去分化间充质干细胞成骨再分化潜能的实验研究
【部分图文】:
南京医科大学学报第33卷第8期南报2013年8月将MSCs与De-MSCs两组细胞同时成骨诱导7d后检测成骨相关基因,发现以MSCs为对照,De-MSCs再成骨后基因表达明显高于MSCs成骨,Runx2表达增加约3倍,BMP2增加约4.5倍,Os-terix增加约14倍(P<0.01,图4),表明De-MSCs有更强的成骨分化潜能,成骨分化效率更高,诱导后的成骨基因表达比未诱导状态更加明显。2.5ALP活性检测ALP是成骨细胞活动产物,浓度值正相关于成骨能力,是反映成骨能力敏感指标。De-MSCs与MSCs同时成骨诱导14d,分别记为MSC-obs和De-MSC-obs。收集上清检测ALP浓度值,结果显示De-MSC-obs显著高于MSC-obs(MSC-obs组0.58±0.015,De-MSC-obs组0.720±0.006,P<0.01),说明De-MSCs成骨分化能力较MSCs更强(图5)。MSCsMSCs-obsDe-MSCs图1光镜下观察MSCs、MSCs-obs及De-MSCs形态(×50)Figure1ThemorphologyofMSCs,MSC-obsandDe-MSCs(×50)CD34CD105CD29CD45HLA-DR图2流式细胞仪检测De-MSCs表达部分MSCs表面标志Figure2ThesurfacemarkersofDe-MSCsdetectedbyFACS与同时间点的MSCs比较,**P<0.01(n=5)。图3CCK8检测De-MSCs细胞增殖能力增强Figure3ProliferationpotentialofDe-MSCsincreaseddetectedbyCCK83210D(450nm)1d3d5d7d时间********MSCDe-MSC20151050相对表达量******MSCDe-MSCRunx2BMP2Osterix与同时间点的MSCs比较,**P<0.01(n=3)。图4qPCR检测De-MSCs再次成骨诱导后相关基因表达高于MSCsFigure4Theosteogenicrelated-geneexpressionsofDe-MSCswerehigherthanMSCsdetectedbyqPCR·1046·
南京医科大学学报第33卷第8期南报2013年8月将MSCs与De-MSCs两组细胞同时成骨诱导7d后检测成骨相关基因,发现以MSCs为对照,De-MSCs再成骨后基因表达明显高于MSCs成骨,Runx2表达增加约3倍,BMP2增加约4.5倍,Os-terix增加约14倍(P<0.01,图4),表明De-MSCs有更强的成骨分化潜能,成骨分化效率更高,诱导后的成骨基因表达比未诱导状态更加明显。2.5ALP活性检测ALP是成骨细胞活动产物,浓度值正相关于成骨能力,是反映成骨能力敏感指标。De-MSCs与MSCs同时成骨诱导14d,分别记为MSC-obs和De-MSC-obs。收集上清检测ALP浓度值,结果显示De-MSC-obs显著高于MSC-obs(MSC-obs组0.58±0.015,De-MSC-obs组0.720±0.006,P<0.01),说明De-MSCs成骨分化能力较MSCs更强(图5)。MSCsMSCs-obsDe-MSCs图1光镜下观察MSCs、MSCs-obs及De-MSCs形态(×50)Figure1ThemorphologyofMSCs,MSC-obsandDe-MSCs(×50)CD34CD105CD29CD45HLA-DR图2流式细胞仪检测De-MSCs表达部分MSCs表面标志Figure2ThesurfacemarkersofDe-MSCsdetectedbyFACS与同时间点的MSCs比较,**P<0.01(n=5)。图3CCK8检测De-MSCs细胞增殖能力增强Figure3ProliferationpotentialofDe-MSCsincreaseddetectedbyCCK83210D(450nm)1d3d5d7d时间********MSCDe-MSC20151050相对表达量******MSCDe-MSCRunx2BMP2Osterix与同时间点的MSCs比较,**P<0.01(n=3)。图4qPCR检测De-MSCs再次成骨诱导后相关基因表达高于MSCsFigure4Theosteogenicrelated-geneexpressionsofDe-MSCswerehigherthanMSCsdetectedbyqPCR·1046·
