当前位置:主页 > 医学论文 > 病理论文 >

子宫内膜巨噬细胞对血管内皮生长因子A的表达及胚胎着床的影响

发布时间:2017-11-24 20:31

  本文关键词:子宫内膜巨噬细胞对血管内皮生长因子A的表达及胚胎着床的影响


  更多相关文章: 子宫内膜 巨噬细胞 氯膦酸二钠的脂质体 宫腔内注射 胚胎着床 血管内皮生长因子A 巨噬细胞一氧化氮合成酶


【摘要】:研究背景胚胎着床是妊娠过程的主要限制步骤,也是胚胎发育伊始最重要的一个环节。胚胎着床是一个非常复杂而精密调控的母胎对话过程:一方面从卵母细胞透明带消失,到分化出合体滋养细胞,胚胎需要正常的发育;另一方面孕妇体内有足够数量的孕酮,在激素的刺激下,在人类通常为排卵后7天,子宫有一极短敏感期称为着床窗,允许胚胎着床。只有两方面同步发育且功能协调,胚泡经过转运、定位、黏附、和穿入,才能最终成功着床。在任一步骤发生异常,都可能导致着床失败。对子宫内膜组织学研究显示,局部血管生成处于高峰状态是围着床期子宫内膜最明显的标志之一,这种血管生成微环境的功能正常是胚胎着床、胎盘形成和妊娠维持的先决条件。近年来,巨噬细胞(macrophages, Mφ)于着床窗在子宫内膜的聚集和其可能参与着床的机制引起越来越多学者的兴趣。作为机体固有免疫的重要组成细胞,蜕膜巨噬细胞(decidual macrophage, dMcp)具有截然不同的表型,不能被简单归类为促炎M1或抗炎M2型,胚胎的着床造成内膜微环境的炎症状态,蜕膜免疫细胞大量募集,巨噬细胞约占其中20%。对反复着床失败的患者人工诱导无菌性炎症反应,巨噬细胞的明显聚集能促进胚胎着床,增加妊娠率,但其具体机制尚不明确。着床窗小鼠子宫内膜的微血管环境改变是子宫内膜容受性建立的关键。着床后子宫内膜巨噬细胞募集数量与局部血管生成具有相关性增长,均提示巨噬细胞在着床期子宫内膜可能发挥着除介导免疫耐受外更多的作用,例如维持蜕膜血管生成微环境平衡的潜在功能。恶性肿瘤的侵袭和生长在一定程度上与胚胎粘附和着床过程相似,恶性肿瘤的侵袭过程中,巨噬细胞参与了血管生成。当外周循环血中的单核细胞迁移到肿瘤组织后,在肿瘤微环境的作用下分化为肿瘤相关性巨噬细胞(tumor associated macrophages, TAM)。TAM被发现在维持肿瘤局部毛细血管网的平衡中的重要作用,TAM加速血管的生长增长是通过上调和释放促血管因子而得以实现。这些促血管因子也是肿瘤微环境巨噬细胞向M2极化或M1/M2混合表型的体现。TAM最为主要的促血管因子是血管内皮生长因子A (VEGF-A, or VEGF)。在很多类型的人类癌症中VEGF-A的水平与TAM密度相关。例如乳腺癌中,肿瘤的无血管缺氧区域,TAM能够产生VEGF-A。iNOS即巨噬细胞一氧化氮合成酶,在静止的巨噬细胞中检测不到NOS,但受免疫或炎症刺激激活的巨噬细胞诱导后,会有大量酶的形成,能持续而大量的释放一氧化氮(NO)。TAM的相关研究显示对血管新生的双向调节可能主要是通过对VEGF合成的影响间接实现的,也就是说NO与VEGF共同组成调节血管生成的功能蛋白质复合体,NO扮演着VEGF合成的上游调节因子的角色,这种调节功能与局部NO浓度梯度、氧分压、NO供体等因素紧密相关:低氧环境下少量NO可能通过丝裂原蛋白活化激酶(MAPK)或p38激酶通路上调VEGF基因的表达,其间可能还有低氧诱导蛋白(HIF).1和血红素氧化酶(HO).1的参与;但大量NO抑制VEGF基因的表达通路尚未明了。TAM在肿瘤微环境血管生成中的地位和靶标治疗已成为肿瘤基础研究中的热点问题。我们前期工作中发现,在妊娠小鼠胚胎着床后dMφ、VEGF-A、iNOS的表达强度显著增高,并与新生血管密度存在正相关关系,那么子宫巨噬细胞是否也参与了胚胎着床中蜕膜局部血管微环境的构建,进而参与胚胎着床?这是本课题的研究重点。迄今为止,尚未见到国内外对着床期子宫内膜巨噬细胞进行局部抑制的方法,用以研究其参与胚胎着床的机制。