当前位置:主页 > 医学论文 > 内分泌论文 >

矢车菊素-3-O-葡萄糖苷经MAPK信号通路调节成骨细胞增殖和分化的作用研究

发布时间:2020-08-21 11:52
【摘要】:目 的随着人口老龄化问题日益严重,骨质疏松及其骨折已经成为一种严重影响老年人健康的疾病。已知花色苷类化合物具有抗骨质疏松作用,但目前尚不清楚其对骨质疏松症发展过程有重要作用的成骨细胞增殖或分化的影响。丝裂原活化蛋白激酶(Mitogen-activated protein kinase,MAPK)途径对成骨细胞内增殖和分化等信号传递具有重要作用。矢车菊素-3-O-葡萄糖苷(Cyanidin-3-O-Glucoside,C3G)属于花色苷类物质,在RAW264.7和平滑肌细胞等多种细胞中经MAPK途径调节细胞功能。本次研究拟采用原代人成骨细胞和小鼠成骨细胞MC3T3-E1两种细胞模型,观察C3G对成骨细胞的增殖、分化及MAPK在C3G调节成骨细胞功能过程中的作用。方 法采用来自髋部骨折后行人工股骨头置换术的骨质疏松患者股骨头松质骨组织,通过胶原酶-透明质酸酶消化提取原代成骨细胞,进行传代培养,至第3代使用。茜素红染色诱导矿化实验对提取的细胞进行鉴定。小鼠成骨细胞MC3T3-E1购于中国科学院典型培养物保藏委员会细胞库。使用MTT 比色法评价不同浓度C3G(0-40μmol/L)处理两种成骨细胞,计算24h、48h、72h时各浓度组细胞增殖率。使用实时无标记细胞分析(Real Time Cell Analysis,RTCA)技术对使用不同浓度C3G(0-200μmol/L)处理的MC3T3-E1细胞的细胞活性进行实时跟踪48h并绘制期间时间-细胞指数曲线。使用ERK1/2特异性抑制剂PD98059、JNK特异性抑制剂SP600125、P38特异性抑制剂SB202192分别预处理两种成骨细胞4h后,使用0μmol/L或100μmol/L浓度C3G处理两种成骨细胞24h并计算各组成骨细胞增殖率。使用不同浓度的C3G(0-200μmol/L)处理人原代成骨细胞7d,茜素红染色后观察矿化结节产生密度。使用不同浓度的C3G(0-200μmol/L)处理MC3T3-E1细胞24h,ELISA法测定骨钙素(Osteocalcin,OC)、Ⅰ型胶原蛋白羧基末端交联(C-Terminal Telopeptide of Type Ⅰ Collagen,CTX-I)水平,比色法测定碱性磷酸酶(alkaline phosphatase,ALP)活性。使用0μmol/L或lOOμmol/L浓度的C3G处理MC3T3-E1细胞24h,实时荧光定量PCR法测定ALP、Runx2、BMP2 mRNA表达水平;使用如前所述抑制剂预处理方案及C3G处理方案处理后,测定OC、RSK2、ATF4、ATF2、OSX、FOXO1、DLX5 mRNA表达水平;Western Blot法测定ERK1/2、JNK、P38的丰度及磷酸化水平。结 果1.人成骨细胞的分离培养和鉴定股骨头松质骨组织经胶原酶-透明质酸酶消化后获得成骨细胞,原代成骨细胞24h后贴壁,细胞呈梭形,部分区域呈集落生长,细胞爬满瓶底需约7-14d。传代后细胞贴壁时间较原代细胞短,增殖速度较稳定,约7d铺满培养瓶瓶底,细胞呈长梭形和多角形,胞浆丰富,细胞内单核,低倍镜下细胞呈现“涡轮”状生长。诱导矿化处理后,茜素红染色呈阳性。2.C3G处理对MC3T3-E1细胞及人成骨细胞增殖的影响MTT结果显示C3G处理后两种细胞增殖率均上升,C3G各浓度组与对照组相比差异显著(P0.05)。