调节性T细胞在poly I:C/D-GalN诱发的肝脏损伤中的免疫调节作用
发布时间：2021-03-17 22:52
目的:探讨调节性T细胞在Polyinosinic-polycytidylic acid（poly I:C）/D-galactosamine（D-GalN）诱发的急性肝脏损伤中的作用及其机制。方法:建立poly I:C/D-GalN诱发的爆发性肝炎小鼠模型,观察比较野生型C57BL/6小鼠、Rag1-/-小鼠（C57BL/6背景）和过继转输调节性T细胞的Rag1-/-小鼠的血清转氨酶活性;肝脏HE染色评价小鼠肝组织病理形态学改变;实时荧光定量PCR检测肝脏TNF-α和IFN-γmRNA水平;ELISA检测血清IFN-γ和TNF-α蛋白水平。结果:poly I:C/D-GalN联合注射后,与野生型小鼠相比,Rag1-/-小鼠血清转氨酶水平明显增高,肝脏损伤更加严重,炎性因子mRNA水平和蛋白水平都显著增加。给Rag1-/-小鼠过继转输CD25+细胞后能明显降低poly I:C/D-GalN诱导的肝脏损伤。结论:调节性T细胞对poly I:C/D-GalN诱发的肝脏损伤有抑制作用,提示调节性T细胞可以负向调节天然免疫细胞。
【文章来源】：中国免疫学杂志. 2014,30(01)北大核心
【文章页数】：6 页
【部分图文】：
野生型小鼠和Ｒag1－/－小鼠polyI:C/D-GalN注射后12、18、24和48h检测转氨酶水平
图1野生型小鼠和Ｒag1－/－小鼠polyI:C/D-GalN注射后12、18、24和48h检测转氨酶水平Fig．1WTmiceandＲag1－/－micewereinjectedwithpo-lyI:C/D-GalNat12，18，24and48hoursafterin-jection，serumALTlevelsweremeasuredNote:*．P＜0．05(n=12/group)．图2野生型小鼠和Ｒag1－/－小鼠polyI:C/D-GalN注射后18、24和48h肝脏H-E染色(×100)Fig．2WTmiceandＲag1－/－micewereinjectedwithpo-lyI:C/D-GalNat18，24and48hoursafterinjec-tion，liversamplesfrommicewereanalyzedbyH-Estaining(originalmagnification×100)图3ＲT-PCＲ检测肝脏中TNF-α和IFN-γ的mＲNA水平Fig．3TNF-αandIFN-γmＲNAexpressionofhepaticweremeasuredbyquantitativereal-timeＲT-PCＲNote:*．P＜0．05(n=12/group)．图4ELISA检测血清中TNF-α和IFN-γ的蛋白水平Fig．4SerumlevelsofTNF-αandIFN-γweremeasuredbyELISANote:*．P＜0．05(n=12/group)．图5转输CD25+细胞，转输CD25－细胞以及未转输细胞的Ｒag1－/－小鼠polyI:C/D-GalN注射后18h检测转氨酶水平Fig．5Ｒag1－/－micewithtransferCD25+，transferCD25－cellsanddidnottransfercellswereinjec-tedwithpolyI:C/D-GalN，at18hoursafterin-jection，serumALTlevelsweremeasuredNote:*．P＜0．05(n=12/group)．C/D-GalN注射后12、18、24和48hＲag1－/－小鼠肝脏IFN-γ的mＲNA水平明显高于WT小鼠(P＜·26·中国免疫学杂志2014年第30卷
图1野生型小鼠和Ｒag1－/－小鼠polyI:C/D-GalN注射后12、18、24和48h检测转氨酶水平Fig．1WTmiceandＲag1－/－micewereinjectedwithpo-lyI:C/D-GalNat12，18，24and48hoursafterin-jection，serumALTlevelsweremeasuredNote:*．P＜0．05(n=12/group)．图2野生型小鼠和Ｒag1－/－小鼠polyI:C/D-GalN注射后18、24和48h肝脏H-E染色(×100)Fig．2WTmiceandＲag1－/－micewereinjectedwithpo-lyI:C/D-GalNat18，24and48hoursafterinjec-tion，liversamplesfrommicewereanalyzedbyH-Estaining(originalmagnification×100)图3ＲT-PCＲ检测肝脏中TNF-α和IFN-γ的mＲNA水平Fig．3TNF-αandIFN-γmＲNAexpressionofhepaticweremeasuredbyquantitativereal-timeＲT-PCＲNote:*．P＜0．05(n=12/group)．图4ELISA检测血清中TNF-α和IFN-γ的蛋白水平Fig．4SerumlevelsofTNF-αandIFN-γweremeasuredbyELISANote:*．P＜0．05(n=12/group)．图5转输CD25+细胞，转输CD25－细胞以及未转输细胞的Ｒag1－/－小鼠polyI:C/D-GalN注射后18h检测转氨酶水平Fig．5Ｒag1－/－micewithtransferCD25+，transferCD25－cellsanddidnottransfercellswereinjec-tedwithpolyI:C/D-GalN，at18hoursafterin-jection，serumALTlevelsweremeasuredNote:*．P＜0．05(n=12/group)．C/D-GalN注射后12、18、24和48hＲag1－/－小鼠肝脏IFN-γ的mＲNA水平明显高于WT小鼠(P＜·26·中国免疫学杂志2014年第30卷
