白介素-1β对退变椎间盘髓核细胞凋亡和分解代谢的影响及其调控机制研究
本文选题:IL-1β + 无血清 ; 参考:《重庆医科大学》2017年博士论文
【摘要】:腰痛(low back pain,LBP)是导致现代人活动功能障碍,影响生活质量的常见原因,现阶段临床尚缺乏有效的治疗手段。椎间盘退变(intervertebral disc degeneration,IVD)被认为是导致腰痛的重要原因,但其确切发病机制并不清楚。既往研究表明炎症因子与椎间盘退变诱导的盘源性腰痛密切相关,白介素-1β(interleukin-1 beta,IL-1β)是其中研究较为广泛的一个因子。但IL-1β对人退变髓核细胞(nucleus pulposus cells,NPCs)凋亡和分解代谢的影响及其调控机制尚缺乏系统研究。本课题拟从IL-1β通过线粒体途径诱导NPCs凋亡;IL-1β介导的线粒体损伤激活了NPCs自噬;自噬抑制IL-1β诱导的NPCs凋亡;SIRT1通过TLR2/NF-κB信号通路抑制IL-1β对胞外基质的分解作用四个方面分别进行阐述。第一部分IL-1β通过线粒体途径诱导NPCs凋亡目的探讨IL-1β是否通过线粒体途径介导退变NPCs凋亡。方法将来自于正常和退变组的髓核组织,采用western blot、免疫组化和TUNEL染色分别原位比较IL-1β表达和细胞凋亡情况。采用酶序贯消化法分离、培养退变组的髓核细胞。以不同浓度IL-1β作用后,Annexin V/PI流式细胞术检测细胞凋亡,CCK-8检测细胞增殖以此筛选最佳作用浓度。分别采用大体形态观察、Hoechst 33258染色和流式细胞术检测血清存在与否对IL-1β诱导NPCs凋亡是否存在影响。Western blot检测线粒体凋亡通路关键蛋白Bax、Bcl-2和细胞色素C;DCFH-DA荧光探针检测细胞内ROS表达量;酶标仪测定线粒体凋亡通路最后执行蛋白caspase-3和caspase-9酶活性。结果退变髓核组织中IL-1β表达和细胞凋亡数均要显著高于正常组(P㩳0.05),提示IL-1β高表达与退变髓核中细胞凋亡增高存在联系。筛选出10ng/ml浓度IL-1β为最佳亚致死剂量。在血清剥夺条件下,IL-1β可以明显诱导NPCs凋亡(P㩳0.05),但正常培养条件下血清可以中和IL-1β的细胞毒性作用。IL-1β可以明显诱导Bax/Bcl-2蛋白表达比增高(P㩳0.05),以及促进Cyt C从线粒体释放入胞质中,提示线粒体凋亡通路被激活;ROS和caspase酶活性检测进一步表明,IL-β作用可以明显提高NPCs内ROS表达(P㩳0.05),以及显著提高caspase-3和caspase-9酶活性(P㩳0.05)。结论IL-1β在无血清条件下,可以通过线粒体途径明显诱导退变NPCs凋亡。第二部分IL-1β介导的线粒体损伤激活了NPCs自噬目的探讨IL-1β对NPCs的线粒体是否具有直接损伤作用,损伤的线粒体能否进一步激活自噬。方法以10%FBS正常培养组作为对照,在血清剥夺条件下加或不加10ng/ml IL-1β刺激,采用JC-1染色检测线粒体膜电位,ATP检测试剂盒测定细胞内ATP合成量,透射电镜直接观察线粒体超微结构,直接判断IL-1β对线粒体损伤的作用。另一方面,Western blot测定自噬相关蛋白LC3和P62;为了更加直接观察IL-1β对自噬的影响,采用含GFP-LC3腺病毒转染NPCs,观察绿色荧光斑点数,以此判断自噬激活器情况;为了进一步验证IL-1β对自噬的激活作用是因为激活了“自噬流”还是阻碍了自噬的降解,采用自噬的抑制剂0.1μmol/L Bafilomycin A1(BAF)预处理2h再检测LC3和P62的表达;最后采用经典透射电镜观察自噬体判断在IL-1β作用下NPCs内自噬的表达情况。结果在血清剥夺条件下可以导致线粒体膜电位适度下降,但一旦加入IL-1β作用,膜电位则进一步显著降低(P㩳0.05);虽然0%FBS培养条件下ATP合成量与对照组无明显差别(P㧐0.05),但IL-1β显著降低了ATP合成(P㩳0.05);电镜观察结果显示0%FBS组线粒体形态发生肿胀或空泡样变性;而在IL-1β炎性刺激下,线粒体形态进一步改变,发生基质固缩,线粒体内嵴断裂,外膜完整性消失。