随着时间延长,C3G各浓度组与对照组之间的差距逐渐减小,在72h时C3G 25μmol/L和500μmol/L浓度组与对照组之间的差距消失(P0.05),但200μmol/L和400μmol/L对成骨细胞增殖能力依然有一定的增强作用(P0.05)。RTCA结果显示,C3G提高MC3T3-E1细胞的细胞指数,其中C3G处理的24h时效果明显。3.MAPK信号通路抑制剂预处理后C3G对成骨细胞增殖的影响与DMSO-对照组相比,DMSO-C3G组细胞增殖率显著提高(P0.001)。在PD98059、SB202192或SP600125处理后,各抑制剂-C3G组与其抑制剂-对照组相比,细胞增殖率均仍旧显著提高(P0.001)。4.C3G处理对人成骨细胞矿化能力的影响C3G处理7d,人原代成骨细胞钙化结节密度改变,与对照组相比100μmol/L和2000μmol/L组镜下检视可观察到更多红染结构。5.C3G处理对MC3T3-E1细胞ALP、OC和CTX-I的影响在C3G处理24h后,细胞内ALP活性和CTX-1水平随着C3G浓度的增加而略有下降,但差异无统计学意义(P0.05)。与对照组比较,C3G处理各组OC浓度均显著增加(P0.05)。6.C3G处理对MC3T3-E1细胞ALP、BMP-2和Runx2 mRNA表达的影响C3G处理的各组与对照组相比,细胞内ALP mRNA水平显著下降,差异倍数(Fold Change,FC)=0.55(P0.05);BMP mRNA水平无明显改变,FC=1.05(P=0.86);Runx2 mRNA水平显著下降,FC=0.35(P0.05)。7.抑制剂预处理后C3G对MC3T3-E1 细胞OC、RSK2、ATF4、ATF2、OSX、FOXOl、DLX5 mRNA表达的影响在无抑制剂预处理组中(DMSO-对照组和DMSO-C3G组比较),各基因表达水平:ATF4(FC=1.15,P0.05)、OC(FC=1.73,P0.05)、DLX5(FC=1.26,P0.01)和FOX O1(FC=1.30,P0.05)。PD98059预处理后C3G组与抑制剂-对照组相比OC(FC=0.99,P=0.93)和ATF4(FC=1.05,P=0.70)mRNA表达水平差异消失。抑制剂-对照组与DMSO-对照组相比RSK2 mRNA水平显著升高(FC=1.90,P0.01),C3G组无此变化。SB202192预处理后,C3G组与抑制剂-对照组相比OSX(FC=2.11,P0.01)、DLX5(FC=1.32,P0.01)表达水平升高。SP600125预处理后,C3G组FOX O1(FC=1.31,P=0.13)和ATF2(FC=1.30,P=0.52)mRNA水平与抑制剂-对照组相比均无明显统计学差异。8.C3G对MC3T3-E1细胞中MAPK通路关键蛋白表达及磷酸化水平的影响C3G处理后ERK1/2磷酸化水平上升(P0.05),JNK(P=0.27)及P38(P=0.6)磷酸化水平无明显改变。总ERK1/2(P=0.08)、JKN(P=0.31)、P38(P=0.64)水平与对照组相比均无明显改变。结 论1.C3G能够在体外条件下促进人原代成骨细胞和小鼠源成骨细胞株MC3T3-E1增殖。2.C3G能够降低成骨细胞分化早期的标志性蛋白Runx2和ALP的mRNA表达,提高成骨细胞分化晚期的标志性蛋白OC表达,并提高成骨细胞的矿化能力。3.C3G可能通过ERK1/2通路调节成骨细胞分化。
【学位授予单位】:沈阳医学院
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2019
【分类号】:R580
【图文】:

