一种靶向—穿膜肽的设计、合成及活性研究
本文选题:药物递送系统 + 细胞穿膜肽 ; 参考:《兰州大学》2017年硕士论文
【摘要】:药物递送系统是指在空间、时间及剂量上全面调控药物在体内分布的技术体系。现在市场上的许多药物,特别是需要跨过细胞膜进入细胞核内发挥作用的抗肿瘤药物,普遍存在的问题是跨膜效率低和药物靶向性差,由此引起的一系列副反应,影响了药物的应用和发展。细胞穿膜肽,是由几个到四十几个氨基酸组成的多肽分子,可以跨过细胞膜进入细胞,自发现以来,以其低毒、高效的跨膜特性受到业内的广泛关注。目前大量研究已经证实,环形细胞穿膜肽具有更好的跨膜特征。细胞靶向肽,利用靶向细胞和非靶向细胞之间的差异,如受体表达类型、pH等,选择性的定位到特定病灶部位,协助药物更好的发挥生物学作用。本课题中我们利用环形细胞穿膜肽与细胞靶向肽相连,以提高其对肿瘤细胞的靶向性和携带药物穿过细胞膜的能力,从而降低对正常细胞的毒副作用。流式细胞实验,药物浓度为5μmol/L,作用时间2h,结果表面多肽载体可以携带更多的荧光(FITC)标记进入细胞,而且相同条件下的激光共聚焦实验显示,酰胺成环cTAT和cR9类似物在DU-145、U251和PC-3肿瘤细胞系中不仅可以进入细胞并在细胞核中有明显分布,这与FITC对照组只是黏附在细胞膜表面形成鲜明的对比,并且可以观察到细胞形态发生明显变化,这是细胞死亡的开始。刃天青实验,药物载体浓度为50μmol/L,25μmol/L和12.5μmol/L,实验结果表明单独的多肽药物载体对非肿瘤细胞HEK-293A细胞具有较低的杀伤作用,细胞的存活率在80%以上,肿瘤细胞系U251细胞存活60%以上。综上所述,多肽载体可以携带更多的荧光进入细胞并且在细胞核中有大量分布,可以促进肿瘤细胞的死亡,这种由内而外的肿瘤细胞的内源性凋亡,促进多肽药物载体在药物递送系统中的应用。此外,多肽与抗肿瘤药物阿霉素腙键连接,进一步为多肽载体在成药方面的研究提供参考价值。
[Abstract]:Drug delivery system (DDS) is a technical system that regulates the distribution of drugs in vivo in space, time and dose. Many drugs on the market today, especially anti-tumor drugs that need to cross the cell membrane to work in the nucleus, have the common problem of low transmembrane efficiency and poor drug targeting, resulting in a series of side effects. It affects the application and development of drugs. Cellular transmembrane peptides, composed of several to forty amino acids, can cross cell membranes and enter cells. Since their discovery, they have attracted wide attention for their low toxic and efficient transmembrane properties. At present, a large number of studies have confirmed that annular cell transmembrane peptide has better transmembrane characteristics. Cell-targeted peptides, using the difference between target cells and non-target cells, such as receptor expression type, pH and so on, selectively locate the specific focus to assist the drug to play a better biological role. In order to improve the ability of targeting tumor cells and carry drugs through the cell membrane, we use circular cell membrane peptide to connect with cell targeted peptide, so as to reduce the toxic and side effects on normal cells. Flow cytometry showed that the drug concentration was 5 渭 mol / L and the time was 2 h. The results showed that the surface polypeptide carrier could carry more fluorescent FITC- labeled cells into the cells, and the confocal laser experiments under the same conditions showed that, The cyclic cTAT and cR9 analogues were not only found in DU-145U251 and PC-3 tumor cell lines, but also distributed in the nucleus, which was significantly different from that of the FITC control group, which only adhered to the surface of the cell membrane. A marked change in cell morphology was observed, which was the beginning of cell death. The concentration of drug carrier was 50 渭 mol / L ~ 25 渭 mol/L and 12.5 渭 mol / L respectively. The results showed that the single polypeptide drug carrier had a low killing effect on non-tumor HEK-293A cells, the survival rate of the cells was over 80%, and the survival rate of tumor cell line U251 was more than 60%. To sum up, polypeptide vectors can carry more fluorescence into cells and have a large distribution in the nucleus, which can promote the death of tumor cells, the endogenous apoptosis of tumor cells from inside to outside. To promote the application of polypeptide drug carriers in drug delivery systems. In addition, polypeptides are linked to adriamycin Hydrazone, which provides a reference for the study of polypeptide carriers in proprietary medicine.
