抑制PARP-1改善衰老导致的内皮细胞功能紊乱
本文关键词:抑制PARP-1改善衰老导致的内皮细胞功能紊乱,,由笔耕文化传播整理发布。
【摘要】:研究背景:大量实验证实衰老导致的内皮细胞功能失调与活性氧(ROS)和活性氮(RNS)的过度产生和一氧化氮生物利用度降低有关。氧化应激最大的危害是损伤细胞DNA而且还能激活聚二磷酸腺苷核糖聚合酶-1(PARP-1)。持续氧化应激引起的DNA损伤可以导致PARP-1的过度激活。近期有实验表明PARP-1参与炎症反应。PARP-1的过度表达提示存在DNA损伤,这与内皮细胞功能失调有着紧密联系,但迄今为止,关于PARP-1和衰老内皮细胞功能联系的研究罕有报道,本研究利用自然衰老的小鼠,探讨抑制PARP-1在保护衰老内皮细胞功能中的作用。研究目的:1.探讨抑制PARP-1对衰老内皮功能的影响2.探讨抑制PARP-1改善内皮细胞功能的机制研究方法:1.动物模型的建立野生型雄性小鼠和PARP-1基因敲除小鼠分别被分成年轻组(2个月)和衰老组(12个月)并测量相关生化指标。2.动物血管功能检测把主动脉切成3mm-4mm的动脉环,每个环都连接到等力测距传感器上。血管环被去甲肾上腺素预先刺激,之后测定对乙酰胆碱和硝普钠的反应。3.实时定量PCR提取主动脉组织RNA并逆转录成cDNA,进行实时定量PCR,测定β-actin,PARP-1, eNOS, iNOS, Arg2的mRNA水平。4.细胞培养以及衰老细胞模型的建立使用AngⅡ刺激人主动脉内皮细胞诱导衰老,使用LY294002, BAY11-7082,和DPQ来抑制Akt,NF-KB and PARP-1的活性。使用β半乳糖甘酶染色来检测衰老模型。5.蛋白印迹提取各组细胞与各组组织的总蛋白,分别检测PARP-1, p-eNOS, eNOS, iNOS, AKT, p-AKT, p16, p21等蛋白的表达量。6.NO水平及ROS水平检测动物血清NO水平使用NO检测试剂盒及分光光度计进行检测和测量。主动脉和细胞ROS水平使用DHE染色试剂盒和DCFH-DA染色试剂盒进行测定。7.免疫荧光使用免疫荧光技术检测NF-kb的核转位情况。8.使用spss12进行数据统计处理,用均数±标准差的形式表示(mean±SD)。研究结果:1.PARP-1在不同年龄的小鼠中的表达变化:在野生型小鼠中,衰老组PARP-1表达水平升高,而PARP-1敲除组中则几乎没有表达。2.衰老组血管功能的改变:野生型衰老小鼠主动脉对乙酰胆碱的敏感性明显下降,而敲除PARP-1的衰老小鼠能明显改善主动脉对乙酰胆碱的敏感性,但是它们对硝普钠的反应却没有统计学意义。3小鼠血NO水平及主动脉组织ROS水平检测:相对于野生型年轻小鼠,野生型衰老小鼠NO水平、ROS水平明显下降,敲除PARP-1后能改善这种变化。4小鼠主动脉组织eNOS, p-enos(Thr454), iNOS及Arg2的蛋白表达:相对于野生型年轻小鼠,野生型衰老小鼠iNOS及Arg2的蛋白表达增高,敲除PARP-1后能改善这种变化,但是eNOS却没有改变。之后测定了p-enos(Thr454)的表达,与野生型年轻小鼠相比,野生型衰老小鼠p-enos(Thr454)的蛋白表达降低,敲除PARP-1后同样也能改善这种变化。5.衰老细胞模型的建立及检测衰老细胞PARP-1的表达:使用AngⅡ诱导主动脉内皮细胞,p半乳糖苷酶和P16 P21检测模型建立,发现AngⅡ诱导的细胞p半乳糖苷酶和P16 P21的表达显著升高,说明模型建立成功。与正常细胞相比,AngⅡ诱导的细胞PARP-1表达升高。6.检测细胞ROS水平和NO水平:AngⅡ诱导的细胞ROS表达增高而上清液NO水平下降。7.AngⅡ通过AKT通道改变PARP-1的表达:同时用AngⅡ和AKT通道抑制剂刺激细胞比单独使用AngⅡ刺激细胞,PARP-1的表达降低程度更明显。