【摘要】: 研究背景与目的:病态窦房结综合征(简称病窦综合征)临床常见,对人体健康危害极大,且发病机理不清,也无有效防治措施。目前,病窦综合征的治疗以植入电子心脏起搏器为首选,但电子心脏起搏器价格昂贵、电池寿命有限、需要定期检测及更换,以及植入电子心脏起搏器可发生一些难以避免的并发症,使其应用受限。因此,探讨对病窦综合征患者窦房结结构与功能进行修复,重建一个具有正常生理功能的“生物心脏起搏器”,以取代电子心脏起搏器治疗,则是当今心脏电生理学界研究的热点之一。近年来,虽有少数将骨髓间充质干细胞(MSCs)直接或修饰后移植至生物体内以构建心脏起搏点的研究,但其结果尚不十分令人满意,其主要问题是移植细胞在体内存活时间短、心率增快不明显及心率变异性低等,表明现有的“种子细胞”尚不能满足构建“生物心脏起搏器”的需要。因此,探索寻找适合构建生物心脏起搏器的“种子细胞”,已成为当前心脏电生理学研究的重点内容之一。 既往研究表明,起搏电流(funny current,If)是心脏窦房结细胞自律性产生与维持的决定因素,而超极化激活的环化核苷酸门控通道(HCN)基因家族则是If形成的分子基础。HCN基因家族包括四个成员,即HCN1~HCN4,其中HCN4与If的形成关系最为密切。为探讨mHCN4基因修饰的大鼠MSCs作为构建生物心脏起搏器“种子细胞”的可行性,本研究在国家自然科学基金(30370585)的资助下,利用本课题组在前期研究中构建的mHCN4基因逆转录病毒载体,对大鼠MSCs进行转染,并在体外诱导培养,以期获得具有自律性的心脏起搏样细胞,为构建生物心脏起搏器提供“种子细胞”。 研究方法: 1.以mHCN4逆转录病毒载体(pMSCV-mHCN4-EGFP)及不含mHCN4的逆转录病毒对照载体(pMSCV-EGFP)分别转染大鼠MSCs,并进行嘌呤霉素加压筛选,观察绿荧光蛋白表达情况,并以免疫细胞化学检测mHCN4基因表达,以全细胞膜片钳技术对重组mHCN4通道进行动力学测定。 2.将获得的mHCN4基因修饰大鼠MSCs进行体外诱导培养,用倒置显微镜进行活细胞形态学的动态观察。 3.用透射电镜观察诱导培养后细胞的超微结构,用免疫细胞化学法检测细胞α-actin、cTnT及Cx43的表达,用膜片钳技术记录细胞的动作电位。 4.对转染mHCN4基因的大鼠MSCs与分离的普通心房肌细胞进行混合培养,用透射镜电观察细胞间结构连接情况;用荧光光漂白后恢复技术(FRAP)检测细胞间通讯功能状况。 研究结果: 1.成功将mHCN4逆转录病毒载体(pMSCV-mHCN4-EGFP)转染至大鼠MSCs,并经加压筛选获得了稳定表达mHCN4基因的大鼠MSCs。 2.对获得的稳定表达mHCN4基因的大鼠MSCs进行细胞膜片钳检测,可记录到超极化激活的内向电流,其半数最大激活电压为-98.2±5.7mV,反转电位是22.5±5.2mV,在-140mV指令电位时的激活时间常数为451±61ms。该电流具有明显的时间及电压依赖特性,且对细胞外Cs+高度敏感。在相同记录条件下,仅转染pMSCV-EGFP的大鼠MSCs及未转染组大鼠MSCs均未记录到明确的超极化内向电流。 3.对mHCN4基因修饰的大鼠MSCs进行诱导培养,用倒置显微镜进行活细胞观察发现,普通培养10天左右,可观察到搏动细胞出现,细胞呈长杆状,搏动频率88-318次不等,平均202±72.9次/分,单个细胞自主搏动2-3天后停止,其收缩最明显地部位出现空泡状结构。随后搏动细胞不断出现,呈集落生长,可观察到短梭形、单细胞核细胞搏动。GFP组细胞仅见少量长杆状细胞出现,未观察到细胞自主搏动,对照组细胞形态未见明显变化及细胞的自主搏动。 4.选择普通培养14天的搏动细胞,用全细胞膜片钳技术检测发现,该细胞可记录到窦房结细胞样的动作电位(平均最大舒张电位为-50.9±4.8mV,平均动作电位幅度为62.9±5.2mV); 5.搏动细胞经免疫细胞化学检测,该细胞不但表达mHCN4通道,同时表达心肌特异性蛋白α-actin及cTnT;透射电镜观察也发现其细胞内有明显肌丝分布,但肌丝的排列紊乱与稀少,未见肌节样结构形成,胞浆内可见丰富的颗粒、少量线粒体,其结构特点与乳鼠窦房结细胞超微结构非常相似。 6.经检测mHCN4基因修饰大鼠MSCs可表达Cx43,其表达水平明显较GFP组及未转染组高,与心房肌细胞的Cx43表达水平无明显差异。 7.透射电镜观察发现到mHCN4基因修饰大鼠MSCs可与相邻细胞间可形成指状交错的连接,并可观察到缝管连接的形成。. 8.经荧光光漂白后恢复技术(FRAP)检测发现mHCN4阳性细胞组及mHCN4阳性细胞与心房肌细胞共培养组的平均荧光恢复率明显高于GFP阳性细胞组及GFP阳性细胞与心房肌细胞共培养组,并与心房肌细胞组相似。 本研究结论: 1.mHCN4可成功转染至大鼠MSCs,并可稳定持续的表达。 2.mHCN4基因修饰的大鼠MSCs可记录到If,表明其已具有心脏起搏细胞的电生理特性。 3.mHCN4基因修饰大鼠MSCs可在体外诱导分化为具有自律性的心脏起搏样细胞。 4.mHCN4基因修饰大鼠MSCs高度表达Cx43,并可与混合培养的心房肌细胞产生缝隙连接,并存在有效的胞间通讯。
