当前位置:主页 > 医学论文 > 外科论文 >

高氧微环境刺激与细胞连续分裂在体外人髓核细胞老化中作用的初探

发布时间:2018-03-13 08:10

  本文选题:微环境刺激 切入点:连续分裂 出处:《东南大学》2015年硕士论文 论文类型:学位论文


【摘要】:目的:探讨高氧微环境刺激与细胞连续分裂在体外人髓核细胞老化过程中的效应,通过比较两种因素作用后人髓核细胞分泌的基质金属蛋白酶(matrix metalloproteinases, MMP)-1,-3,-10及-12的改变幅度大小,明确两者的效应强度,为退变椎间盘的生物学治疗提供依据。方法:体外单层系统培养人椎间盘髓核细胞,制作阴性对照组(negative control, NC)、应激诱导的过早老化组(stress-induced premature senescence, SIPS)和复制性老化组(replicative senescence, RS)。通过SA-β-Gal染色计数,PI染色、流式细胞术,以及Annexin V-FITC/PI染色、流式细胞术评价各组细胞。通过Agilent人全基因4*44K芯片对产生差异的指标进行筛选,对于筛选出的MMP-1,-3,-10及-12四个指标,使用实时定量PCR技术测定在三组中的表达水平,并进行统计学分析。结果:1.细胞老化率测定:NC组为(4.67±1.83)%,SIPS组为(80.92±5.44)%,RS组为(77.08±3.32)%。SIPS组与RS组间无统计学差异(P0.05):2.G1期细胞比例:NC组为(57.28±2.24)%,SIPS组为(84.48±1.08)%,RS组为(88.87±3.15)%。SIPS组与RS组间无统计学差异(P0.05);3.细胞凋亡率:NC组为(2.51±0.45)%,SIPS组为(5.40±0.78)%,RS组为(8.69±0.92)%。4. Agilent人全基因4*44K芯片显示大量指标在三组样本中的表达发生变化,选取MMP-1,-3,-10及-12进行实时定量PCR检测:5.与NC组相比,两老化组中MMP-1,-3,-10及-12的表达水平均显著提高(P0.05);两老化组间也存在差异性,上述MMPs在SIPS组中显著高于RS组(P0.05)。结论:1.高氧微环境刺激与细胞连续分裂均可在体外环境下,导致人髓核细胞的老化,使细胞老化率、G1期细胞比例以及细胞凋亡率增高;2.老化的髓核细胞除上述改变外,其生物学行为也发生变化,大量分泌表型发生显著改变;3.高氧微环境刺激与细胞连续分裂造成的老化人髓核细胞,其生物学改变具有差异性。通过比较部分MMPs表达的上调幅度发现,高氧微环境刺激在体外人髓核细胞老化中的作用更为显著。
[Abstract]:Objective: to investigate the effects of hyperoxia microenvironment stimulation and cell division on the aging process of human nucleus pulposus cells in vitro. In order to provide the basis for biological treatment of degenerative intervertebral disc methods: human disc nucleus pulposus cells were cultured in a monolayer system in vitro. Negative control, NCX, stress-induced premature senescence (SIPSs) and replicative senescence (RSV) were made in negative control group. Pi staining, flow cytometry, and Annexin V-FITC / Pi staining were performed by SA- 尾 -Gal staining. Flow cytometry (FCM) was used to evaluate the cells in each group. The differentially expressed indexes were screened by Agilent human complete gene 44K microarray, and the expression of MMP-1 + -3 + -10 and -12 were measured by real-time quantitative PCR technique in the three groups. Results 1. The cell aging rate was 4.67 卤1.83 in the control group and 80.92 卤5.44 in the SIPS group. There was no statistical difference between the two groups. There was no statistical difference between the two groups (P0.05: 2.G1 phase cell ratio: 57.28 卤2.24SPS group vs 84.48 卤1.08SPS group). There was no statistical difference between the SIPS group and the RS group. There was no statistical difference between the two groups (P 0.05). The apoptotic rate was 2.51 卤0.45 in the control group and 5.40 卤0.78 in the SIPS group. The percentage of apoptotic cells in the RS group was 8.69 卤0.92 卤0.92%. 4. The expression of a large number of markers in the three groups was detected by Agilent human gene 44-K microarray. Compared with NC group, the expression levels of MMP-1 + -3 + -10 and -12 in aging group were significantly higher than those in control group (P 0.05), and there were also differences between the two aging groups. The MMPs in SIPS group was significantly higher than that in RS group (P 0.05). Conclusion: 1. Hyperoxia microenvironment stimulation and continuous cell division can lead to the aging of human nucleus pulposus cells in vitro. In addition to the above changes, the biological behavior of aging nucleus pulposus cells also changed. The biological changes of aging human nucleus pulposus cells caused by hyperoxia microenvironment stimulation and continuous cell division were different. By comparing the up-regulation of partial MMPs expression, it was found that there were significant differences in the biological changes of the aging human nucleus pulposus cells caused by hyperoxia microenvironment stimulation and continuous cell division. Hyperoxia microenvironment stimulation plays a more important role in the aging of human nucleus pulposus cells in vitro.
【学位授予单位】:东南大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2015
【分类号】:R681.5