全身敲除巨噬细胞的小鼠存在卵巢血管网破坏、孕酮水平的下降,动情周期紊乱,下丘脑垂体性腺轴的功能受损,这可能是导致模型中胚胎着床失败的主要原因。卵巢的排卵功能及激素分泌功能在妊娠中的重要作用毋庸置疑,全身敲除巨噬细胞的模型不仅影响排卵而且干预了妊娠维持最为重要的孕激素,并不能说明巨噬细胞本身在着床关键期在子宫内膜局部发挥的特定作用,因此为避免卵巢及全身巨噬细胞的影响,我们希望通过建立小鼠着床期子宫局部巨噬细胞抑制模型,用以研究小鼠子宫内膜巨噬细胞对子宫内膜容受性及胚胎着床过程的影响。脂质体是一种人工合成的具有双分子层结构的封闭囊泡。利用能和细胞膜融合的特点,脂质体可作为载体将药物送入细胞内部,以达到靶向目的。水溶状态下的氯膦酸二钠不能跨越脂质体和细胞的磷脂双分子膜,当包裹于脂质体内后,即可被巨噬细胞特异性吞噬,巨噬细胞的膦酯酶破坏脂质体后氯膦酸二钠被释放到胞质内,达到特定浓度即可引起巨噬细胞的凋亡。有学者报道了氯膦酸二钠脂质体(Clodronate Liposomes,CL)局部作用于睾丸、卵巢的实验研究,均能有效剔除局部巨噬细胞。因此,本研究利用巨噬细胞特异性清除剂CL,建立巨噬细胞抑制小鼠模型;并在小鼠的着床关键期抑制子宫内膜局部的巨噬细胞,观察着床点和非着床点中其对VEGFA、iNOS表达影响,及其对胚胎着床的影响。深入研究围着床期子宫内膜血管生成微环境的调节机制,有助于进一步理解子宫内膜容受性的内涵,为探索干预子宫内膜容受性调节的新靶点提供更充分的科学依据,并能为推动着床障碍(反复体外受精.胚胎移植失败和习惯性流产)、不明原因性不孕的促血管生成治疗奠定实验基础,同时也为异常子宫出血、免疫避孕、器官移植研究提供新的思路,对于改善女性生殖能力及治疗不孕不育和复发性流产等相关疾病具有重要意义。目的建立子宫内膜局部抑制巨噬细胞的小鼠模型,观察着床期巨噬细胞抑制对胚胎着床影响,研究小鼠子宫内膜巨噬细胞对VEGFA、iNOS表达的影响,并研究子宫内膜着床位点与非着床位点巨噬细胞、VEGFA、iNOS的分布差异,进一步探讨其在胚胎着床中的作用。方法1)取成熟未育的昆明种小鼠为研究对象,阴道涂片观察细胞组织学变化,确定动情期小鼠。取动情期小鼠30只,随机分为两种注射途径给药,尾静脉注射(n=15)和宫腔内注射(n=15)。小鼠随机分为三组,实验组(n=5),对照组(n=5)和空白组(n=5)。尾静脉组中,实验组从尾静脉缓慢推注包裹有氯膦酸二钠的脂质体混悬液0.1ml/10g,对照组包裹有磷酸缓冲盐的脂质体(PBS liposomes, PL),空白组则注射灭菌PBS。宫腔内注射中,分别用微量注射器,手术直视下由卵巢侧宫角向宫腔内注射包裹有氯膦酸二钠的脂质体混悬液、包裹有PBS脂质体和灭菌PBS各15u1。2)于注射后48h,采用免疫组织化学法、流式细胞学方法检测射氯膦酸二钠脂质体对子宫F4/80+巨噬细胞的抑制效率。择优选取宫腔内注射建立小鼠着床期子宫内膜巨噬细胞抑制模型。3)取D3.5(雌鼠交配后次日晨阴道见栓为D0.5)孕鼠30只,随机分为三组,实验组(n=10)、对照组(n=10)和空白组(n=10)。使用微量注射器从近卵巢侧子宫角部向宫腔内缓慢注入15ul药物。实验组向左侧宫腔内注射CL,右侧注射包裹有PBS脂质体;对照组向双侧宫腔内注射PL;空白组向双侧宫腔内注射等体积灭菌PBS溶液作为空白对照。4)获取D5.5小鼠子宫和卵巢,台盼兰染色显示各单侧子宫的胚胎着床数,HE染色观察着床点组织形态变化。5)采用免疫组化技术检测子宫内膜、卵巢内巨噬细胞数量变化。流式细胞学方法检测子宫F4/80+CD11b+巨噬细胞相对百分比,验证注射CL对着床期子宫巨噬细胞的选择性抑制作用。6)免疫组织化学方法观察着床位点和非着床位点巨噬细胞、VEGFA、iNOS的表达变化。结果1)宫腔内注射后,HE染色显示小鼠子宫组织完整,腺体结构清晰,无炎性细胞浸润。2)在对动情期小鼠进行尾静脉注射、宫腔内注射后48h,免疫组织化学方法检测实验组的子宫内膜巨噬细胞数量与对照组(P0.01)、空白组(P0.01)相比均显著减少。