曲线,试验评估,骨细胞,组间


B2B3茜素红染色(200x)。逡逑二、C3G处理对MC3T3-E1细胞及人成骨细胞增殖的影响逡逑如图2所示,MTT结果显示C3G处理后两种细胞增殖率上升,与对照组相比逡逑差异显著(/>邋<0.05)。随着时间延长,C3G各浓度组与对照组之间的差距逐渐减逡逑小,在72h时C3G邋25(imol/L和50[imol/L浓度组与对照组之间的差距消失(A0.05邋),逡逑但200卜rniol/L和400pmol/L对成骨细胞增殖能力依然有一定的增强作用(PO.05邋)。逡逑RTCA结果与MTT相似,如图2.C所示,总计96h的记录时间,其中0-24h逡逑为等待贴壁,24-48h为无血清同步化处理,48-96h为C3G处理阶段。因此在观察逡逑结也时C3G处理细胞的时长为48h。从曲线可以直观地看出,在C3G处理的前逡逑24h各浓度组细胞指数显著加大,而后24h则稳步上升,各组间差距逐渐收窄。细逡逑胞指数曲线的波浪状浮动为换液时开关培养箱导致二氧化碳浓度变化从而影响微逡逑孔板信号采集。逡逑26逡逑

照片,原代成骨细胞,形成情况,矿化


四、C3G处理对人成骨细胞矿化能力的影响逡逑如图4所示,使用含有C3G的完全培养基中培养成骨细胞7d后,各浓度组细逡逑胞的钙化结节密度如照片所示。显微镜的放大倍数调整为40x,并且镜头位于培逡逑养孔的正中心。中浓度(lOO^mol/L)和低浓度(50nmol/L)的C3G与对照组相逡逑比呈现出矿化能力增强的趋势。与对照组或中浓度、低浓度组相比,高C3G浓度逡逑(200pmol/邋L)的人原代成骨细胞能产生更多红染的钙化点。逡逑

细胞内,情况,细胞,浓度


图5邋A不同浓度C3G处理后细胞内ALP活性情况(n=4)。B不同浓度C3G处逡逑细胞内CTX-丨水平(n=4)。C不同浓度C3G处理后细胞内OC水平(n=4)。逡逑*尸<0.05;邋**尸<0.07;均为与C3G浓度0(imol/L组比较。逡逑C3G处理对MC3T3-E1细胞ALP、BMP-2和Runx2邋mRNA表达的逡逑30逡逑

【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 李善昌;赵刚;王飞飞;付雅楠;;小檗碱对小鼠成骨细胞增殖和成骨活性的影响[J];黑龙江医药科学;2016年06期

2 向英;张勇;;金雀异黄素对成骨细胞增殖和分化的影响[J];遵义医学院学报;2007年S1期

3 齐锦生,李恩,王芳;丹皮酚对过氧亚硝基阴离子致成骨细胞增殖抑制的影响[J];中国中西医结合杂志;2003年02期

4 卢宇;费小蔷;;吡格列酮对小鼠成骨细胞增殖和凋亡的影响[J];广西医科大学学报;2017年09期

5 姚曼;梁淑芳;程彬彬;凌昌全;;人参皂苷促进小鼠成骨细胞增殖的作用及机制[J];湖南中医药大学学报;2015年09期

6 刘冰;卢蕾阳;高飞;杨静;;胰岛素样生长因子-1对甲状旁腺激素介导成骨细胞增殖及成骨活性的影响[J];中国骨质疏松杂志;2014年11期

7 陈述祥;康乐;;中药促成骨细胞增殖和分化的机制与作用[J];中国组织工程研究;2012年07期

8 王东;苏宜香;;染料木黄酮对人成骨细胞增殖及分化影响[J];中国公共卫生;2009年03期

9 邵培;曹桂芬;赵美林;侯海娟;黄萍;;中药桂皮醛对成骨细胞增殖及成骨功能的影响[J];中国口腔种植学杂志;2009年04期

10 金鑫;李灵芝;唐存贵;;大黄酸-雌酮对大鼠成骨细胞增殖和分化的作用[J];武警医学院学报;2008年06期

相关会议论文 前10条

1 杨武斌;王平;;鹿角胶对成骨细胞增殖和分化的影响[A];中华中医药学会中药实验药理分会2014年学术年会论文摘要汇编[C];2014年

2 王志;阳世勇;韩博;;氟通过重组细胞骨架影响小鼠成骨细胞增殖与分化[A];中国畜牧兽医学会2010年学术年会——第二届中国兽医临床大会论文集(下册)[C];2010年

3 杨林;陶天遵;柳海峰;吴丽萍;吴莹;;中药三花散对体外成人成骨细胞增殖、分化和凋亡的影响[A];第九届全国骨质疏松年会暨第六届全国钙剂年会会议文集[C];2003年

4 杨林;陶天遵;吴丽萍;陶树清;吴莹;刘枫晨;刘伟;张淑云;田军;王新婷;柳海峰;王晓亚;;中药三花散对体外成人成骨细胞增殖、分化和凋亡的影响(摘要)[A];第五次全国创伤康复暨第七次全国运动疗法学术会议论文汇编[C];2004年

5 李盛华;刘坤;宋贵杰;何志军;;中药损伤散对体外成骨细胞增殖与分化的影响[A];第11届全国中西医结合骨伤科学术研讨会论文汇编[C];2003年

6 杨林;陶天遵;李晓蕊;吴丽萍;陶树清;吴莹;刘枫晨;刘伟;张淑云;田军;王新婷;柳海峰;王晓亚;;中药三花散对体外成人成骨细胞增殖、分化和凋亡的影响[A];中华医学会第三次全国骨质疏松和骨矿盐疾病学术会议暨骨质疏松诊断技术继续教育学习班论文汇编[C];2004年