【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 张丽;关晓明;马迅;满孝旭;赵胜;;人端粒酶反转录酶基因感染对人髓核细胞基本特性的影响[J];中国药物与临床;2013年S1期

2 李锋;李光辉;陶凤华;郭风劲;许涛;潘峰;;兔髓核细胞诱导大鼠骨髓间充质干细胞分化为髓核细胞的研究[J];生物骨科材料与临床研究;2006年06期

3 李旭;侯筱魁;汤亭亭;李惠武;郭刚;裴国献;;人转化生长因子β_1重组腺病毒转染传代髓核细胞对细胞外基质合成的影响[J];中国修复重建外科杂志;2007年12期

4 伊友明;陶凤华;杜静;潘峰;李锋;;转化生长因子-β1和胰岛素样生长因子-1对兔退变髓核细胞生物学活性的影响[J];华中医学杂志;2009年03期

5 刘瑞平;徐南伟;;退变兔髓核细胞和正常髓核细胞生物学特性的比较[J];实用临床医药杂志;2009年21期

6 梁伟国;叶冬平;戴丽冰;沈雁;;体外培养人正常椎间盘髓核细胞与退变髓核细胞的生物学性状比较:可以为干预退变髓核细胞提供最佳时机吗?[J];中国组织工程研究与临床康复;2010年28期

7 王锋;朱悦;;影响髓核细胞表达水通道蛋白1相关因素的实验研究[J];中华临床医师杂志(电子版);2011年06期

8 牛建鹏;卫陈刚;任龙韬;;髓核细胞及其生物力学研究进展[J];临床医药实践;2011年08期

9 李锋生;梁伟国;叶冬平;戴丽冰;陈鸿辉;;体外培养人退变髓核细胞的生物学性状[J];中国组织工程研究与临床康复;2011年28期

10 满孝旭;马迅;关晓明;张丽;;肝细胞生长因子对体外培养的人退变髓核细胞生物学活性影响[J];中华临床医师杂志(电子版);2011年24期

相关会议论文 前10条

1 赵秀宝;马信龙;马剑雄;李稚君;李爽;孙晓雷;;周期性牵张力联合灌注培养对大鼠髓核细胞影响的研究[A];天津市生物医学工程学会第30次学术年会暨生物医学工程前沿科学研讨会论文集[C];2010年

2 王会仁;董健;周晓岗;李熙雷;林红;;人脂肪及骨髓来源间充质干细胞与髓核细胞非接触共培养后的类髓核分化效应研究[A];第十九届全国中西医结合骨伤科学术研讨会论文汇编[C];2012年

