高糖诱导Bim蛋白高表达而促肾近曲小管上皮细胞凋亡的机制探讨

发布时间：2017-04-28 23:03

  本文关键词：高糖诱导Bim蛋白高表达而促肾近曲小管上皮细胞凋亡的机制探讨，由笔耕文化传播整理发布。

【摘要】：前言随着人均寿命的延长和生活习惯的改变,糖尿病的发病率呈上升趋势,随之糖尿病肾病的发病率也在上升。目前,糖尿病肾病已成为引起终末期肾病(ESRD)的最常见病因,严重危害患者健康,并给家庭和社会带来沉重的经济负担。但针对该病的防治手段有限,远远不能满足临床需要,迫切需要寻找新的治疗靶点。传统的观念认为糖尿病肾病主要是肾小球病变,但是目前越来越多的证据提示肾小管病变也参与了该病的发生。我们课题组前期的研究显示：糖尿病肾病大鼠中肾小管的近端上皮细胞凋亡显著增加,而肾小球细胞凋亡少见,其凋亡增多与尿蛋白成正相关,用药物抑制肾小管上皮细胞凋亡能够明显逆转尿蛋白。对于2型糖尿病患者的肾脏活组织病理检查也证明：在早期的糖尿病肾病时即可见到肾小管细胞的凋亡。已有研究证实肾小球滤过正常时,尿液中已经可以检测到微量白蛋白。利用微刺技术研究糖尿病肾病早期大鼠,也发现肾小球白蛋白滤过率正常时,肾小管近端上皮细胞的重吸收功能已经降低。这就说明在糖尿病肾病发病机制中,肾小管的损害是在肾小球的损害之前的。阻断肾小管近端上皮细胞凋亡损伤是更接近源头的治疗靶点,疗效会更佳。但是高葡萄糖浓度环境下肾小管上皮细胞凋亡的研究目前还不多,其机制还未完全明了。现有的研究发现Bim蛋白与高糖诱导的某些细胞凋亡有关,如：视网膜毛细血管周细胞、胰岛细胞、心脏血管内皮细胞等,但尚未见到关于Bim蛋白在高糖所致肾小管细胞凋亡中的作用及其具体机制的研究。已有的研究表明,在其它多种肾脏疾病中自噬是抗细胞凋亡的保护性机制,但是对于糖尿病时肾小管上皮细胞自噬与凋亡的关系人们所知甚少。新近的研究显示Bim蛋白不仅有促进细胞凋亡的作用,还可以通过与Beclin 1的作用而抑制细胞自噬。也就是说Bim蛋白与细胞凋亡和自噬都有关。但是在高糖作用下的肾小管上皮细胞中,Bim、自噬、凋亡三者之间的关系究竟怎样,尚未见报道。目前,国内外针对糖尿病肾病发病机制中肾小管病变的研究才刚刚起步,尚无人涉及与肾小管有关的干预治疗,因此,明确糖尿病肾病中肾小管凋亡的分子机制,找到其关键的调节位点,并对其进行干预,有望改变当前的治疗现状,为糖尿病肾病研究提供新的思路和干预靶点。因此我们拟以人肾近曲小管上皮细胞(human proximal tubular epithelial cells,HK-2细胞)为对象,研究高糖环境下Bim与HK-2细胞凋亡的关系,并在此基础上,进一步研究自噬在其中所起的作用。方法和步骤1.第一步用不同糖浓度处理HK-2细胞,检测其中Bim蛋白的表达情况,及细胞凋亡和自噬的情况。1.1.细胞分组及培养将HK-2细胞系分为两组：NG组即正常糖对照组(5.5mmol/L D-无水葡萄糖+24.5mmol/L甘露醇)和HG组即高糖试验组(30.Ommol/L D无水葡萄糖)。在1640培养基、37℃及含5%C02条件下常规培养,拟设0h、24h、48h这三个检测时间点。1.2.检测Bim mRNA及蛋白表达利用RT-PCR法检测Bim mRNA表达、Western Blot法检测Bim蛋白表达。1.3.检测细胞凋亡的情况利用TUNEL法检测细胞凋亡的比例；利用Western Blot法检测active-caspase 3蛋白表达,以间接反映细胞凋亡的情况。1.4.检测细胞自噬的情况利用Western Blot法检测LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ的比值,反映细胞自噬的情况。2.第二步用转染Bim siRNA的方式下调Bim蛋白表达,用转染过表达质粒的方式上调Bim蛋白表达,在此基础上分析HK-2细胞凋亡、自噬的情况。2.1.