上述结果提示IL-1β可以明显诱导线粒体发生损伤。进一步研究结果显示,IL-1β作用下显著提高了LC3-II/LC3-I蛋白表达比,而降低了P62表达,提示IL-1β可以激活退变NPCs内细胞自噬。GFP-LC3激光共聚焦结果进一步证实,IL-1β处理后细胞内绿色荧光斑点数显著增多。接着采用BAF处理后,western blot结果显示LC3-II/LC3-I表达比和P62蛋白表达均显著上升(P㩳0.05),由此证明IL-1β激活了NPCs自噬流爆发,而非阻碍了自噬的降解。透射电镜直接观察结果表明0%FBS+IL-1β组观察到不仅自噬体数量增多,还可以在个别自噬-溶酶体内观察到尚未被完全消化的线粒体结构,进一步证明了IL-1β介导的自噬具有清除损伤线粒体的作用。结论IL-1β介导了退变NPCs线粒体损伤,并进一步激活了自噬。第三部分自噬抑制IL-1β诱导的NPCs凋亡目的探讨IL-1β所激活的自噬对NPCs凋亡影响。方法采用自噬的特异性抑制剂3-MA(5mmol/L)预处理NPCs后,流式细胞术检测细胞凋亡率,JC-1染色检测对线粒体膜电位影响。为进一步验证IL-1β所激活的自噬是否为代偿性的线粒体自噬(mitophagy),western blot分别检测了mitophagy的关键诱导蛋白Parklin的线粒体和胞质表达。采用自噬激动剂RAP(50nmol/L)预处理后,同时转染Ad-GFP-LC3和Ad-HBm Tur-Mito腺病毒,其中GFP-LC3标记自噬体,而HBm Tur-Mito标记线粒体,转染后通过激光共聚焦观察共定位情况,以此判断是否发生了线粒体自噬。结果3-MA抑制NPCs中自噬活性后,细胞凋亡显著增加(P㩳0.05),线粒体膜电位则进一步降低(P㩳0.05),说明自噬被抑制后,NPCs线粒体功能受到了进一步破坏。加入IL-1β刺激后发现Parkin在线粒体上的表达明显上升(P㩳0.05),而在胞质中的表达明显下降(P㩳0.05),说明其发生了线粒体转位,提示诱导了mitophagy。而加入自噬激动剂RAP后,黄色荧光斑点进一步增多,证明IL-1β所激活的自噬与线粒体自噬有关。结论IL-1β介导的自噬激活,具有代偿性保护NPCs凋亡作用,部分参与了线粒体自噬地发生。第四部分SIRT1通过TLR2/NF-κB信号通路抑制IL-1β对胞外基质分解作用目的探讨在IL-1β促分解作用下,SIRT1对ECM的调控作用及其潜在机制。方法将来自于正常和退变组的髓核组织,采用免疫组化检测SIRT1、MMP-3和MMP-13原位表达,western blot检测各个髓核组织中SIRT1、II型胶原和aggrecan蛋白表达差异。采用SIRT1过表达慢病毒和SIRT1-si RNA慢病毒靶向调控NPCs中SIRT1表达,探讨对ECM的表达调控作用。采用western blot、免疫共沉淀和细胞免疫荧光进一步探讨SIRT1是否通过TLR2/NF-κB信号通路参与了ECM表达调控。结果组织的免疫组化和western blot结果显示SIRT1在退变髓核髓核中表达明显下降,而基质降解酶MMP-3和MMP-13表达明显升高,伴随着ECM主要成分COL2A1和aggrecan表达降低。这一结果提示SIRT1与ECM表达之间存在密切联系。采用慢病毒靶向调控SIRT1表达后发现,SIRT1过表达可以明显抑制IL-1β对COL2A1和aggrecan地降解作用,而沉默SIRT1表达可以明显增加MMP-3和MMP-13表达。提示SIRT1能够抑制IL-1β对ECM降解作用。进一步探讨其潜在机制发现,在加入IL-1β刺激后,TLR2-NF-κB通路被激活,免疫共沉淀显示SIRT1与P65之间存在相互作用关系,SIRT1过表达后,TLR2以及P65的总蛋白、乙酰化蛋白表达均降低。此外,当P65表达降低后,MMP-3和MMP-13的表达也随之降低。免疫荧光显示IL-1β所诱导的P65核转位,并不受TLR2表达沉默的影响。由此我们初步揭示了在IL-1β作用下SIRT1与TLR2-NF-κB通路相互关系。结论SIRT1通过TLR2/NF-κB信号通路抑制IL-1β对胞外基质分解作用。