【学位授予单位】:第三军医大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2007
【分类号】:R541.7;R329
【图文】: 该电流具有明显的时间及电压依赖特性,其在-140mV 指令电压下的平均电流密度为-43.5±3.8pA/pF(图1-1A),不同指令电压下的电流密度详见表 1-1。在相同的记录条件下,GFP 组(见图 1-1B)及对照组细胞未能检测到明显的超极化内向电流。HCN4 组细胞的超极化激活内向电流检出率约为 80%(n=20)。HCN4 组细胞的平均膜电容为 74.8±14.6 pF(n=20),GFP 组及对照组平均膜电容分别为 73.6±13.8pF(n=19),74.2±13.7pF(n=19),各组间无明显差异(P>0.05)。图 1-1A HCN4 组细胞电流曲线及指令电压方波
图 1-1B GFP 组细胞电流曲线及指令电压方波表 1-1 实验组细胞在不同指令电压(mV)下的 If电流密度(pA/pF n=10)指令电压-140 -130 -120 -110 -100 -90 -80 -70 --43.5 -41.9 -39.1 -34.9 -31.1 -26.6 -14.2 -5.7 -度±3.8 ±3.7 ±3.2 ±3.2 ±3.2 ±2.8 ±2.3 ±1.2 ±2)细胞外 Cs+对通道电流的影响细胞外液加入 CsCl(4mMol/L)后,该超极化激活的内向电流减小幅
图 1-3 HCN4 组细胞 If尾电流及指令电压方波表 1-2 HCN4 组细胞在不同指令电压(mV)下的 If尾电流密度(pA/pF n=5)指令电压-140 -130 -120 -110 -100 -90 -80 -70 流25.3 24.9 22.7 19.2 12.7 7.4 3.1 1.2 度 ±4.0 ±4.1 ±4.0 ±3.0 ±2.0 ±1.1 ±0.5 ±0.2 0.81.01.2pA/pF//pA/pFmax)
【参考文献】
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1 朱淑霞,宋治远,罗向东,仝识非,苏踊跃,梁光萍,唐红英;体外诱导大鼠骨髓间充质干细胞分化为心肌样细胞的研究[J];第三军医大学学报;2005年15期
2 鲁玲玲,苏玉金,赵春礼,邹西峰,侯少平,徐群渊,杨慧;骨髓基质细胞的分离、鉴定以及TH基因的转染与表达[J];生物化学与生物物理学报;2003年06期
3 任晓庆,浦介麟,张澍,贾玉和,赵欣然,孟亮,王方正;自体骨髓间叶干细胞诱导分化移植重建窦房结起搏功能的实验研究[J];中国循环杂志;2004年06期
4 仝识非,宋治远,钟理;模拟缺血-再灌注对窦房结细胞起搏离子流的影响及K_(ATP)通道开放剂的干预作用[J];中国心脏起搏与心电生理杂志;2002年03期
5 李继文;郭继鸿;张萍;李春;刘元伟;周春燕;;起搏通道基因亚型HCN4重组腺病毒载体的构建及通道电流检测[J];中国心脏起搏与心电生理杂志;2006年01期
6 农耀明;宋治远;尹戴佳佳;陈鹏慧;;大鼠骨髓间充质干细胞培养一周后的细胞膜电流[J];中国心脏起搏与心电生理杂志;2006年04期
7 仝识非;宋治远;姚青;万瑛;邹丽云;钟理;;mHCN4基因修饰小鼠骨髓间充质干细胞重建起搏离子流通道[J];中国心脏起搏与心电生理杂志;2007年01期
8 张照,徐有秋;“缺血”对心室正常起搏活动影响的细胞电生理学研究(Ⅰ)[J];中华心律失常学杂志;2000年02期
9 徐有秋;I_f离子流和心脏起搏[J];中华心律失常学杂志;2001年04期
10 任晓庆;浦介麟;王方正;;干细胞移植与转基因治疗建立生物起搏器的实验研究进展[J];中华心律失常学杂志;2006年02期
本文编号:
2761683
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