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基于吉西他滨结构改造的前体药物其体内外抗癌活性的研究

发布时间:2017-05-23 17:19

  本文关键词:基于吉西他滨结构改造的前体药物其体内外抗癌活性的研究,由笔耕文化传播整理发布。


【摘要】:目的吉西他滨是一种嘧啶类核苷类似物,通过干扰DNA的合成来发挥抑制肿瘤生长的效应,对多种实体瘤都有治疗作用。目前,吉西他滨在临床上是作为非小细胞型肺癌,乳腺癌和胰腺癌的一线用药,但肝脏和血液中存在的脱氧胞苷脱氨酶会使吉西他滨脱去4’-氨基而失活,导致吉西他滨体内的半衰期减短和生物利用度低。本文通过前药策略在吉西他滨糖环5’-OH连接一系列的磷酸酯长链,通过增加吉西他滨的脂溶性,提高其膜渗透率及口服生物利用度,在体内能够获得更加有效的抑制肿瘤生长的效用。方法通过MTT实验方法,使用11种不同的人癌细胞株中,考察比较吉西他滨和前药的抑制癌细胞生长的作用,从多个前药中选择细胞毒作用最强的候选前药,以及筛选出对吉西他滨前药最为敏感的细胞株,模拟吉西他滨耐药的细胞株,考察化合物-3对耐药株的细胞增殖的抑制作用。建立和优化吉西他滨以及候选前药的定量分析方法,进一步考察候选前药的体外代谢稳定性,候选前药通过癌细胞膜的转运机制,细胞内浓度与其抑制癌细胞生长作用的相关性。体内实验部分,建立非小细胞型肺癌H460的异位移植模型,考察前药经口服给药后对小鼠肿瘤的抑制作用。结果体外部分:5个吉西他滨的前药都能够明显抑制多种癌细胞的生长,其中非小细胞型肺癌细胞(H460,A549),胰腺癌细胞(Panc-1),前列腺癌细胞(PC-3,DU145)和结直肠癌细胞(HCT-116)对前药尤为敏感,化合物-3较其他前药能够更有效的抑制多种癌细胞的生长。化合物-3对上述6个癌细胞中的IC50值均小于1μM,接近吉西他滨的并远低于阳性前药LY2334737的IC50值。在模拟的吉西他滨耐药株中,吉西他滨的IC50值升高了44.5倍,而化合物-3的IC50值仅升高1.3倍。体外代谢结果表明,化合物-3在各种属的血浆中均稳定,且在人肝S9中没有明显的代谢,而化合物-3能够经碱性磷酸酯酶代谢生成活性产物吉西他滨。在4℃和37℃比较化合物-3进入癌细胞的差异,结果显示在4℃条件下进入细胞的量约为37℃的30%~40%,说明化合物-3可以通过被动扩散和摄取转运体摄取进入细胞。同等条件下,前药进入敏感细胞株的浓度高于不敏感株的浓度,癌细胞内的前药浓度与对各癌细胞生长的抑制率有着明显的相关性(R2=0.89)。口服配方筛选结构表明,1%CMC-Na含0.5%Tween 80的混悬剂所获得的化合物-3和吉西他滨的血浆曝露量最高。使用此口服配方,化合物-3每周2次给药(40 mg/kg)能够明显抑制肿瘤的生长,2周后,肿瘤生长的抑制率为65.1%(与辅料对照组相比,p0.01)。与之相比,每周2次腹腔注射80 mg/kg吉西他滨盐酸盐,2周后其肿瘤生长抑制率为61.1%(与辅料对照组对比,p0.01)。结论基于结构设计的前药能够显著抑制癌细胞的生长,最敏感的细胞株为非小细胞型肺癌(A549、H460),前列腺癌(DU-145、PC-3)结直肠癌细胞(HCT-116)。其中化合物-3为抑制强度最佳的前药,该化合物较母药对吉西他滨耐药肿瘤细胞株更加有效。化合物-3可以通过被动扩散和主动转运进入细胞,细胞内浓度与其癌细胞的生长抑制率相关。化合物-3在体外代谢体系中较稳定,和吉西他滨相比,口服生物利用度有较大的提高。药效结果表明,化合物-3具有口服抑制肿瘤生长的活性,药效优于高剂量腹腔注射吉西他滨盐酸盐。
【关键词】:吉西他滨 前药 非小细胞型肺癌 异种移植
【学位授予单位】:苏州大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2015
【分类号】:R96
【目录】:
  • 摘要4-6
  • Abstract6-11
  • 第一章 序言11-21
  • 1.1 前药简介及其临床应用11
  • 1.2 前药设计中应用的官能团11-14
  • 1.2.1 酯类前药12-13
  • 1.2.2 磷酸酯类前药13