【学位授予单位】:兰州大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2017
【分类号】:R91;R96
【相似文献】
相关期刊论文 前10条
1 张兰馨;张书祥;;穿膜肽的内化机制及其应用[J];中国生物化学与分子生物学报;2008年12期
2 熊维德;王攀;张迎庆;;穿膜肽的研究进展[J];海峡药学;2008年09期
3 孙春萌;沈雁;涂家生;;细胞穿膜肽的研究进展[J];中国药学杂志;2013年14期
4 庄炜东;阮世龙;杨旭中;王佳玮;王富军;赵健;;一种高效人源性穿膜肽的生物活性研究[J];食品与药品;2013年02期
5 王怡;蔡绍晖;姜丽娟;李校X;;一种新穿膜肽的构建、表达及其活性检测[J];药物生物技术;2007年02期
6 彭涛,杨春蕾,肖静,郭慧玲,刘英辉,王正荣;一种新的人源性穿膜肽[J];航天医学与医学工程;2003年05期
7 任锦;钦传光;徐春兰;王秋雨;左晓佳;;细胞穿膜肽作为药物载体的研究进展[J];药学学报;2010年01期
8 周华华;董坚;;细胞穿膜肽的研究进展与前景展望[J];西部医学;2012年07期
9 王莉;穿膜肽研究展望[J];免疫学杂志;2001年S1期
10 田菊;王志刚;任建丽;张清凤;;新型穿膜肽作为基因运输载体的实验研究[J];第三军医大学学报;2011年24期
相关会议论文 前7条
1 王小波;周明;费浩;;一种基于环金属铱化合物与组氨酸结合的新型多肽标记方式及用于细胞穿膜肽的成像研究[A];中国化学会第27届学术年会第03分会场摘要集[C];2010年
2 王宏博;杨建海;王玮;刘文广;;富含精氨酸的细胞穿膜肽的研究进展(综述)[A];天津市生物医学工程学会第三十一届学术年会论文集[C];2011年
3 王怡;肖健;林海环;杨静;李校X;;新穿膜肽蛋白His-T1-GFP的跨膜效率和细胞毒性研究[A];2007年全国生化与生物技术药物学术年会论文集[C];2007年
4 王琥;柳长柏;黄宇彬;;不同条件下细胞穿膜肽TAT的穿膜效率的比较[A];第二届中国医学细胞生物学学术大会暨细胞生物学教学改革会议论文集[C];2008年
5 薛改青;祖莉莉;;穿膜肽Transportan10气相解离动力学的研究[A];第十三届全国化学动力学会议报告摘要集[C];2013年
6 马岩岩;荣靖;彭鑫磊;刘秋英;舒辉萍;陈海佳;王一飞;任哲;;穿膜肽KGF-2的构建及其对HaCaT增殖作用的影响[A];中国遗传学会“第十一届全国激光生物学学术会议”暨《激光生物学报》创刊廿周年庆祝会、第十届粤港生物物理研讨会暨2012年广东生物物理学术年会会议资料[C];2012年
7 张俊萍;孙青山;贾原;;穿膜肽介导p53多肽抗原致敏的DC的体外抗瘤效应研究[A];中国肿瘤内科进展 中国肿瘤医师教育(2014)[C];2014年
相关博士学位论文 前5条
1 马严;可在体实现胞内直接投递的新型细胞穿膜肽的构建、筛选和穿膜机制研究[D];华中科技大学;2012年
2 李玉环;靶向survivin的siRNA及其改性穿膜肽纳米给药系统的研究[D];吉林大学;2016年
3 刁艳君;PSMA适配子—穿膜肽—siRNA靶向高效递送系统的建立及其功能验证[D];第四军医大学;2016年
4 严世荣;穿膜肽携带的目的蛋白穿膜效应的研究[D];华中科技大学;2006年
5 李珂;靶向toll样受体2多肽的筛选、鉴定及应用[D];北京协和医学院;2013年
相关硕士学位论文 前10条
1 王晓丽;一种靶向—穿膜肽的设计、合成及活性研究[D];兰州大学;2017年
2 荆鑫鑫;高效重组穿膜肽-vp3的筛选及其对Hela细胞的抑制作用[D];佳木斯大学;2015年
3 刘畅;穿膜肽介导的眼内基因递送系统[D];复旦大学;2014年
4 马德云;细胞穿膜肽Pep-1和人表皮生长因子在大肠杆菌中的重组表达[D];天津科技大学;2014年
5 庄炜东;新型人源性穿膜肽机理研究及性质比较[D];华东理工大学;2013年
6 陈艳如;乳铁素穿膜肽段的穿膜机制研究[D];山东师范大学;2016年
7 熊佳婉;Arg9-EGFP绿色荧光蛋白的穿膜效果研究[D];湖南大学;2015年
8 朱蕾蕾;肿瘤归巢穿膜肽介导靶向载药相变纳米粒用于乳腺癌体外超声分子成像与治疗研究[D];重庆医科大学;2017年
9 杨冬梅;富含胍基的细胞穿膜肽合成[D];华中科技大学;2012年
10 张宏达;穿膜肽介导的新型基因转运载体的研究[D];中国人民解放军军事医学科学院;2008年
,本文编号:1813365
本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/yiyaoxuelunwen/1813365.html