两种方法在子宫内膜巨噬细胞的抑制程度无明显差异(P=0.788)。3)宫腔内注射后48h,实验组的卵巢巨噬细胞数量与对照组、空白组相比无明显差异(P=0.762)。采用尾静脉途径注射脂质体后,对照组、空白组与宫腔内注射结果相似,但实验组卵巢内巨噬细胞却有所下降,差异有统计学意义(P0.01)。尾静脉注射相比宫腔内注射对卵巢巨噬细胞有明显抑制作用(P0.05)。4)流式细胞学检测动情期小鼠尾静脉注射、宫腔内注射后48h,实验组F4/80+巨噬细胞较对照组及空白组均显著下降,差异有统计学意义。5)着床期宫腔内注射CL后,免疫组织化学检测方法检测到着床位点上,实验组左侧注射CL的子宫内膜巨噬细胞数(22.50±=8.15)较PL侧(83.60±12.15)显著降低,较对照组左侧和空白组左侧也显著降低(P0.05),三组的右侧则无明显差异。非着床位点巨噬细胞数变化与之类似。着床位点的巨噬细胞均高于非着床位点,巨噬细胞具有聚集于着床位点的趋势。6)实验组左侧子宫宫腔内注射CL后48h,对小鼠子宫单细胞悬液用流式细胞学方法检测F4/80+CD11b+巨噬细胞相对比例较实验组注射PL侧、对照组和空白组的各侧有显著下降,抑制率为74%。7)着床期宫腔内注射CL后,实验组卵巢的巨噬细胞数量与对照组、空白组相比无明显差异。8)当抑制了着床期间子宫局部的巨噬细胞后,胚胎着床数显著降低,胚胎着床被部分抑制。实验组左侧注射CL后平均胚胎着床数为2.20±1.81个,显著低于实验组右侧注射PL、空白组左侧及对照组左侧,平均着床位点分别:5.10±1.91个,5.00±2.21,5.80±2.25(P0.05),三组右侧无明显差异。9)在实验组注射CL侧仅有的胚胎着床位点,虽可见胚胎结构,但宫腔未闭合,蜕膜化范围较实验组PL侧缩小。PL侧小鼠着床位点上皮细胞明显水肿,间质细胞明显蜕膜化,宫腔闭合。10)在着床位点,随着实验组注射CL侧的子宫巨噬细胞受到抑制,子宫内膜的VEGFA蛋白表达明显低于实验组右侧注射PL(P0.05),非着床点实验组注射CL侧的子宫VEGFA的表达较PL侧虽有所降低,但差异无统计学意义(P=0.069),实验组两侧的VEGFA表达在着床位点的均高于非着床位点(P0.05)。11)实验组注射CL侧和PL侧子宫内膜的iNOS阳性细胞数量无明显差异(P=0.552)。非着床点iNOS的表达在CL侧与PL侧之间无明显差异(p=0.711)。实验组PL侧子宫iNOS阳性细胞数在着床位点的高于非着床位点,差异有统计学意义(P0.05)。而CL侧iNOS阳性细胞数在着床位点虽高于非着床位点,但差异无统计学意义(P=0.118)。结论1)严格遵守无菌操作的宫腔内注射并不影响子宫组织完整性,可作为宫腔内给药的途径。2)利用巨噬细胞特异性清除剂氯膦酸二钠脂质体,通过两种途径:尾静脉注射与宫腔内注射,均能有效抑制小鼠子宫巨噬细胞,而通过宫腔内注射可有效避免对卵巢的影响,且单侧的药物给药可以使得两侧的子宫互为对照,为精确研究子宫内膜巨噬细胞的功能提供良好的动物模型,在国内外为首次报道。3)抑制子宫局部巨噬细胞导致胚胎着床率下降,着床部位蜕膜化不完全,宫腔不能闭合,证明子宫内膜中的巨噬细胞为胚胎着床所必需。4)当着床期抑制子宫内膜巨噬细胞后,着床点VEGFA的表达随巨噬细胞的抑制一致性降低,提示巨噬细胞可能是通过调控VEGFA的表达,参与构建蜕膜局部血管生成微环境,从而影响子宫内膜容受性及胚胎着床。5)子宫的iNOS表达并不随子宫巨噬细胞的抑制而降低,可能其表达并不完全受巨噬细胞影响,存在其他途径代替调控。6)巨噬细胞、VEGFA、iNOS在着床点的表达高于非着床点,其差异进一步说明巨噬细胞、VEGFA、iNOS不仅与胚胎着床相关,也可能参与了着床点的选择,其具体机制还需要进一步研究。
【学位授予单位】:南方医科大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2016
【分类号】:R321