8.PARP-1抑制剂和NF-kb抑制剂能减少iNOS的表达增加P-eNOS (Thr454)的表达:与单独使用AngⅡ刺激细胞相比,同时用AngⅡ与PARP-1抑制剂和AngⅡ与NF-kb抑制剂刺激细胞后iNOS的表达明显降低,但是对eNOS的表达没有显著影响,P-eNOS (Thr454)的表达显著升高。9.PARP-1抑制剂通过阻止NF-kb的核转位减少iNOS的表达:免疫荧光显示AngⅡ能诱导NF-kb的核转位,但是加入了 PARP-1抑制剂后能阻止NF-kb核转位的发生。研究结论:1. PARP-1抑制剂能通过调节iNOS的表达来改善衰老引起的内皮细胞功能的失调2.抑制PARP-1的表达也许会成为治疗衰老血管功能失调的新的方向
【关键词】:衰老 内皮细胞功能 一氧化氮合酶 聚二磷酸腺苷核糖聚合酶1
【学位授予单位】:山东大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2015
【分类号】:R339.38
【目录】:
- 中文摘要6-9
- 英文摘要9-13
- 符号说明13-15
- 前言15-18
- 材料与方法18-32
- 结果32-37
- 讨论37-43
- 创新点与限制性43-44
- 结论44-45
- 附录45-53
- 参考文献53-59
- 致谢59-60
- 攻读硕士期间撰写与发表的论文60-61
- 附件61
【相似文献】
中国期刊全文数据库 前10条
1 黄神安;徐江晶;张吉翔;;PARP-1与HIV的关系[J];医学分子生物学杂志;2007年04期
2 李凡;廖志钢;;PARP的结构、功能及其与DNA损伤的关系[J];河南科技大学学报(医学版);2005年04期
3 王铁君;韩成敏;李星花;尹金植;陈玉丙;王红勇;李英普;;小鼠PARP-1基因RNAi表达质粒的构建与筛选[J];中国生物制品学杂志;2009年02期
4 魏全伟;石放雄;;Sirtuins与PARP-1在细胞凋亡过程中的相互作用[J];中国生物化学与分子生物学报;2012年01期
5 于孟斌;赵莉霞;杨予涛;杨志新;张莹莹;朱恒奇;周晓巍;黄培堂;;PARP10组织分布、相互作用蛋白及UV应激反应的分析[J];生物工程学报;2009年03期
6 杨其伟,陈雅文,张学,陈德风,张自立;PARP酶抑制剂未引起整合的外源LacZ基因的丢失[J];生物化学杂志;1997年02期
7 黄恺;多聚ADP核糖化酶与rTEF1a间的相互作用及其影响[J];临床心血管病杂志;2003年11期
8 白菊;郑绍成;蒋红燕;;ARI治疗糖尿病周围神经病变的疗效观察及作用机制与PARP、氧化应激关系的研究进展[J];科技风;2011年17期
9 龙石银;张彩平;乔新惠;黄良珠;田英;高细强;佟丽;;二苯乙烯苷对氧化诱导内皮细胞凋亡及Caspase-3和PARP表达的影响[J];生物化学与生物物理进展;2011年11期
10 ;[J];;年期
中国重要会议论文全文数据库 前8条
1 张铭湘;;PARP-1心血管疾病治疗新靶标[A];中华医学会第十三次全国心血管病学术会议专题报告专辑[C];2011年
2 朱枝祥;金晶;陈晓光;;多聚二磷酸腺苷核糖聚合酶(PARP—1)抑制剂筛选方法的建立及化合物筛选[A];全国第十二届生化与分子药理学学术会议论文集[C];2011年
3 田琳;宋珊珊;高艾;牛丕业;左昕;郭伟;;5Aza-dc调控石英恶性转化人支气管上皮细胞PARP-1基因表达及对细胞生长的抑制作用[A];全国生化/工业与卫生毒理学学术会议论文集[C];2010年
4 王旭艳;朱启华;朱虹;何俏军;徐云根;;PARP-1抑制剂的设计,合成及生物活性研究[A];2012长三角药物化学研讨会论文集[C];2012年
