基于报告基因的抗HER2单克隆抗体ADCC生物学活性测定方法的建立及应用
发布时间:2021-04-21 05:27
目的:利用转基因细胞法建立抗人表皮生长因子受体2(human epidermal growth factor receptor 2,HER2)单抗的抗体依赖细胞介导的细胞毒作用(antibody-dependent cell-mediated cytotoxicity,ADCC)生物学活性检测方法。方法:利用Jurkat-hFcγRⅢa-NFAT转基因细胞系作为效应细胞,SKBR3细胞系作为靶细胞,通过荧光素酶检测系统(BioGloTM Luciferase Assay system)进行抗HER2单抗的ADCC生物学活性检测,同时对试验条件进行优化及方法学验证,并将该检测方法用于不同类型的抗HER2单抗ADCC效应的评价。结果:抗HER2单抗在该方法中存在量效关系,且符合四参数方程式:y=(A-D)/[1+(x/C)B]+D,方法经优化后确定靶细胞为SKBR3细胞,抗体稀释起始工作质量浓度为4 000 ng·mL-1,1∶4倍的稀释倍数,效靶比为15∶1,诱导时间为20 h。该方法具有良好的专属性;3次独立检测的板间、日间最大诱导倍数(fo...
【文章来源】:药物分析杂志. 2019,39(01)北大核心CSCD
【文章页数】:11 页
【文章目录】:
1 材料与方法
1.1 主要仪器
1.2 材料
1.3 方法
1.3.1 Jurkat-hFcγRⅢa-NFAT细胞株的构建
1.3.1. 1 质粒转染效应细胞株
1.3.1. 2 效应细胞株的筛选
1.3.2 ADCC生物学活性测定
1.3.3 试验条件的优化
1.3.3. 1 靶细胞的选择
1.3.3. 1. 1 流式细胞术检测不同靶细胞表面HER2表达量
1.3.3. 1. 2 不同HER2+靶细胞的免疫荧光检测
1.3.3. 1. 3 不同HER2+靶细胞的ADCC活性测定
1.3.3. 2 抗体浓度范围的选择
1.3.3. 3 效靶比的选择
1.3.3. 4 诱导时间的选择
1.3.4 方法学验证
1.3.4. 1 专属性试验
1.3.4. 1. 1 靶细胞专属性
1.3.4. 1. 2 效应细胞专属性
1.3.4. 1. 3 抗体专属性
1.3.4. 2 精密性试验
1.3.4. 3 准确性试验
1.3.5 方法应用
1.3.5. 1 检测不同类型的抗HER2单抗的ADCC活性
1.3.5. 2 检测不同变性程度的抗HER2单抗的ADCC活性
1.3.5. 2. 1 酶切变性试验
1.3.5. 2. 2 热稳定性试验
2 结果
2.1 Jurkat-hFcγRⅢa-NFAT细胞株的构建
2.2 抗HER2单抗的ADCC剂量效应曲线
2.3 ADCC试验条件的优化
2.3.1 靶细胞的选择
2.3.1. 1 流式细胞术检测不同靶细胞表面HER2表达量
2.3.1. 2 不同HER2 (+) 靶细胞的免疫荧光检测
2.3.1. 3 不同HER2+靶细胞的ADCC测定
2.3.2 抗体浓度范围的选择
2.3.3 效靶比的选择
2.3.4 诱导时间的选择
2.4 方法学验证
2.4.1 专属性
2.4.2 精密性
2.4.3 准确性
2.5 方法应用
2.5.1 对HER2靶点的不同类型单克隆抗体类药物的ADCC活性比较
2.5.2 对HER2靶点的不同变性程度的单克隆抗体药物的ADCC活性比较
2.5.2. 1 酶切变性
2.5.2. 2 热稳定性试验
3 讨论
【参考文献】:
期刊论文
[1]针对HER2靶点的抗体药物研究与肿瘤靶向治疗[J]. 汤沁,丁倩,林莉,张珍珍,代争,詹金彪. 药学学报. 2012(10)
[2]乳腺癌HER2基因的研究进展及其靶点治疗[J]. 乔杉杉,王大业. 首都医科大学学报. 2008(01)
本文编号:3151147
【文章来源】:药物分析杂志. 2019,39(01)北大核心CSCD
【文章页数】:11 页
【文章目录】:
1 材料与方法
1.1 主要仪器
1.2 材料
1.3 方法
1.3.1 Jurkat-hFcγRⅢa-NFAT细胞株的构建
1.3.1. 1 质粒转染效应细胞株
1.3.1. 2 效应细胞株的筛选
1.3.2 ADCC生物学活性测定
1.3.3 试验条件的优化
1.3.3. 1 靶细胞的选择
1.3.3. 1. 1 流式细胞术检测不同靶细胞表面HER2表达量
1.3.3. 1. 2 不同HER2+靶细胞的免疫荧光检测
1.3.3. 1. 3 不同HER2+靶细胞的ADCC活性测定
1.3.3. 2 抗体浓度范围的选择
1.3.3. 3 效靶比的选择
1.3.3. 4 诱导时间的选择
1.3.4 方法学验证
1.3.4. 1 专属性试验
1.3.4. 1. 1 靶细胞专属性
1.3.4. 1. 2 效应细胞专属性
1.3.4. 1. 3 抗体专属性
1.3.4. 2 精密性试验
1.3.4. 3 准确性试验
1.3.5 方法应用
1.3.5. 1 检测不同类型的抗HER2单抗的ADCC活性
1.3.5. 2 检测不同变性程度的抗HER2单抗的ADCC活性
1.3.5. 2. 1 酶切变性试验
1.3.5. 2. 2 热稳定性试验
2 结果
2.1 Jurkat-hFcγRⅢa-NFAT细胞株的构建
2.2 抗HER2单抗的ADCC剂量效应曲线
2.3 ADCC试验条件的优化
2.3.1 靶细胞的选择
2.3.1. 1 流式细胞术检测不同靶细胞表面HER2表达量
2.3.1. 2 不同HER2 (+) 靶细胞的免疫荧光检测
2.3.1. 3 不同HER2+靶细胞的ADCC测定
2.3.2 抗体浓度范围的选择
2.3.3 效靶比的选择
2.3.4 诱导时间的选择
2.4 方法学验证
2.4.1 专属性
2.4.2 精密性
2.4.3 准确性
2.5 方法应用
2.5.1 对HER2靶点的不同类型单克隆抗体类药物的ADCC活性比较
2.5.2 对HER2靶点的不同变性程度的单克隆抗体药物的ADCC活性比较
2.5.2. 1 酶切变性
2.5.2. 2 热稳定性试验
3 讨论
【参考文献】:
期刊论文
[1]针对HER2靶点的抗体药物研究与肿瘤靶向治疗[J]. 汤沁,丁倩,林莉,张珍珍,代争,詹金彪. 药学学报. 2012(10)
[2]乳腺癌HER2基因的研究进展及其靶点治疗[J]. 乔杉杉,王大业. 首都医科大学学报. 2008(01)
本文编号:3151147
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