  • 1.2.3 碳酸酯和氨基甲酸酯类13-14
  • 1.2.4 酰胺类前药14
  • 1.2.5 肟类前药14
  • 1.3 前药的主要应用14-17
  • 1.3.1 增加药物水溶性14-15
  • 1.3.2 改善药物脂溶性15-16
  • 1.3.3 增加载体介导的吸收16-17
  • 1.4 前药在癌症领域的应用17-19
  • 1.4.1 酶激活前药17-18
  • 1.4.2 靶向配体结合前药18-19
  • 1.5 结语19
  • 1.6 本课题的研究思路及研究内容19-21
  • 第二章 前药在体外抑制癌细胞生长作用的研究21-28
  • 2.1 实验目的21
  • 2.2 实验部分21-23
  • 2.2.1 原料与仪器21
  • 2.2.2 细胞以及细胞培养21-22
  • 2.2.3 溶液配置和稀释22
  • 2.2.4 细胞毒性试验22-23
  • 2.3 结果与讨论23-28
  • 2.3.1 吉西他滨及前药对癌细胞生长的抑制作用23-25
  • 2.3.2 吉西他滨、LY2334737、化合物-3 对多种癌细胞的IC5025-28
  • 第三章 化合物-3 体外稳定性的研究28-41
  • 3.1 实验目的28
  • 3.2 实验方法28-33
  • 3.2.1 药品与试剂28
  • 3.2.2 仪器、色谱、质谱条件28-30
  • 3.2.3 溶液的配置与稀释30
  • 3.2.4 化合物-3 在体外代谢体系中的稳定性30-32
  • 3.2.5 样品处理及进样32-33
  • 3.3 结果与讨论33-41
  • 3.3.1 色谱条件优化33-34
  • 3.3.2 质谱条件优化34-35
  • 3.3.3 化合物-3 在体外代谢体系中的稳定35-37
  • 3.3.4 化合物-3 在牛小肠碱性磷酸酯酶中的代谢37-41
  • 第四章 前药癌细胞膜转运机制评价41-46
  • 4.1 实验目的41
  • 4.2 实验方法41-42
  • 4.2.1 原料与仪器41
  • 4.2.2 细胞以及细胞培养41
  • 4.2.3 化合物-3 在 4℃和 37℃条件下的跨细胞膜转运41-42
  • 4.2.4 癌细胞对化合物-3 敏感性与其跨细胞膜转运的相关性42
  • 4.2.5 样品处理及进样42
  • 4.3 结果与讨论42-46
  • 4.3.1 化合物-3 在 4℃和 37℃条件下的跨细胞膜转运42-43
  • 4.3.2 癌细胞对化合物-3 敏感性与其跨细胞膜转运的相关性43-46
  • 第五章 化合物-3 的裸鼠体内动力学的考察46-53
  • 5.1 实验目的46
  • 5.2 实验方法46-47
  • 5.2.1 原料与仪器46
  • 5.2.2 动物及动物饲养46
  • 5.2.3 化合物-3 不同口服制剂的的动力学的考察46-47
  • 5.2.4 吉西他滨和化合物-3 生物利用度的试验47
  • 5.2.5 血浆样品处理及数据分析47
  • 5.3 结果与讨论47-53
  • 5.3.1 化合物-3 不同口服制剂的的动力学的考察47-49
  • 5.3.2 吉西他滨和化合物-3 的口服生物利用度49-53
  • 第六章 化合物-3 的体内药效实验53-58
  • 6.1 实验目的53
  • 6.2 实验方法53-54
  • 6.2.1 动物及动物饲养53
  • 6.2.2 非小细胞型肺癌H460 肿瘤模型的建立53
  • 6.2.3 化合物-3 和吉西他滨对非小细胞型肺癌肿瘤的抑制作用53-54
  • 6.3 结果与讨论54-58
  • 6.3.1 化合物-3 和吉西他滨对非小细胞型肺癌肿瘤的抑制作用54-58
  • 第七章 总结与展望58-60
  • 7.1 总结58
  • 7.2 展望58-60
  • 参考文献60-64
  • 缩略语说明64-65
  • 攻读学位期间发表的论文及专利65-66
  • 致谢66-67

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