【相似文献】

中国期刊全文数据库 前10条

1 ;豚鼠巨噬细胞经P_(204)处理后的抗石英细胞毒作用[J];国外医学参考资料(卫生学分册);1976年04期

2 邓侠进;;巨噬细胞的抗癌作用[J];遵义医学院学报;1979年02期

3 陆天才;;疾病对肺巨噬细胞的影响[J];煤矿医学;1982年01期

4 郭瑞清;祝彼得;;一种分离巨噬细胞的简单方法[J];滨州医学院学报;1990年02期

5 谢志坚;巨噬细胞异质性[J];医学综述;2001年06期

6 饶艳;运动及神经内分泌对巨噬细胞功能的调节[J];体育与科学;2002年05期

7 朱金元;;吸烟对肺巨噬细胞的影响[J];浙江医学教育;2003年01期

8 张俊峰;过氧化物酶体增殖物激活受体与单核/巨噬细胞系[J];医学综述;2004年03期

9 韦锦学;顾军;;巨噬细胞的激活诱导死亡[J];生命科学;2006年02期

10 李晓曦;郭宁;曹雪涛;;肿瘤相关巨噬细胞促进肿瘤生长与转移的研究现状[J];中国肿瘤生物治疗杂志;2008年01期

中国重要会议论文全文数据库 前10条

1 史玉玲;王又明;丰美福;;巨噬细胞激活作用的研究[A];中国细胞生物学学会第五次会议论文摘要汇编[C];1992年

2 吴国明;周辉;;巨噬细胞和创伤纤维化[A];2009年浙江省骨科学学术年会论文汇编[C];2009年

3 李奇;王海杰;;透明质酸对于淋巴结巨噬细胞运动的影响[A];解剖学杂志——中国解剖学会2002年年会文摘汇编[C];2002年

4 刘革修;欧大明;刘军花;黄红林;廖端芳;;丙丁酚在体外能抑制巨噬细胞脂质氧化介导的低密度脂蛋白氧化并调节氧化巨噬细胞的分泌功能[A];面向21世纪的科技进步与社会经济发展(下册)[C];1999年

5 叶金善;杨丽霞;郭瑞威;;环氧化酶-2/前列腺素E_2在血管紧张素Ⅱ刺激巨噬细胞表达细胞外基质金属蛋白酶诱导因子中的作用[A];第十三次全国心血管病学术会议论文集[C];2011年

6 秦帅;陈希;孔德明;;构建由绿色荧光标记巨噬细胞的转基因斑马鱼系[A];贵州省中西医结合内分泌代谢学术会论文汇编[C];2012年

7 武剑华;徐惠绵;;肿瘤相关巨噬细胞在胃癌中的相关研究[A];第9届全国胃癌学术会议暨第二届阳光长城肿瘤学术会议论文汇编[C];2014年

8 何军;;血凝素样氧化型低密度脂蛋白受体升高巨噬细胞内胆固醇水平[A];中华医学会第11次心血管病学术会议论文摘要集[C];2009年

9 宋盛;周非凡;邢达;;PDT诱导的凋亡细胞对巨噬细胞NO合成的影响[A];第七届全国光生物学学术会议论文摘要集[C];2010年

10 张磊;朱建华;黄元伟;姚航平;;血管紧张素Ⅱ对巨噬细胞(THP-1重细胞)凝集素样氧化低密度脂蛋白受体表达的影响[A];浙江省免疫学会第五次学术研讨会论文汇编[C];2004年