5 Chunmei Gong;Gonghua Tao;Linqing Yang;Jianjun Liu;Qingcheng Liu;Wenjie Li;Zhixiong Zhuang;;Methylation of PARP-1 promoter involved in the regulation of nano-SiO_2-induced decrease of PARP-1 mRNA expression[A];2012深圳市预防医学会学术研讨会论文汇编[C];2012年
6 江燕;洪顺家;;PARP在小鼠不同发育阶段卵泡中的表达及PJ34对小鼠超排卵的影响[A];中华医学会第三次全国绝经学术会议暨绝经相关问题学习班论文汇编[C];2011年
7 朱枝祥;金晶;陈晓光;;多聚(ADP-核糖)聚合酶-2(PARP2)抑制剂高通量筛选模型的建立[A];2013年全国老年性痴呆与相关疾病学术会议论文汇编[C];2013年
8 丁国宪;宗峰;程蕴琳;;PARP活性抑制对T淋巴细胞寿命影响的实验研究[A];第七届全国老年医学学术会议暨海内外华人老年医学学术会议论文汇编[C];2004年
中国博士学位论文全文数据库 前10条
1 王宵旰;PARP1 Val762Ala多态性降低酶活性[D];中国协和医科大学;2007年
2 王铁君;Chk-1和PARP-1 SiRNA辐射增敏的实验研究[D];吉林大学;2009年
3 李永进;PKC-MAPK信号通路及PARP在长期接触低剂量氯化甲基汞所致脑发育损伤中的作用[D];吉林大学;2006年
4 李丽;PARP-1调控LPS诱导的巨噬细胞HMGB1释放的机制及意义研究[D];华中科技大学;2012年
5 曹奕强;PARP-1在人脑胶质瘤中的表达及其抑制剂BMN-673对胶质瘤细胞治疗的增敏作用[D];中南大学;2014年
6 王静;PARP-1基因沉默对机械牵张诱导的人支气管上皮细胞炎性细胞因子表达的研究[D];山东大学;2014年
7 柯悠;Caspase-1介导的PARP1激活在肾小管间质纤维化中的作用及机制[D];华中科技大学;2014年
8 罗希;1型多聚ADP核糖合成酶调节心血管系统相关基因转录的机制研究[D];华中科技大学;2012年
9 朱武晖;PARP抑制剂5-AIQ对重症急性胰腺炎肺损伤的保护机制研究[D];武汉大学;2014年
10 黄丹;1型多聚ADP核糖合成酶与转录因子相互作用调控心血管系统基因转录的机制研究[D];华中科技大学;2009年
中国硕士学位论文全文数据库 前10条
1 张家平;孕鼠肢体缺血预处理对窘迫胎鼠复氧后海马神经元PARP-1及AIF表达的影响[D];福建医科大学;2015年
2 周莹莹;PARP-1/AIF介导的Parthanatos通路在戊二酸尿症大鼠纹状体损伤中的机制研究[D];郑州大学;2015年
3 樊彩芳;PARP-1/AIF通路介导戊二酸尿症Ⅰ型大鼠大脑皮质损伤的机制研究[D];郑州大学;2015年
4 张光昊;抑制PARP-1改善衰老导致的内皮细胞功能紊乱[D];山东大学;2015年
5 吕树卿;HGF/PARP-1信号通路调控卵巢癌细胞侵袭转移的机制研究[D];山东大学;2015年
6 李燕;PARP-1对卵巢癌血管生成、增殖的影响及其机制探讨[D];山东大学;2014年
7 刘琳琳;PARP-1活性参与NF-κB的基因转录调控的机制研究[D];东北师范大学;2011年
8 杨雪丽;PARP抑制剂的筛选与活性评价[D];江南大学;2014年
9 姜雪;PARP-1参与基因转录后mRNA稳定性调控的机制研究[D];东北师范大学;2012年
10 张晓宁;HSP70入核与PARP-1结合在肝缺血再灌注损伤中的保护作用[D];南华大学;2014年
本文关键词:抑制PARP-1改善衰老导致的内皮细胞功能紊乱,由笔耕文化传播整理发布。
本文编号:253279
本文链接:https://www.wllwen.com/xiyixuelunwen/253279.html