[Abstract]:Interleukin - 1尾 ( IL - 1尾 ) induced NPCs apoptosis by mitochondrial pathway . IL - 1尾 ( IL - 1尾 ) induced apoptosis of NPCs by mitochondrial pathway . In order to further verify the effect of IL - 1尾 on autophagy , it was suggested that IL - 1尾 could significantly decrease the expression of LC3 - II / LC3 - I . The expression of IL - 1尾 in nucleus pulposus of nucleus pulposus was significantly inhibited by Western blot . The expression of IL - 1尾 in nucleus pulposus was significantly inhibited by Western blot , and the expression of MMP - 3 and MMP - 13 was decreased .
【学位授予单位】:重庆医科大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2017
【分类号】:R681.53
【相似文献】
相关期刊论文 前10条
1 王建霞,黄永富,张清泉;细胞凋亡与疾病关系[J];交通医学;2000年06期
2 王东生,袁肇凯,郭志华;细胞凋亡与中医药[J];中国中医药信息杂志;2000年12期
3 万晓艳,于苏国,郭玉芹,何庆;细胞凋亡与自身免疫性甲状腺疾病的研究进展[J];中国地方病防治杂志;2002年06期
4 祝伟民,林建棣,马晓东,段小平;运动与细胞凋亡[J];中国临床康复;2004年27期
5 王会玲,景文莉,张小红,高维娟;细胞凋亡与心肌缺血-再灌注损伤[J];承德医学院学报;2005年04期
6 梁薇;细胞凋亡的中药调节机制[J];四川中医;2005年11期
7 张松彪;细胞凋亡与细胞养生[J];中国科技产业;2005年01期
8 杨竹林,伍汉文;细胞凋亡调控因素有关基因的研究[J];国外医学(生理、病理科学与临床分册);1997年02期
9 刘恩梅,杨锡强;细胞凋亡及其影响因素[J];重庆医学;1998年01期
10 ;美开发调控细胞凋亡药物[J];中国肿瘤;1999年07期
相关会议论文 前10条
1 陈颖丽;李前忠;;不同亚细胞位置的细胞凋亡蛋白质的结构特性分析[A];第十一次中国生物物理学术大会暨第九届全国会员代表大会摘要集[C];2009年
2 孙英丽;赵允;朱山;翟中和;;植物细胞凋亡及其机理的研究[A];中国细胞生物学学会第七次会议论文摘要汇编[C];1999年
3 刘二龙;袁慧;;锌与细胞凋亡[A];2003全国家畜内科学学术研讨会论文专辑[C];2003年
4 邱洁;高海青;;锌在细胞凋亡中的作用研究进展[A];山东省微量元素科学研究会第三届学术研讨会论文汇编[C];2006年
5 俞雅萍;;细胞凋亡的机制及途径和影响因素[A];华东六省一市生物化学与分子生物学学会2006年学术交流会论文集[C];2006年
6 于青;袁伟杰;姚建;;晚期糖基化终末产物引起足细胞凋亡的机制[A];2007年浙沪两地肾脏病学术年会资料汇编[C];2007年
7 季宇彬;尹立;汲晨锋;;调控细胞凋亡的线粒体因素[A];肿瘤病因学研究与中西医结合肿瘤综合诊疗交流研讨会论文集[C];2009年