细胞培养及分组NG组和HG组的HK-2细胞分别分为以下四组：siNC组(转染无意义siRNA)、 sibim组(转染Bim siRNA)、sibim+质粒组(转染Bim siRNA和siRNA-resistant质粒)、质粒组(转染Bim过表达质粒)2.2.检测Bim蛋白表达利用Western Blot法检测Bim蛋白表达。2.3.检测细胞凋亡的情况利用TUNEL法检测细胞凋亡比例；利用Western Blot法检测active-caspase3蛋白表达,间接反映细胞凋亡的情况。2.4.检测细胞自噬的情况利用Western Blot法检测LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ的比值,反映细胞自噬的情况。3.第三步在用Bim siRNA抑制Bim蛋白表达的前提下,下调自噬活性,分析HK-2细胞凋亡的情况。3.1.细胞培养及分组将HG组中的sibim亚组HK-2细胞分为两组：对照组即DMSO组(只加入3-MA的溶媒DMSO)和试验组即3-MA组(加入3-MA)。3.2.检测细胞凋亡的情况利用TUNEL法检测细胞凋亡比例；利用Western Blot法检测active-caspase3蛋白表达,间接反映细胞凋亡的情况。4.统计学处理采用SPSS 18.0统计软件处理数据。两组数据的比较应用学生t检验(student's t test)多组间的比较采用单因素方差分析(One-way ANOVA)。数据采用mean±SEM表示,检验标准α=0.05,P0.05时认为有统计学意义。结果1.高浓度葡萄糖组HK-2细胞凋亡和Bim蛋白表达增加对照组HK-2细胞不管是24小时还是48小时,其TUNEL染色阳性的细胞均微乎其微；而高糖组,其TUNEL染色阳性的细胞比例比对照组明显增多,而且随高糖培养时间的延长,凋亡细胞增多的趋势越来越明显。应用单因素方差分析的方法(One-way ANOVA)进行统计学分析,可以发现高糖组24小时的细胞凋亡率与对照组同时间的细胞凋亡率比较或是与同浓度0时的细胞凋亡率比较,均有显著性差异,其P值均0.05；而高糖组48小时的细胞凋亡率与对照组同时间的细胞凋亡率比较或是与同浓度0时的细胞凋亡率比较,也有显著性差异,其P值分别0.05和0.01。用western blot方法检测active-Caspase 3蛋白的表达量也可以发现相同的规律。高糖培养组HK-2细胞随着时间的延长,其BimEL蛋白的表达逐渐升高；而对照组24小时、48小时均未见BimEL蛋白的表达的增加。Bim蛋白的另一种主要异构体BimL的表达量也随着高糖培养的时间逐渐增加。用单因素方差分析处理数据统显示：高糖培养24小时HK-2细胞BimEL蛋白的表达较同等培养时间的对照组显著增加(P0.05),较高糖刺激前显著增加(P0.05)；HK-2细胞经高糖培养48小时其BimEL蛋白的表达较同等培养时间的对照组显著增加(P0.01),较高糖培养前显著增加(P0.01)。高糖培养下HK-2细胞Bim mRNA的水平明显增加。高糖培养24小时Bim mRNA相对水平较高糖培养前和相同时间点的对照组均显著增加(P值均0.01),高糖培养48小时Bim mRNA相对水平也较高糖培养前和相同时间点的对照组显著增加(P值均0.01)。用western blot法检测LC3蛋白的两种形式LC3-Ⅱ和LC3-Ⅰ及其比值(LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ)。发现不管是高糖组还是对照组,培养24小时还是48小时,LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ比值均较低,也就是说细胞的自噬始终处于一个较低的水平,高糖组的自噬较对照组并没有见到明显的改变。2.Bim蛋白对HK-2细胞凋亡和自噬的影响和无意义siRNA组(siNC组)组对比,有效的siRNA的转染(siBim组)将内源性Bim蛋白抑制到了原有水平的21%。