;?e_f:?Variable??number?of?petals:?g:?Slight?stigma?exposure?(left);?h:?Severe?stigma?exposure;?i:?Slight?stigma?exposure?(middle),?severe??stigma?exposure?(right)?and?wild?type??2.2.3突变体的特征特性??(1)叶片突变体??在Ml代,仅鉴定出1株叶片突变体,突变频率为0.07%。与野生型‘FT’相比,突??变体在整个生长发育周期中均表现为叶片黄化(图2-扣),而且花序(图2-化)和种芙??(图2-3C)也表现出黄化现象,经流式细胞仪鉴定此突变体为二倍体。??图2-3?M|代鉴定出的叶片突变材料??Fig.?2-3?Leaf?mutant??a:叶片黄化突变体(左)和野生型(右);b:叶片黄化突变体的花序(右
【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 王秀英;兰创业;赵军良;李改珍;;大白菜小孢子培养中的污染问题及防治对策[J];上海蔬菜;2018年06期

2 申书兴;侯喜林;张成合;;利用小孢子培养创建大白菜初级三体的研究[J];园艺学报;2006年06期

3 蒋武生;张晓伟;原玉香;姚秋菊;耿建峰;陈晓;徐明磊;;大白菜游离小孢子培养技术研究进展及应用[J];河南农业科学;2009年09期

4 ;沈阳农大冯辉团队诱变创制大白菜雄性不育突变体ftms并精细定位了突变基因[J];蔬菜;2018年12期

5 轩正英;;大白菜应用小孢子培养应注意的问题[J];北方园艺;2007年09期

6 张凤兰,赵岫云;用小孢子培养创建大白菜双单倍体永久作图群体[J];华北农学报;2003年04期

7 刘贯山;;烟草基因组学研究方法篇:1.烟草突变体的创制及其在功能基因组学研究中的应用[J];中国烟草科学;2011年01期

8 刘进平,郑成木;诱变结合植物组织培养在植物育种中的应用(综述)[J];上海农业学报;2004年01期

9 章云;冯辉;;大白菜×小白菜双单倍体永久作图群体的创建[J];沈阳农业大学学报;2012年04期

10 刘栓桃,赵智中,何启伟;大白菜生物技术研究进展[J];植物学通报;2004年06期


相关博士学位论文 前10条

1 黄胜楠;小孢子培养结合诱变处理创制大白菜突变体及其功能基因组学研究[D];沈阳农业大学;2016年

2 张俊祥;大白菜橙色叶球和拟南芥黄色幼叶突变体形成的分子机理[D];西北农林科技大学;2015年

3 张国庆;若干芸薹属植物种间杂交与植株再生及其遗传评价[D];浙江大学;2005年

4 杨立勇;Pol TCMS小孢子培养体系的建立与温敏基因的QTL定位[D];华中农业大学;2005年

5 王日欣;家蚕体形突变体樽蚕(tub)的定位克隆及分子机制探析[D];西南大学;2018年

6 王闵霞;水稻分蘖调控基因OsIAA16的功能研究和d14突变体遗传修饰因子的创制[D];中国农业科学院;2016年

7 张婷;LATERAL FLORET 1调控水稻“三花小穗”发育的分子机制研究[D];西南大学;2018年

8 李然红;白桦早衰突变体的鉴定与研究[D];东北林业大学;2018年

9 王平阳;家蚕类鹑斑突变体q-l突变基因的功能研究[D];江苏科技大学;2018年

10 柴丽红;PGRN突变体功能研究及PGRN相互作用分子的筛选与鉴定[D];陕西师范大学;2011年


相关硕士学位论文 前10条

1 代双艳;EMS诱变花蕾结合小孢子培养获得大白菜突变体的研究[D];河北农业大学;2013年

2 贾彦彦;离子注入诱变莲花突变体的鉴定及分子机理初探[D];河南师范大学;2011年

3 谢璐;低能N~+离子注入诱变的凤仙花突变体组织培养及其诱变机制分析[D];河南师范大学;2011年

4 宋燕妮;甜瓜突变体库的构建及黄化突变体鉴定和表型分析[D];东北农业大学;2015年

5 何晶;玉米耐旱突变体18-599 M后代的鉴定与分析[D];四川农业大学;2007年

6 许学;水稻日本晴和“9311”突变体诱变研究[D];安徽农业大学;2008年

7 姜帅港;山东省大白菜种植成本收益研究[D];山东农业大学;2017年

8 段岩娇;紫心大白菜花青素积累特性及相关基因表达分析[D];西北农林科技大学;2012年

9 刘欣;大白菜纤维形态及其成纸性能的研究[D];吉林大学;2007年

10 方斌;大白菜组织培养和遗传转化体系的建立的研究[D];广西大学;2001年



本文编号:2843333

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/shoufeilunwen/nykjbs/2843333.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户3a1d1***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com