当前位置:主页 > 医学论文 > 消化疾病论文 >

PXR激动剂在小鼠结肠炎中的作用及其与肠道RegⅢγ分泌的关系

发布时间:2020-08-15 17:31
【摘要】:研究背景炎症性肠病(inflammatory bowel disease,IBD)是一种慢性肠道炎症性疾病。IBD病因和发病机制都未明确。孕烷X受体(Pregnane X receptor,PXR)是一种孤儿核受体,在肝脏、骨骼及肠道等处表达。PXR能通过调控肠道内炎性因子的分泌,在肠道炎症反应中发挥作用。胰再生源蛋白Ⅲγ(regenerating ganeⅢγ,RegⅢγ)是抗菌肽中一种,能够限制细菌入侵肠道。目前对于PXR具体的抑制炎症作用研究较少。目的通过PXR激动剂干预结肠炎模型小鼠,观察结肠组织学改变,检测其结肠中Toll样受体4(toll-like receptors 4,TLR4)、髓样分化因子88(myeloid differentiation factor 88,MyD88)及RegⅢγ的表达水平以及血清中髓过氧化物酶(Myeloperoxidase,MPO)、肿瘤坏死因子α(tumor necrosis factor α,TNF-α)、干扰素γ(interferon-γ,IFN-γ)的含量并与正常对照组比较。了解PXR在结肠炎中的作用,探讨研究PXR靶向治疗药物的临床价值。方法SPF级雄性C57BL/6小鼠,共48只随机分为,12只/组。模型组给予葡聚糖硫酸钠(dextran sulphate sodium,DSS)干预。(1)正常对照组:自由饮食,无特殊处理。(2)DSS结肠炎模型组:实验第4天开始,自由饮用2.5%DSS溶液7天。(3)PCN+DSS模型组:从实验第1天开始,按10mg/kg的量,将PCN溶于玉米油中配成100ul的溶液,给予灌胃,自由饮食。实验第4天改为自由饮用2.5%DSS溶液7天,同时继续给予PCN灌胃,方法及用量同前。(4)PCN对照组:给予PCN灌胃10天,量及方法同(3),自由饮水及饮食。观察各组小鼠一般状况,并收集相关数据,进行DAI评分。于第11天处死全部小鼠,收集血液及结肠组织。ELISA检测血清中TNF-a、MPO、IFN-γ。结肠组织HE染色后进行HI评分,免疫组化方法检测结肠组织内TLR4及RegⅢγ的表达,定量PCR检测MyD88以及RegⅢγ的mRNA在结肠的表达情况。数据用统计软件SPSS 21.0处理,计量资料用均数±标准差(x±s)描述。Levene检验方差齐性,单因素方差分析(ANOVA)法进行方差分析。组间比较采用LSD-t法。定性资料的差异性比较选用秩和检验。取α=0.05,P0.05时差异有统计学意义。结果(1)采用LSD-t检验法两两比较各组小鼠DAI评分,结果提示DSS模型组小鼠与正常组比较,DAI评分较高(P0.05)。PCN+DSS组小鼠DAI评分与DSS模型组小鼠比较差异无统计学意义(P0.05)。正常组小鼠的DAI评分与PCN组比较差异无统计学意义(P0.05)。(2)将各组小鼠结肠组织HI评分进行两两比较,结果DSS模型组及DSS+PCN组的HI评分均比正常组高,均符合P0.05。DSS模型组与DSS+PCN组比较,前者较高,符合P0.05。(3)DSS模型组与DSS+PCN组小鼠血清MPO、TNF-α、IFN-γ的含量均比正常组高(P0.05)。与DSS模型组相比,DSS+PCN组血清TNF-α、IFN-γ浓度明显降低(P0.05)。(4)正常组的TLR4及RegⅢγ在肠粘膜组织中的表达明显低于DSS模型组(P0.05)。DSS模型组上述指标与DSS+PCN组比较均较高,满足P0.05。(5)比较各组小鼠结肠中MyD88以及RegⅢγ的mRNA表达量。正常对照组明显低于DSS模型组与DSS+PCN组(P0.05),DSS模型组高于DSS+PCN组(P0.05)。结论1.PXR激活剂可通过激活PXR受体,然后抑制TLR4/MyD88通路,减少RegⅢγ的释放。2.PXR的激活可以对结肠炎症反应起到保护作用。
【学位授予单位】:郑州大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2018
【分类号】:R574.62
【图文】:

PXR激动剂在小鼠结肠炎中的作用及其与肠道RegⅢγ分泌的关系


各组小鼠血清MPO、TNF-α及IFN-γ浓度比较

【参考文献】

相关期刊论文 前10条

1 Jie Wang;Gui-Zhen He;Yu-Kang Wang;Qian-Kun Zhu;Wei Chen;Tai Guo;;TLR4-HMGB1-, MyD88- and TRIF-dependent signaling in mouse intestinal ischemia/reperfusion injury[J];World Journal of Gastroenterology;2015年27期

2 Zi-Kai Wang;Yun-Sheng Yang;Ye Chen;Jing Yuan;Gang Sun;Li-Hua Peng;;Intestinal microbiota pathogenesis and fecal microbiota transplantation for inflammatory bowel disease[J];World Journal of Gastroenterology;2014年40期

3 Xiao-Rong Xu;Chang-Qin Liu;Bai-Sui Feng;Zhan-Ju Liu;;Dysregulation of mucosal immune response in pathogenesis of inflammatory bowel disease[J];World Journal of Gastroenterology;2014年12期

4 邱远;丁艳;徐文岳;;TLR2和TLR4的TLR/IL-1 receptor结构与功能[J];免疫学杂志;2014年02期

5 Kori L Wallace;Li-Bo Zheng;Yoshitake Kanazawa;David Q Shih;;Immunopathology of inflammatory bowel disease[J];World Journal of Gastroenterology;2014年01期

6 Yi-Zhen Zhang;Yong-Yu Li;;Inflammatory bowel disease:Pathogenesis[J];World Journal of Gastroenterology;2014年01期

7 薛林云;欧阳钦;黄中华;周旋光;陈伟;;近20年中国IBD研究进展——20年文献总结[J];国际消化病杂志;2013年04期

8 章烈;李园;周总光;;髓样分化因子88的研究进展:把握TLR信号通路中的瓶颈[J];中国普外基础与临床杂志;2013年06期

9 Britta Siegmund;Martin Zeitz;;Innate and adaptive immunity in inflammatory bowel disease[J];World Journal of Gastroenterology;2011年27期

10 孙学刚;范钦;王启瑞;刘亚伟;唐靖;刁建新;石彩霞;吕志平;;大承气汤对内毒素血症小鼠肺与大肠TLR4及TNF-α表达的影响[J];中国中西医结合杂志;2011年02期

相关博士学位论文 前1条

1 夏飞;胰再生基因Reg3g过表达促进NOD小鼠胰岛细胞增殖与诱导机体免疫耐受机制研究[D];华中科技大学;2016年

相关硕士学位论文 前1条

1 李秀明;Nur77在炎症性肠病中作用的初步研究[D];苏州大学;2015年



本文编号:2794424

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/xiaohjib/2794424.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户fac26***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com