南京医科大学学报第33卷第8期南报2013年8月将MSCs与De-MSCs两组细胞同时成骨诱导7d后检测成骨相关基因,发现以MSCs为对照,De-MSCs再成骨后基因表达明显高于MSCs成骨,Runx2表达增加约3倍,BMP2增加约4.5倍,Os-terix增加约14倍(P<0.01,图4),表明De-MSCs有更强的成骨分化潜能,成骨分化效率更高,诱导后的成骨基因表达比未诱导状态更加明显。2.5ALP活性检测ALP是成骨细胞活动产物,浓度值正相关于成骨能力,是反映成骨能力敏感指标。De-MSCs与MSCs同时成骨诱导14d,分别记为MSC-obs和De-MSC-obs。收集上清检测ALP浓度值,结果显示De-MSC-obs显著高于MSC-obs(MSC-obs组0.58±0.015,De-MSC-obs组0.720±0.006,P<0.01),说明De-MSCs成骨分化能力较MSCs更强(图5)。MSCsMSCs-obsDe-MSCs图1光镜下观察MSCs、MSCs-obs及De-MSCs形态(×50)Figure1ThemorphologyofMSCs,MSC-obsandDe-MSCs(×50)CD34CD105CD29CD45HLA-DR图2流式细胞仪检测De-MSCs表达部分MSCs表面标志Figure2ThesurfacemarkersofDe-MSCsdetectedbyFACS与同时间点的MSCs比较,**P<0.01(n=5)。图3CCK8检测De-MSCs细胞增殖能力增强Figure3ProliferationpotentialofDe-MSCsincreaseddetectedbyCCK83210D(450nm)1d3d5d7d时间********MSCDe-MSC20151050相对表达量******MSCDe-MSCRunx2BMP2Osterix与同时间点的MSCs比较,**P<0.01(n=3)。图4qPCR检测De-MSCs再次成骨诱导后相关基因表达高于MSCsFigure4Theosteogenicrelated-geneexpressionsofDe-MSCswerehigherthanMSCsdetectedbyqPCR·1046·
【相似文献】
相关期刊论文 前10条
1 申玉芹;孙新华;于丽;王学菊;冯志远;王丽颖;于永利;;小寡核苷酸对大鼠骨髓间充质干细胞向成骨细胞分化的影响[J];吉林大学学报(医学版);2010年02期
2 翁震;王泳;袁雅红;李毅平;罗先富;张学光;;人胎盘源间充质干细胞向成骨细胞和脂肪细胞分化的实验研究[J];苏州大学学报(医学版);2008年06期
3 王建军;刘兴炎;李旭升;;成人脂肪间充质干细胞体外长期培养后的成骨分化潜能[J];中国组织工程研究与临床康复;2009年36期
4 陈鹏飞;吴小翎;周伟;彭阳;芦曦;;大鼠骨髓间充质干细胞向肝样细胞的定向诱导分化[J];中国生物制品学杂志;2011年01期
5 李晓峰;赵劲民;苏伟;崔向荣;罗世兴;马爱国;;大鼠骨髓间充质干细胞的培养与鉴定[J];中国组织工程研究与临床康复;2011年10期
6 张斌;刘瑞;朱希山;豆晓伟;刘星霞;陈媛;赵春华;;成骨诱导或干扰素γ预处理对胎儿骨髓源Flk-1~+间充质干细胞免疫活性的调节[J];中国组织工程研究与临床康复;2008年43期
7 樊彩兰;刘伯轩;李晶;岳晓华;李华青;张悦红;王建华;牛勃;;BrdU体外示踪大鼠骨髓间充质干细胞的成骨分化[J];中国组织工程研究与临床康复;2009年27期
8 任宇;马玉珍;王清莲;刘东军;仓明;温建勋;靳木子;;不同代次大鼠骨髓间充质干细胞和脂肪间充质干细胞成骨分化比较[J];畜牧与兽医;2011年05期
9 刘平,戴冀斌;大鼠脑室下区神经干细胞的分离培养与分化[J];解剖学研究;2005年03期
10 胡军;舒钧;;间充质干细胞向椎间盘细胞表型诱导分化的研究进展[J];医学综述;2009年12期
相关会议论文 前10条
1 谭新杰;焦桂萍;胡长林;蔡文琴;刘健;杨华;刘窗溪;韩国强;熊云彪;;胎鼠皮层神经干细胞的分离培养、分化及鉴定[A];贵州省医学会神经外科学分会第七届学术交流会暨神经外科学新进展学习班论文集[C];2006年
2 田卫东;江宏兵;刘磊;汤炜;李晓东;;颅神经嵴干细胞的体外培养及其多向分化潜能研究[A];第三届全国口腔颌面部创伤暨修复重建学术研讨会论文汇编[C];2003年
3 王文磊;田杰;吕铁伟;陈沅;朱静;;骨髓间充质干细胞多向分化潜能的实验研究[A];中华医学会第十四次全国儿科学术会议论文汇编[C];2006年
4 李炳宗;陈萍;黄海雯;傅晋翔;;硼替佐米对骨髓间充质干细胞向成骨细胞分化潜能的影响[A];第12届全国实验血液学会议论文摘要[C];2009年