7 杨林;陶天遵;刘枫晨;刘伟;张淑云;闻颍;陶树清;吴丽萍;;地塞米松对成人成骨细胞增殖和分化影响的实验研究[A];第九届全国骨质疏松年会暨第六届全国钙剂年会会议文集[C];2003年

8 秦腊梅;肖永华;姜良铎;;几种中药对体外培养成骨细胞增殖的影响[A];第五次全国中西医结合实验医学学术研讨会论文集[C];2001年

9 施德源;陈统一;崔大敷;;人工合成成骨生长肽促进成骨细胞增殖及改善骨质疏松的作用[A];中华医学会第三次全国骨质疏松和骨矿盐疾病学术会议暨骨质疏松诊断技术继续教育学习班论文汇编[C];2004年

10 张西正;李彬;郭勇;吴金辉;;不同应变对成骨细胞增殖活性及功能状态的影响[A];天津市生物医学工程学会2004年年会论文集[C];2005年

相关重要报纸文章 前3条

1 殷晓雪 陈仲强 党耕町;北京大学——淫羊藿苷可促进人成骨细胞增殖与分化[N];中国医药报;2006年

2 记者  徐朝晖;“迪耳”8年攻关国家“863计划”[N];金华日报;2006年

3 首席记者 徐朝晖;“迪耳”攻克我市首个“863项目”[N];金华日报;2007年

相关博士学位论文 前10条

1 钟近洁;氟对成骨细胞增殖及其MCM3基因表达的影响[D];新疆医科大学;2006年

2 李鹏;流体剪切力促进成骨细胞增殖机制的研究[D];兰州大学;2012年

3 陈明;0.5Gy X线通过多重信号通路促进成骨细胞增殖与分化[D];苏州大学;2014年

4 钱卫庆;淫羊藿苷促成骨细胞增殖中非核效应及机制研究[D];苏州大学;2016年

5 杨力;胰高血糖素样肽-1改善小鼠成骨细胞增殖与分化功能的机制研究[D];南方医科大学;2014年

6 钟俊;OGP作用机制及其对MC3T3-E1成骨细胞增殖和粘附作用的研究[D];武汉大学;2012年

7 黄佳;雌二醇通过Wnt/β-catenin信号通路调节成骨细胞增殖的作用机制研究[D];中南大学;2014年

8 黄钢勇;脑灰质促进成骨的机制研究[D];复旦大学;2010年

9 唐晓露;1、罗格列酮对颅骨成骨细胞增殖及分化的影响及其作用机制 2、异黄酮类植物雌激素对ERE和CRE转录活性的调节[D];第二军医大学;2014年

10 冯志远;寡核苷酸(ODN)促成骨细胞增殖活化的作用及机制研究[D];吉林大学;2011年

相关硕士学位论文 前10条

1 胡博森;矢车菊素-3-O-葡萄糖苷经MAPK信号通路调节成骨细胞增殖和分化的作用研究[D];沈阳医学院;2019年

2 王钰慧;钙螯合胶原肽对成骨细胞增殖和活性影响的研究[D];山西农业大学;2016年

3 丁宁;NFATc1-ERK5通路介导FSS促进成骨细胞增殖和BMP7表达[D];兰州大学;2018年

4 康鑫;葛根素促进成骨细胞增殖及信号调控机制的实验研究[D];兰州大学;2015年

5 贾可丽;流体剪切力对成骨细胞增殖作用的分子机制体外实验研究[D];山东大学;2012年

6 王长军;骨髓间充质干细胞与成骨细胞复合培养对成骨细胞增殖的影响[D];南京医科大学;2011年

7 余晓栋;体外冲击波联合血小板衍生生长因子对成骨细胞增殖的影响[D];山西医科大学;2010年

8 汪建;持续与间歇低载荷振动对成骨细胞增殖及分化能力影响的实验研究[D];吉林大学;2015年

9 李亚平;外源性金属离子对原代培养的成骨细胞增殖、分化及矿化功能的影响[D];河北大学;2011年

10 蔡明军;鹿茸多肽的提取分离及其促进成骨细胞增殖作用的研究[D];吉林大学;2008年



本文编号:2799341

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/nfm/2799341.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户80734***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com