8 吴经纬;汤长发;;运动中细胞凋亡的线粒体变化特征[A];湖南省生理科学会2006年度学术年会论文摘要汇编[C];2007年
9 蒲小平;李长龄;屠鹏飞;宋志宏;;中药肉丛蓉成分抗神经细胞凋亡的实验研究[A];第七届全国生化药理学术讨论会论文摘要集[C];2000年
10 江键;宋诚荣;崔黎丽;方影;王小平;;静电场对细胞凋亡作用的初步探讨[A];中国物理学会第九届静电学术年会论文集[C];2000年
相关重要报纸文章 前10条
1 商东;“细胞凋亡”与临床医学[N];中国医药报;2001年
2 张志军;细胞凋亡与中医药[N];中国医药报;2002年
3 ;“细胞凋亡疗法”正逐步成为治疗癌症的新途径[N];中国高新技术产业导报;2002年
4 记者张建松;治疗癌症新途径:细胞凋亡疗法[N];科技日报;2002年
5 李明辉;“细胞凋亡”治癌症[N];医药导报;2002年
6 洪敏;细胞凋亡研究引人关注[N];中国医药报;2008年
7 陶春祥;细胞凋亡对心脏疾病的影响[N];中国医药报;2003年
8 本报实习记者 梁媛媛;薛定:发现癌症“开关”[N];北京科技报;2010年
9 高书明;诱导癌细胞凋亡[N];中国医药报;2004年
10 勇汇;中药诱导癌细胞凋亡研究进展[N];中国医药报;2002年
相关博士学位论文 前10条
1 杨利;系列多氮类化合物的抗肿瘤活性研究[D];武汉大学;2012年
2 张浩;从分子、细胞和动物水平研究铅诱发氧化损伤及细胞凋亡的效应与机理[D];山东大学;2015年
3 何欣怡;家蚕微孢子虫(Nosema bombycis)抑制家蚕BmN细胞凋亡的功能研究[D];浙江大学;2015年
4 冯全服;从线粒体途径研究川芎嗪诱导HepG2细胞凋亡效应机制[D];南京中医药大学;2015年
5 张晓倩;高糖诱导Bim蛋白高表达而促肾近曲小管上皮细胞凋亡的机制探讨[D];山东大学;2015年
6 孙健玮;PTEN基因负调控Raf1磷酸化的作用及其对PC3细胞凋亡的影响[D];昆明医科大学;2014年
7 徐林艳;肿瘤细胞凋亡过程中TNFRSF10B和CFLAR调控机制研究[D];山东大学;2015年
8 樊庆端;生物调控网络的建模与动力学行为研究[D];上海大学;2015年
9 王德选;WNK_3对钠氯协调转运子的调节及在胚肾细胞凋亡中的保护作用[D];南方医科大学;2015年
10 叶嘉;Nogo-B在急性肺损伤肺泡上皮细胞凋亡中的作用[D];第二军医大学;2015年
相关硕士学位论文 前10条
1 曹璐璐;2,2’,4,4’-四溴联苯醚(BDE-47)对人胚肾细胞(HEK293)的毒理效应及作用机制研究[D];中国科学院烟台海岸带研究所;2015年
2 张薇;蒜头果蛋白诱导HepG-2细胞凋亡的研究[D];云南民族大学;2015年
3 唐建国;视黄醇X受体出核抑制对神经元细胞凋亡的影响[D];福建医科大学;2015年
4 安璐;3-氯-1,2-丙二醇细胞毒性及其诱导HEK293细胞凋亡途径探究[D];江南大学;2015年
5 杨翔;Procaspase-8的异常表达抑制TRAIL诱导肿瘤细胞凋亡[D];昆明理工大学;2015年
6 张昌明;I3C通过调控p53泛素化对喉癌Hep-2细胞凋亡的影响[D];延边大学;2015年
7 彭涵;共轭亚油酸对仔猪脂肪细胞凋亡的影响[D];西南大学;2015年
8 李立辉;ΔFosB通过MMP-9调控山羊乳腺上皮细胞凋亡的分子机制[D];西北农林科技大学;2015年
9 杨鑫铖;Hedgehog信号通路在大鼠急性胰腺炎腺泡细胞凋亡中的作用[D];河北医科大学;2015年
10 贾琼琼;MicroRNA-214对H_2O_2损伤L6骨骼肌成肌细胞增殖和凋亡的影响[D];河北医科大学;2015年
,本文编号:2007376
本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/waikelunwen/2007376.html