本文编号：3087856
【文章来源】：中国免疫学杂志. 2014,30(01)北大核心
【文章页数】：6 页
【部分图文】：
野生型小鼠和Ｒag1－/－小鼠polyI:C/D-GalN注射后12、18、24和48h检测转氨酶水平
图1野生型小鼠和Ｒag1－/－小鼠polyI:C/D-GalN注射后12、18、24和48h检测转氨酶水平Fig．1WTmiceandＲag1－/－micewereinjectedwithpo-lyI:C/D-GalNat12，18，24and48hoursafterin-jection，serumALTlevelsweremeasuredNote:*．P＜0．05(n=12/group)．图2野生型小鼠和Ｒag1－/－小鼠polyI:C/D-GalN注射后18、24和48h肝脏H-E染色(×100)Fig．2WTmiceandＲag1－/－micewereinjectedwithpo-lyI:C/D-GalNat18，24and48hoursafterinjec-tion，liversamplesfrommicewereanalyzedbyH-Estaining(originalmagnification×100)图3ＲT-PCＲ检测肝脏中TNF-α和IFN-γ的mＲNA水平Fig．3TNF-αandIFN-γmＲNAexpressionofhepaticweremeasuredbyquantitativereal-timeＲT-PCＲNote:*．P＜0．05(n=12/group)．图4ELISA检测血清中TNF-α和IFN-γ的蛋白水平Fig．4SerumlevelsofTNF-αandIFN-γweremeasuredbyELISANote:*．P＜0．05(n=12/group)．图5转输CD25+细胞，转输CD25－细胞以及未转输细胞的Ｒag1－/－小鼠polyI:C/D-GalN注射后18h检测转氨酶水平Fig．5Ｒag1－/－micewithtransferCD25+，transferCD25－cellsanddidnottransfercellswereinjec-tedwithpolyI:C/D-GalN，at18hoursafterin-jection，serumALTlevelsweremeasuredNote:*．P＜0．05(n=12/group)．C/D-GalN注射后12、18、24和48hＲag1－/－小鼠肝脏IFN-γ的mＲNA水平明显高于WT小鼠(P＜·26·中国免疫学杂志2014年第30卷
图1野生型小鼠和Ｒag1－/－小鼠polyI:C/D-GalN注射后12、18、24和48h检测转氨酶水平Fig．1WTmiceandＲag1－/－micewereinjectedwithpo-lyI:C/D-GalNat12，18，24and48hoursafterin-jection，serumALTlevelsweremeasuredNote:*．P＜0．05(n=12/group)．图2野生型小鼠和Ｒag1－/－小鼠polyI:C/D-GalN注射后18、24和48h肝脏H-E染色(×100)Fig．2WTmiceandＲag1－/－micewereinjectedwithpo-lyI:C/D-GalNat18，24and48hoursafterinjec-tion，liversamplesfrommicewereanalyzedbyH-Estaining(originalmagnification×100)图3ＲT-PCＲ检测肝脏中TNF-α和IFN-γ的mＲNA水平Fig．3TNF-αandIFN-γmＲNAexpressionofhepaticweremeasuredbyquantitativereal-timeＲT-PCＲNote:*．P＜0．05(n=12/group)．图4ELISA检测血清中TNF-α和IFN-γ的蛋白水平Fig．4SerumlevelsofTNF-αandIFN-γweremeasuredbyELISANote:*．P＜0．05(n=12/group)．图5转输CD25+细胞，转输CD25－细胞以及未转输细胞的Ｒag1－/－小鼠polyI:C/D-GalN注射后18h检测转氨酶水平Fig．5Ｒag1－/－micewithtransferCD25+，transferCD25－cellsanddidnottransfercellswereinjec-tedwithpolyI:C/D-GalN，at18hoursafterin-jection，serumALTlevelsweremeasuredNote:*．P＜0．05(n=12/group)．C/D-GalN注射后12、18、24和48hＲag1－/－小鼠肝脏IFN-γ的mＲNA水平明显高于WT小鼠(P＜·26·中国免疫学杂志2014年第30卷
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