在同样高糖培养48小时的条件下,下调Bim组(siRNA组)的HK-2细胞的凋亡比例没有增加；而siNC组细胞凋亡的比例明显增加。我们应用了siRNA-resistant Bim (Bim-res)质粒与siRNA共转染来排除脱靶现象。siBim组高糖培养后下降的凋亡细胞的比例,在给予Bim-res质粒后又恢复了,siBim加Bim-res组比siBim组凋亡细胞的比例显著增加(P0.05)。我们将正常糖对照的HK-2细胞分成两个小组,一组正常培养(对照组),一组转染BimEL蛋白过表达质粒,培养48小时后,用TUNEL法检测细胞凋亡情况,发现过表达质粒组细胞较对照组凋亡细胞的比例明显增加。我们在正常葡糖浓度培养的HK-2细胞中用siRNA下调Bim,培养48小时,可见LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ比值明显升高,由1.0上升到了2.0,而用拮抗siRNA的Bim-res质粒与siRNA共转染后,LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ匕值又下降到了1.1。在30mmol/L葡萄糖组,用siRNA下调HK-2细胞Bim,培养48小时,可见0时、24小时、48小时LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ比值分别是：1.0、2.2、3.0,意味着下调Bim后,随着时间的延长,细胞的自噬程度逐渐增强；而将Bim-res质粒与siRNA共转染后,0时、48小时LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ比值分别是：1.0、1.3,表明去除下调Bim的因素后,48小时的高糖培养,细胞自噬程度并没有明显的改变。3.抑制自噬增加了HK-2细胞的凋亡我们将转染了针对于Bim的siRNA的HK-2细胞,培养2天后,再给予高糖(30mmol/L葡萄糖)培养,然后分成两组：试验组(3-MA组)加用自噬抑制剂3-MA；对照组(DMSO组)只给予3-MA的溶媒二甲基亚砜(DMSO)。我们可以看到,试验组与对照组相比,不管是24小时还是48小时,细胞凋亡比例均明显增加(用TUNEL法检测)；Western Blot法检测active-caspase3表达也可以发现同样的规律。结论1.我们的研究首次通过体外细胞实验发现高浓度葡萄糖可以引起肾近曲小管上皮细胞凋亡增加,而且随着高糖培养的时间的延长,细胞凋亡逐渐增多。2.高糖通过上调Bim蛋白的表达,从而促进肾近曲小管细胞凋亡的,而Bim蛋白上调伴随着基因转录水平的上调。3.细胞基础状态下的自噬水平较低。高糖诱导Bim蛋白表达增加从而引起肾小管上皮细胞凋亡增加的机制与细胞自噬程度的改变关系不大,有可能是Bim通过Bax/Bak介导线粒体途径的细胞凋亡。4.通过下调Bim,HK-2细胞能够恢复被Bim抑制的自噬,从而发挥自噬对细胞的保护作用。也就是说,下调Bim蛋白的表达,除了直接影响凋亡途径外,还能增加细胞自噬,从而抑制细胞凋亡。5.抑制自噬本身可以增加细胞凋亡,此时Bim已被siRNA下调,所以这个过程是不依赖于Bim蛋白的。主要创新点1.我们的研究首次证明了高浓度葡萄糖可以通过上调Bim蛋白表达从而引起肾小管上皮细胞凋亡增加,并且随着高糖培养时间的延长,细胞凋亡的比例逐渐增加。2.用SiRNA下调Bim蛋白表达可以恢复被Bim抑制的细胞自噬活性,并具有减少细胞凋亡的保护性作用。3.自噬抑制剂3-MA在已经下调了Bim的HK-2细胞中重新触发了细胞凋亡,说明抑制自噬本身可以促进细胞凋亡,而这一过程是不依赖于Bim蛋白的。
【关键词】：Bim 肾近曲小管 凋亡 自噬 糖尿病肾病
【学位授予单位】：山东大学
【学位级别】：博士
【学位授予年份】：2015
【分类号】：R587.2;R692.9
【目录】：