3 李长青;周跃;罗刚;张传志;;仿生髓核组织工程支架材料对体外培养髓核细胞合成代谢的影响[A];第八届全国脊柱脊髓损伤学术会议论文汇编[C];2007年

4 余磊;廖华;熊绍虎;;人髓核细胞体外培养体系的建立[A];解剖学杂志——中国解剖学会2002年年会文摘汇编[C];2002年

5 梁伟国;叶冬平;戴丽冰;陈鸿辉;;BMP-2对人退变椎间盘髓核细胞影响的实验研究[A];第20届中国康协肢残康复学术年会论文选集[C];2011年

6 梁伟国;叶冬平;戴丽冰;陈鸿辉;;bFGF对人退变椎间盘髓核细胞影响的实验研究[A];第20届中国康协肢残康复学术年会论文选集[C];2011年

7 王海强;;CK8在退变椎间盘髓核细胞中的表达[A];中国中西医结合学会脊柱医学专业委员会第六届学术年会论文集[C];2013年

8 叶冬平;梁伟国;戴丽冰;沈雁;;GFP-hTERT转染人正常髓核细胞构建永生化髓核细胞株的实验研究[A];第20届中国康协肢残康复学术年会论文选集[C];2011年

9 李长青;周跃;罗刚;张传志;;仿生髓核组织工程支架材料对体外培养髓核细胞生长增殖的影响[A];第八届全国脊柱脊髓损伤学术会议论文汇编[C];2007年

10 伍耀宏;徐宝山;李秀兰;杨强;张杨;夏群;张春秋;许海委;;软骨脱细胞基质多孔支架与山羊髓核细胞生物相容性研究[A];第十九届全国中西医结合骨伤科学术研讨会论文汇编[C];2012年

相关博士学位论文 前10条

1 叶冬平;microRNA-155通过下调ERK1/2水平影响人正常椎间盘髓核细胞退变的实验研究[D];暨南大学;2015年

2 高锋;低强度脉冲超声波促进人髓核细胞合成胞外基质功能性成分的体外实验研究[D];苏州大学;2011年

3 李喜功;人骨髓间充质干细胞与退变髓核细胞体外共培养的实验研究[D];苏州大学;2011年

4 张晓军;低强度脉冲超声对立体培养的人退变椎间盘髓核细胞的影响实验研究[D];重庆医科大学;2013年

5 马凯歌;自噬参与压力诱导的髓核细胞损伤及其机制研究[D];华中科技大学;2014年

6 石健;人骨形态发生蛋白-7基因转染对原代培养兔髓核细胞生物学活性的影响[D];第二军医大学;2006年

7 李政;瘦素在人腰椎间盘髓核退变中的作用及机制研究[D];北京协和医学院;2013年

8 王大武;SIRT1对退变椎间盘髓核细胞凋亡调控及分子机制研究[D];重庆医科大学;2012年

9 夏平;地塞米松对兔椎间盘髓核细胞增殖及聚集蛋白聚糖表达的影响[D];武汉大学;2010年

10 王平;限制性与非限制性压应力对椎间盘髓核细胞表达蛋白多糖的影响[D];重庆大学;2011年

相关硕士学位论文 前10条

1 任国梁;退变毮核细胞拉伸实验的形态学研究[D];山西医科大学;2015年

2 唐浩;CD24在人髓核细胞鉴定应用中的相关研究[D];昆明医科大学;2015年

3 刘永明;过表达NDRG2基因促进人髓核细胞衰老的体外实验研究[D];第四军医大学;2015年

4 杨晨;活化T细胞核因子对髓核细胞中ADAMTS-4及-5表达的调控作用[D];第二军医大学;2015年

5 胡津铨;骨髓间充质干细胞对于髓核细胞炎性损伤的保护作用[D];第二军医大学;2015年

6 赵光宇;不同共培养条件下兔NPCs诱导BMSCs向类髓核细胞分化的实验研究[D];昆明医科大学;2015年

7 周栩;Id1基因对BMP-2维持兔髓核细胞软骨特性的影响[D];重庆医科大学;2015年

8 宋鹏;高氧微环境刺激与细胞连续分裂在体外人髓核细胞老化中作用的初探[D];东南大学;2015年

9 徐远;大鼠骨髓间充质干细胞与髓核细胞体外共培养的实验研究[D];北京中医药大学;2011年

10 卫陈刚;正常和退变髓核细胞粘弹性的测量[D];山西医科大学;2011年



本文编号:1605522

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/waikelunwen/1605522.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户b8582***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com