当前位置:主页 > 医学论文 > 特种医学论文 >

甲基苯丙胺通过降低Melusin蛋白引起心肌损伤和细胞凋亡的研究

发布时间:2020-10-17 16:32
   目的:探讨Melusin蛋白对甲基苯丙胺(METH)诱导的心肌细胞凋亡的抵抗作用及作用通路,旨在为吸食METH的戒毒者探讨一种心脏功能的保护方法,同时为吸食METH致死的案件法医鉴定提供新的检测指标。方法:⑴建立SD大鼠METH慢性中毒动物模型(染毒组和对照组);建立新生SD大鼠原代心肌细胞METH浓度梯度(0~2.0 mM)、时间梯度(0~48 h)中毒模型和过表达Melusin细胞模型(Mel+/-METH组和NC+/-METH组);根据纳排标准,收集贵州医科大学法医司法鉴定中心确认吸食METH且无吸食其他任何毒品致死案例为实验组及对照组案例的人心肌组织。(2)采用蛋白免疫印迹法(Western Blotting,WB)检测动物和细胞水平中Melusin蛋白、凋亡标志蛋白(cleaved PARP、cleaved caspase-3)及相关调控通路关键蛋白(FAK、IQGAP1)和效应蛋白(p-AKT、p-GSK3β、p-ERK)的表达;利用TUNEL染色技术检测过表达Melusin细胞模型和人体心肌细胞凋亡水平;使用苏木素-伊红染色法(hematoxylin and eosin,HE)观察人体心肌组织的形态结构变化;运用免疫组织化学染色法(immunohistochemistry,IHC)检测人体心肌细胞中Melusin的表达。结果:(1)在动物水平上,染毒组与对照组相比,Melusin表达降低,cleaved PARP、cleaved caspase-3表达升高,FAK、IQGAP1、p-AKT、p-GSK3β和p-ERK表达降低,且均具有统计学意义(P0.05);在大鼠原代心肌细胞METH中毒模型上,均随浓度梯度、时间梯度的递增,Melusin表达降低,cleaved PARP、cleaved caspase-3表达升高,FAK、IQGAP1、p-AKT、p-GSK3β和p-ERK表达降低,且均具有统计学意义(P0.05);而在经过METH处理的过表达Melusin蛋白细胞模型中,蛋白的表达情况得到了逆转,即Mel+METH组与NC+METH组相比,Melusin蛋白表达升高,PARP、cleaved caspase-3表达降低,FAK、IQGAP1、p-AKT、p-GSK3β和p-ERK表达升高,且均具有统计学意义(P0.05),TUNEL染色也显示凋亡信号明显降低(P0.05),细胞存活增加;在人体心肌组织中,HE染色观察到实验组与对照组相比,人心肌细胞呈现萎缩、坏死、脂肪浸润、局灶性出血、心肌纤维断裂等病理改变,且IHC发现在心肌细胞胞浆内棕黄色着色的心肌细胞数量明显减少,甚至消失,并具有统计学意义(P0.05),TUNEL染色技术显示实验组与对照组相比,大量心肌细胞核被染成棕褐色,细胞凋亡率较对照组明显升高(P0.05)。结论:甲基苯丙胺通过降低Melusin引起心肌细胞凋亡,而过表达Melusin蛋白可以通过提高FAK与IQGAP1,激活AKT/GSK3β与ERK的磷酸化,降低METH诱导的心肌细胞凋亡。
【学位单位】:贵州医科大学
【学位级别】:硕士
【学位年份】:2019
【中图分类】:D919.1
【部分图文】:

大鼠,独立样本,对照组,心肌组织


图 1 暴露于 METH 对 Melusin 蛋白表达水平的影响Fig. 1 Effects of METH exposure on the protein expression levels of Melusin注:A, B: SD 大鼠随机分为对照组和 14 d METH 组(n=6/组)。WB 检测心肌组织中 Melusin蛋白表达水平。*,与对照组比较 P<0.05(独立样本 t 检验)。C-F: 大鼠原代心肌细胞分别暴