• 中文摘要6-12
• ABSTRACT12-21
• 符号说明21-24
• 前言24-30
• 材料和方法30-43
• 结果43-49
• 讨论49-54
• 结论54-55
• 主要创新点55-56
• 附图56-62
• 参考文献62-74
• 致谢74-75
• 攻读博士学位期间发表的学术论文75-76
• 学位论文评阅及答辩情况表76-77
• 英语论文一77-94
• 英语论文二94-113
• 英语论文三113-131

【相似文献】

中国期刊全文数据库 前10条

1 王东生,袁肇凯,郭志华;细胞凋亡与中医药[J];中国中医药信息杂志;2000年12期

2 万晓艳,于苏国,郭玉芹,何庆;细胞凋亡与自身免疫性甲状腺疾病的研究进展[J];中国地方病防治杂志;2002年06期

3 祝伟民,林建棣,马晓东,段小平;运动与细胞凋亡[J];中国临床康复;2004年27期

4 王会玲,景文莉,张小红,高维娟;细胞凋亡与心肌缺血-再灌注损伤[J];承德医学院学报;2005年04期

5 梁薇;细胞凋亡的中药调节机制[J];四川中医;2005年11期

6 张松彪;细胞凋亡与细胞养生[J];中国科技产业;2005年01期

7 杨竹林,伍汉文;细胞凋亡调控因素有关基因的研究[J];国外医学(生理、病理科学与临床分册);1997年02期

8 刘恩梅,杨锡强;细胞凋亡及其影响因素[J];重庆医学;1998年01期

9 ;美开发调控细胞凋亡药物[J];中国肿瘤;1999年07期

10 管孝鞠,廖明阳;细胞凋亡在致畸中的作用[J];卫生毒理学杂志;2000年02期

中国重要会议论文全文数据库 前10条

1 陈颖丽;李前忠;;不同亚细胞位置的细胞凋亡蛋白质的结构特性分析[A];第十一次中国生物物理学术大会暨第九届全国会员代表大会摘要集[C];2009年

2 孙英丽;赵允;朱山;翟中和;;植物细胞凋亡及其机理的研究[A];中国细胞生物学学会第七次会议论文摘要汇编[C];1999年

3 刘二龙;袁慧;;锌与细胞凋亡[A];2003全国家畜内科学学术研讨会论文专辑[C];2003年

4 邱洁;高海青;;锌在细胞凋亡中的作用研究进展[A];山东省微量元素科学研究会第三届学术研讨会论文汇编[C];2006年

5 俞雅萍;;细胞凋亡的机制及途径和影响因素[A];华东六省一市生物化学与分子生物学学会2006年学术交流会论文集[C];2006年

6 于青;袁伟杰;姚建;;晚期糖基化终末产物引起足细胞凋亡的机制[A];2007年浙沪两地肾脏病学术年会资料汇编[C];2007年

7 季宇彬;尹立;汲晨锋;;调控细胞凋亡的线粒体因素[A];肿瘤病因学研究与中西医结合肿瘤综合诊疗交流研讨会论文集[C];2009年

8 吴经纬;汤长发;;运动中细胞凋亡的线粒体变化特征[A];湖南省生理科学会2006年度学术年会论文摘要汇编[C];2007年

9 蒲小平;李长龄;屠鹏飞;宋志宏;;中药肉丛蓉成分抗神经细胞凋亡的实验研究[A];第七届全国生化药理学术讨论会论文摘要集[C];2000年

10 江键;宋诚荣;崔黎丽;方影;王小平;;静电场对细胞凋亡作用的初步探讨[A];中国物理学会第九届静电学术年会论文集[C];2000年

中国重要报纸全文数据库 前10条

1 商东;“细胞凋亡”与临床医学[N];中国医药报;2001年