中国重要报纸全文数据库 前10条

1 通讯员 李静 记者 胡德荣;恶性肿瘤巨噬细胞未必皆“恶人”[N];健康报;2014年

2 兰克;以尝试用巨噬细胞治瘫痪[N];科技日报;2000年

3 薛佳;免疫系统——人体的“卫士”[N];保健时报;2009年

4 记者 胡德荣;铁泵蛋白“维稳”铁代谢作用首次阐明[N];健康报;2011年

5 侯嘉 何新乡;硒的神奇功能[N];中国食品质量报;2003年

6 唐颖 倪兵 陈代杰;巨噬细胞泡沫化抑制剂研究快步进行[N];中国医药报;2006年

7 刘元江;新发现解释肿瘤为何易成“漏网之鱼”[N];医药经济报;2007年

8 本报记者 侯嘉 通讯员 何新乡;今天你补硒了吗[N];医药经济报;2003年

9 左志刚;升血小板药使用注意[N];医药养生保健报;2007年

10 记者 许琦敏;“铁泵”蛋白帮助回收铁元素[N];文汇报;2011年

中国博士学位论文全文数据库 前10条

1 周赤燕;巨噬细胞MsrA对动脉粥样硬化的干预研究[D];武汉大学;2013年

2 章桂忠;TIPE2蛋白调控细胞增殖和炎症的机制研究[D];山东大学;2015年

3 张瑜;DKK1抑制巨噬细胞内脂质沉积及其相关分子机制[D];山东大学;2015年

4 孟涛;异丙酚对心脏收缩功能的抑制作用及其对巨噬细胞分泌功能调节的机制研究[D];山东大学;2015年

5 周兴;基于酵母微囊构建新型口服巨噬细胞靶向递送系统的研究[D];第三军医大学;2015年

6 蒋兴伟;Tim-3对巨噬细胞极化的调控机制研究[D];中国人民解放军军事医学科学院;2015年

7 刘伯玉;清道夫受体A介导小鼠巨噬细胞吞噬钩端螺旋体研究[D];上海交通大学;2013年

8 杨绍俊;miRNA-155介导ESAT-6诱导巨噬细胞凋亡的分子机制及其在结核诊断中的作用[D];第三军医大学;2015年

9 翟光耀;单核/巨噬细胞Ly6C~(low)亚群在心肌梗死后瘢痕形成期的抗炎特性研究[D];北京协和医学院;2014年

10 韩露;TRB3介导的脂肪组织巨噬细胞极化与糖尿病冠状动脉病变关系的研究[D];山东大学;2015年

中国硕士学位论文全文数据库 前10条

1 张译丹;盐皮质激素受体拮抗剂调控巨噬细胞表型对实验性矽肺的作用[D];河北医科大学;2015年

2 卢文冉;HCV core蛋白作用的巨噬细胞培养上清对肝细胞生物学性状的影响[D];河北医科大学;2015年

3 李文建;载脂蛋白E影响巨噬细胞因子表达及分型的机制研究[D];河北医科大学;2015年

4 曹爽;高糖对巨噬细胞TLR4信号转导的调节作用[D];河北医科大学;2015年

5 宁程程;肿瘤相关巨噬细胞在子宫内膜癌雌激素敏感性中的作用及机制研究[D];复旦大学;2014年

6 高龙;PLD4在肿瘤相关巨噬细胞抑制结肠癌增殖中的作用研究[D];成都医学院;2015年

7 丁弋娜;TLR4在肺癌相关巨噬细胞极性转化及其调控机制的研究[D];杭州师范大学;2016年

8 袁震;砷对巨噬细胞和肝细胞胆固醇流出及相关基因ABCA1和ABCG1表达的影响[D];杭州师范大学;2016年

9 李晓琴;Fc99抑制单核/巨噬细胞表达Tenascin-C及缓解关节炎症状的研究[D];南京大学;2014年

10 王凯凯;绿豆肽的结构鉴定及对小鼠巨噬细胞免疫活性物质的影响作用研究[D];黑龙江八一农垦大学;2016年



本文编号:1223436

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/binglixuelunwen/1223436.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户58b0e***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com