巨噬细胞极化中特异性分子表达的实验研究

发布时间：2021-08-16 16:03

　　目的探讨不同极化方法诱导下,巨噬细胞特异性分子标记的表达模式。方法提取小鼠骨髓原代细胞,利用巨噬细胞集落刺激因子（M-CSF,10 ng/m L）诱导7 d后,将细胞分为对照组、脂多糖（LPS,100 ng/m L）+干扰素γ（INF-γ,10 ng/m L）处理组、白细胞介素4（IL-4,20 ng/m L）和IL-13（10 ng/m L）处理组、LPS（100 ng/m L）和免疫复合物（IC,50 ng/m L）处理组、IL-10（10 ng/m L）处理组,通过Q-PCR和ELISA检测相关分子标记的表达情况,利用Western blot和流式细胞技术分别检测相关信号通路和细胞表面特异性分子的表达改变。结果 M-CSF诱导后,表达巨噬细胞特征性分子F4/80的细胞占（91.4±5.65）%。和其他组相比,CXC趋化因子9（CXCL9）的mRNA和蛋白水平在LPS联合INF-γ诱导的M1巨噬细胞中显著增高（均P<0.01）,CC趋化因子17（CCL17）的mRNA和蛋白水平在IL-4和IL-13诱导的M2a细胞中增加最明显（均P<0.01）,CCL1的mRNA和蛋白... 

【文章来源】：广东药科大学学报. 2020,36(01)

【文章页数】：7 页

【部分图文】：

流式检测原代巨噬细胞的比例

不同处理对巨噬细胞中相关分子mRNA水平的变化的影响

结果如图4所示，LPS能够显著诱导CD38蛋白的表达并定位在细胞膜上。本课题组也检测了作为M2巨噬细胞的常用分子标记CD206蛋白[1]。结果显示，IL-4+IL-13处理以及IL-10处理能够增强其表达。另外，LPS+IC能够刺激LIGHT蛋白的表达(图4)。结果表明，在流式分析中，CD38蛋白可作为M1巨噬细胞特异性的分子标记;LIGHT蛋白可作为M2b巨噬细胞特异性的分子标记。图4 流式细胞仪检测不同型别巨噬细胞中表面分子的表达

【参考文献】：
期刊论文
[1]伊马替尼抑制脂多糖诱导的巨噬细胞炎症表型[J]. 王乐旬,吴惠娟,张盛昔,杨潇,郭姣.  中山大学学报(医学版). 2019(05)
[2]CXCL13与恶性肿瘤的研究进展[J]. 朱路得,张国龙,王秀丽.  国际免疫学杂志. 2017 (05)



本文编号：3345979