2 张志军;细胞凋亡与中医药[N];中国医药报;2002年

3 ;“细胞凋亡疗法”正逐步成为治疗癌症的新途径[N];中国高新技术产业导报;2002年

4 记者张建松;治疗癌症新途径：细胞凋亡疗法[N];科技日报;2002年

5 李明辉;“细胞凋亡”治癌症[N];医药导报;2002年

6 洪敏;细胞凋亡研究引人关注[N];中国医药报;2008年

7 陶春祥;细胞凋亡对心脏疾病的影响[N];中国医药报;2003年

8 本报实习记者 梁媛媛;薛定：发现癌症“开关”[N];北京科技报;2010年

9 高书明;诱导癌细胞凋亡[N];中国医药报;2004年

10 勇汇;中药诱导癌细胞凋亡研究进展[N];中国医药报;2002年

中国博士学位论文全文数据库 前10条

1 杨利;系列多氮类化合物的抗肿瘤活性研究[D];武汉大学;2012年

2 张浩;从分子、细胞和动物水平研究铅诱发氧化损伤及细胞凋亡的效应与机理[D];山东大学;2015年

3 何欣怡;家蚕微孢子虫（Nosema bombycis）抑制家蚕BmN细胞凋亡的功能研究[D];浙江大学;2015年

4 冯全服;从线粒体途径研究川芎嗪诱导HepG2细胞凋亡效应机制[D];南京中医药大学;2015年

5 张晓倩;高糖诱导Bim蛋白高表达而促肾近曲小管上皮细胞凋亡的机制探讨[D];山东大学;2015年

6 孙健玮;PTEN基因负调控Raf1磷酸化的作用及其对PC3细胞凋亡的影响[D];昆明医科大学;2014年

7 徐林艳;肿瘤细胞凋亡过程中TNFRSF10B和CFLAR调控机制研究[D];山东大学;2015年

8 柳惠斌;普通针毛蕨DEDC诱导肿瘤细胞凋亡信号传导机制研究[D];华中科技大学;2011年

9 姚展;细胞凋亡的多级分子调控机制[D];中国科学技术大学;2008年

10 季明杰;中药姜黄组分芳姜黄酮诱导肿瘤细胞凋亡的研究[D];山东大学;2005年

中国硕士学位论文全文数据库 前10条

1 曹璐璐;2,2’,4,4’-四溴联苯醚(BDE-47)对人胚肾细胞(HEK293)的毒理效应及作用机制研究[D];中国科学院烟台海岸带研究所;2015年

2 张薇;蒜头果蛋白诱导HepG-2细胞凋亡的研究[D];云南民族大学;2015年

3 唐建国;视黄醇X受体出核抑制对神经元细胞凋亡的影响[D];福建医科大学;2015年

4 安璐;3-氯-1,2-丙二醇细胞毒性及其诱导HEK293细胞凋亡途径探究[D];江南大学;2015年

5 杨翔;Procaspase-8的异常表达抑制TRAIL诱导肿瘤细胞凋亡[D];昆明理工大学;2015年

6 张昌明;I3C通过调控p53泛素化对喉癌Hep-2细胞凋亡的影响[D];延边大学;2015年

7 彭涵;共轭亚油酸对仔猪脂肪细胞凋亡的影响[D];西南大学;2015年

8 李立辉;ΔFosB通过MMP-9调控山羊乳腺上皮细胞凋亡的分子机制[D];西北农林科技大学;2015年

9 杨鑫铖;Hedgehog信号通路在大鼠急性胰腺炎腺泡细胞凋亡中的作用[D];河北医科大学;2015年

10 贾琼琼;MicroRNA-214对H_2O_2损伤L6骨骼肌成肌细胞增殖和凋亡的影响[D];河北医科大学;2015年

  本文关键词：高糖诱导Bim蛋白高表达而促肾近曲小管上皮细胞凋亡的机制探讨，，由笔耕文化传播整理发布。

本文编号：333704