猪细小病毒感染PK-15细胞前后microRNAs表达谱的研究及部分免疫功能的鉴定
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【摘要】:猪细小病毒(PPV)是引起母猪繁殖障碍性疾病的重要病原之一。此外,PPV还能引起仔猪腹泻、皮炎以及呼吸系统疾病,在猪非化脓性心肌炎、猪消瘦综合症和仔猪断奶多系统衰竭综合症等疾病中也发挥着重要的作用。全球普遍存在着猪细小病毒病,严重影响养猪业的发展,对其造成了巨大的经济损失。MicroRNAs是一类由内源基因编码的长度为19-24nt的单链RNA分子,其通过与靶基因mRNA 3'UTR相互作用,在病毒的侵染、细胞的增殖分化及凋亡、肿瘤的发生、体内平衡等许多生物学过程中起着重要的调控作用。目前,关于细胞miRNAs调节病毒感染的研究已有报道,其中包括乙型脑炎病毒,猪繁殖与呼吸综合症病毒,丙型肝炎病毒,A型流感病毒,猪瘟病毒等,但对于PPV感染PK-15细胞诱导细胞miRNAs表达却未见报道。为了探究细胞miRNAs在PPV感染中的作用,本试验通过测定PPV的TCID50,在刚贴壁的PK-15细胞中按照1个MOI接种PPV,并于感染24h后对细胞进行总RNA的抽提,通过Solexa高通量测序方法筛选出符合要求的miRNAs,并对PPV感染前后细胞miRNAs的表达量进行测定。同时根据PPV NS1的保守序列设计了一对荧光定量检测引物,建立了PPV荧光定量PCR方法。通过软件预测能靶向PPV基因组的miRNAs,并将其与免疫有关的miRNAs共同转染PK-15细胞,运用建立的荧光定量方法对其功能进行了验证。通过Solexa高通量测序结果表明,共有476条miRNAs在PPV感染前后表达量有所改变,其中240条miRNAs是对照组数据库所特有的,13条miRNAs是试验组数据库所特有的。对建立的细胞miRNAs表达谱进行分析发现,共有182条miRNAs差异表达,其中60条miRNAs属于上调表达,122条miRNAs属于下调表达。miR-21是表达量最大的,而miR-10b是差异最大的。对差异表达的miRNAs的靶标进行预测发现,C-JUN、MyD88、TLR7等与免疫有关的基因被预测出来,这结果表明这些差异表达的miRNAs可能参与PPV感染过程。通过实时荧光定量验证了随机挑选的10个差异表达的miRNAs,其结果全部与Solexa高通量测序结果致。所建立的荧光定量PCR最佳退火温度为59℃,其在1.59×109-1.59×104copies/μL可得到较为理性的标准曲线,相关系数R2为0.997,扩增效率为97.2%,且其特异性和重复性都很好,能被运用于miRNAs 功能试验的验证。PPV基因组靶标预测结果显示,miR-34a能靶向PPV NS1的编码区,且该编码区在PPV病毒中属于高度保守序列。荧光定量PCR结果显示,miR-34a能抑制PPV的复制,而其他的miRNAs则不能,但其具体的抑制机制仍需要进一步的研究。本试验成功构建了猪PK-15细胞的小RNA数据库,并建立了PPV感染前后细胞miRNAs的表达谱,对其差异表达的miRNAs及其靶标分析,有助于在miRNAs的层面上了解PPV感染机制以及宿主抗病毒免疫的分子机制。本试验同时也证实了miR-34a能抑制猪细小病毒的复制,这为PPV的防治提供了一条新思路。
【关键词】:猪细小病毒 miRNAs PK-15细胞 NS1基因
【学位授予单位】:四川农业大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2015
【分类号】:S858.28
【目录】:
- 中文摘要4-6
- Abstract6-8
- 缩略词8-12
- 第一部分 文献综述及研究的目的与意义12-26
- 一 文献综述12-25
- 1 细小病毒概述12
- 2 猪细小病毒概述12-18
- 2.1 猪细小病毒的病原学12-14
- 2.2 猪细小病毒的分子生物学特性14-16
- 2.2.1 猪细小病毒的基因组结构14-15
- 2.2.2 猪细小病毒的DNA复制15
- 2.2.3 猪细小病毒编码的蛋白及功能15-16
- 2.2.4 猪细小病毒的致病机制16
- 2.3 猪细小病毒的流行病学16-17
- 2.4 猪细小病毒的防制17-18
- 3 MicroRNAs的概述18-23
- 3.1 MicroRNAs的发现18
- 3.2 MicroRNAs的合成18-19
- 3.3 MicroRNAs的作用机制19-20
- 3.4 MicroRNAs的研究方法20-21
- 3.5 microRNAs基因预测和靶基因预测21
- 3.6 MicroRNAs与免疫21-23
- 4 microRNAs在宿主-病毒中的作用23-25
- 二 研究的目的与意义25-26
- 第二部分 试验部分26-54
- 第一章 PK-15细胞microRNAs数据库的建立及与PPV有关的microRNAs的分析26-40
- 1 材料26-27
- 1.1 细胞及毒株26
- 1.2 主要试剂及仪器26
- 1.3 主要试剂的配置26-27
- 2 方法27-31
- 2.1 PK-15细胞的传代培养27
- 2.2 TCID_(50)的测定27
- 2.3 PPV感染27
- 2.4 细胞总RNA的提取27-28
- 2.5 PK-15细胞microRNAs数据库的建立28-29
- 2.5.1 细胞样品RNA的提取及鉴定28
- 2.5.2 数据库的建立及高通量测序28
- 2.5.3 miRNAs的筛选28-29
- 2.6 miRNAs荧光定量的验证29-31
- 3 结果31-37
- 3.1 TCID_(50)检测结果31-32
- 3.2 PPV感染PK-15细胞32
- 3.3 RNA样品的检测32-33
- 3.4 高通量测序结果统计33-35
- 3.5 差异表达的miRNAs及其靶基因的预测35-36
- 3.6 荧光定量验证结果36-37
- 4 讨论37-39
- 5 小结39-40
- 第二章 PPV荧光定量方法的建立及部分miRNAs功能验证40-54
- 1 材料40-41
- 1.1 细胞、菌株及毒株40
- 1.2 生物试剂及器材40
- 1.3 主要试剂的配制40-41
- 2 方法41-45
- 2.1 PPV引物合成41
- 2.2 PPV DNA抽提41-42
- 2.3 标准质粒的构建42-43
- 2.3.1 荧光定量PCR扩增与产物的回收42
- 2.3.2 感受态细胞的制备42-43
- 2.3.3 连接与转化43
- 2.3.4 质粒的抽提与鉴定43
- 2.4 荧光定量PCR43-44
- 2.4.1 PPV荧光定量标准曲线的绘制43-44
- 2.4.2 重复性和特异性44
- 2.5 miRNAs靶标的预测与功能的验证44-45
- 2.5.1 靶标的预测及miRNAs筛选44
- 2.5.2 转染44-45
- 2.5.3 荧光定量检测45
- 3 结果45-51
- 3.1 PPV荧光定量引物检测45-46
- 3.2 重组质粒构建及测序46-47
- 3.3 荧光定量PCR标准曲线绘制47
- 3.4 荧光定量PCR重复性和特异性47-48
- 3.5 靶标预测与功能验证48-51
- 4 讨论51-52
- 5 小结52-54
- 参考文献54-66
- 致谢66-67
- 附表67-80
- 攻读学位期间发表的学术论文目录80
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本文编号:334306
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