5 袁凌伟;夏亚一;鲁茂森;邢帅;汉华;沈海丽;王翠芳;;CD34阳性兔真皮干细胞的体外分离培养和鉴定[A];第十七届中国康协肢残康复学术年会暨第三届海峡两岸OS会议论文汇编[C];2008年
6 胡刚;冯捷;金岩;肖生祥;;人循环成纤维细胞参与皮肤创伤修复的作用[A];中华医学会第16次全国皮肤性病学术年会摘要集[C];2010年
7 刘坡;祁少海;徐盈斌;谢举临;舒斌;黄勇;利天增;;胎儿毛乳头细胞的培养、鉴定和体外诱导分化[A];第八届全国烧伤外科学年会论文汇编[C];2007年
8 郭新;张艳敏;漆正宇;秦洁;崔光辉;桂耀庭;蔡志明;;小鼠iPS细胞具备诱导性原始生殖细胞分化潜能的研究[A];2011中国(威海)干细胞与组织工程治疗前沿论坛论文集[C];2011年
9 张晓慧;傅晋翔;;脐静脉源MSC样细胞生物学特性研究[A];中华医学会第八次全国血液学学术会议论文汇编[C];2004年
10 李丽;马海英;马玲;于艳秋;;人胎盘来源的间充质干细胞向血管内皮细胞分化潜能的研究[A];中国病理生理学会第九届全国代表大会及学术会议论文摘要[C];2010年
相关重要报纸文章 前10条
1 中国医科院基础医学研究所 曾武威 章静波;从奥巴马松绑看干细胞热[N];健康报;2009年
2 刘霞;诱导多功能干细胞“不忘”原初组织[N];科技日报;2010年
3 北京市神经外科研究所 北京天坛医院 王忠诚邋院士;神经修复的生力军——神经干细胞[N];健康报;2008年
4 张均田;医学的新纪元——干细胞的研究及临床应用[N];科技日报;2001年
5 张荔子;干细胞点燃组织再生新希望[N];健康报;2005年
6 白毅;Id蛋白助胚胎神经干细胞维持稳定[N];中国医药报;2007年
7 张梦然;胚胎干细胞有助克服免疫排斥问题[N];科技日报;2008年
8 第四军医大学唐都医院介入放射科 郭卫平 朱舜明 朱立明 整理;骨髓间充质干细胞带来的希望[N];健康报;2008年
9 ;韩忠朝:在干细胞领域执著前行[N];人民政协报;2009年
10 ;干细胞变化出人体零件[N];中国医药报;2001年
相关博士学位论文 前10条
1 王晨光;GAP-43在骨髓间充质干细胞向神经样细胞分化过程中作用机制研究[D];吉林大学;2009年
2 王敏;MicroRNAs调控人脂肪源性干细胞成骨分化及ODN影响其调控的研究[D];吉林大学;2010年
3 姜涛;人BMP-2基因转染人脂肪组织源性干细胞诱导体内成骨的实验研究[D];吉林大学;2007年
4 陈志信;成骨生长肽(10-14)对大鼠骨髓间充质干细胞成脂、成骨分化的影响[D];兰州大学;2007年
5 陈亭;乳酸对羊膜间充质干细胞体外扩增和成骨诱导分化的影响[D];华东理工大学;2011年
6 张勇;生长分化因子-5诱导人脂肪基质细胞成骨的实验研究[D];中国人民解放军军医进修学院;2010年
7 陈钧;中医圆道理论指导下模拟微重力对骨髓间充质干细胞分化潜能的影响[D];第四军医大学;2012年
8 张林波;骨髓间充质干细胞的磁标记成像及移植治疗骨缺血坏死的研究[D];吉林大学;2009年
9 刘慧;羊水来源干细胞的生物学特性分析及其向肝细胞诱导分化的实验研究[D];中国人民解放军军医进修学院;2009年
10 陈海旭;胚胎期造血细胞分化潜能分析与内皮祖细胞动员剂研究[D];中国人民解放军军事医学科学院;2012年
相关硕士学位论文 前10条
1 赵晴潇;损伤肝脏条件培养液体外诱导小鼠骨髓间充质干细胞分化为肝细胞的研究[D];浙江大学;2006年
2 范存刚;脐带间充质干细胞神经分化的研究[D];河北医科大学;2005年
3 杨丽桦;人脐血单个核细胞诱导肝样细胞的研究[D];广西医科大学;2007年
4 黎海燕;新生大鼠海马神经干细胞的体外培养与诱导分化的研究[D];广西医科大学;2007年
5 胡晶;体外诱导大鼠骨髓间充质干细胞向肝细胞样细胞方向分化的初步研究[D];中国医科大学;2008年
6 孙吏聪;胰岛素样生长因子诱导外胚间充质细胞向成骨细胞分化的实验研究[D];昆明医学院;2008年
7 姚袁晖;PPARα/PPARβ在神经干细胞增殖、分化中的表达[D];中南大学;2008年
8 高杰;人骨髓间充质干细胞成骨分化特异性miRNA的筛选[D];第四军医大学;2008年
9 李俊峰;体外诱导大鼠骨髓干细胞转化为肝干细胞特征的研究[D];安徽医科大学;2008年
10 叶楠;人骨髓间充质干细胞分化为角膜上皮样细胞的初步研究[D];暨南大学;2009年
本文编号:2811107
本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/jichuyixue/2811107.html