标志物,凋亡,心肌组织,大鼠


图 2 暴露于 METH 对凋亡标志物 cleaved caspase-3、cleaved PARP 蛋白表达水平的影响Fig. 2 Effects of METH exposure on the protein expression levels of apoptotic markerscleaved caspase-3 and cleaved PARP注:A, B: SD 大鼠随机分为对照组和 14 d METH 组(n=6/组)。WB 检测心肌组织中 cleaved

过表达,标志物,凋亡,大鼠


图 3 过表达 Melusin 蛋白对大鼠原代心肌细胞凋亡标志物cleaved PARP 和 cleaved caspase-3 蛋白表达的影响Fig. 3 Effects of overexpression of Melusin protein on the protein expression levels ofapoptosis markers cleaved PARPand cleaved caspase-3
【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 邓过房;;2016年诺贝尔生理或医学奖背景下的细胞死亡方式再认识[J];中学生物学;2017年05期

2 宁旭;于忠鸣;;创造性的自主毁灭——细胞凋亡简介[J];中学生物学;2006年10期

3 刘春秋;卞茂红;;药物致红细胞凋亡的研究进展[J];临床输血与检验;2017年04期

4 刘晨;冯雪;;人CXCR4基因对胰腺癌SW1990细胞凋亡和细胞周期的影响[J];健康之路;2017年06期

5 王方;;过表达TIPE2上调BID分子促进H446细胞凋亡[J];科学中国人;2017年18期

6 贾宁;孙荣钊;;病毒感染对细胞凋亡的影响及作用机制[J];中国动物检疫;2012年08期

7 赵君怡;刘伟国;郭秀丽;;一氧化氮与细胞凋亡相关疾病的关系及其调控[J];中国药学杂志;2010年14期

8 黄小丹;;细胞凋亡与疾病[J];畜牧兽医科技信息;2009年05期

9 陈艺娟;邓甲兴;林永利;;中药影响细胞凋亡的研究进展[J];福建畜牧兽医;2008年01期

10 刘伍梅;汪铭书;程安春;周毅;刘芳;张平英;李雪梅;陈孝跃;;PRRSV感染Marc-145细胞凋亡的形态学观察[J];黑龙江畜牧兽医;2008年03期


相关博士学位论文 前10条

1 白晓雪;MiR-196b和miR-144-5p对非小细胞肺癌细胞生长、转移及凋亡的影响[D];吉林大学;2019年

2 陈欣;淫羊藿素诱导人宫颈癌细胞凋亡及其机制的研究[D];吉林大学;2019年

3 李玉明;猪繁殖与呼吸综合征病毒诱导bystander细胞凋亡机制研究[D];中国农业科学院;2017年

4 魏薇;我国优势基因型弓形虫虫株致密颗粒蛋白15诱导人绒毛膜细胞JEG-3凋亡的机制研究[D];安徽医科大学;2018年

5 徐祥;Nupr1及C/EBPβ在甲基苯丙胺诱导的神经毒性中的作用[D];南方医科大学;2018年

6 沈雯;循环miRNA参与吸烟所致COPD的作用及机制研究[D];昆明医科大学;2018年

7 朱思远;晚期氧化蛋白产物诱导成骨细胞凋亡的机制研究[D];南方医科大学;2018年

8 郑旭;白藜芦醇对甲状腺癌防治作用的实验研究[D];大连医科大学;2018年

9 柏素云;新型吡唑香豆素衍生物和二茂铁吡唑衍生物对细胞凋亡、自噬和细胞周期的调节及机制研究[D];山东大学;2015年

10 陈玲;游离脂肪酸对人脐静脉内皮细胞炎症反应的影响及作用机制[D];山东大学;2018年


相关硕士学位论文 前10条

1 赵亚男;运动预处理调节EPO对大鼠脑缺血再灌注损伤及细胞凋亡的影响[D];成都体育学院;2019年

2 牛涵;PSAP在SOD1~(G93A)过表达诱导的细胞凋亡中的作用[D];吉林大学;2019年

3 段一梦;壁虎活性组分通过ROS诱导人肝癌细胞凋亡的机制研究[D];河南科技大学;2019年

4 黄紫乐;NO供体JS-K经PI3K/Akt信号通路诱导SMMC7721细胞凋亡及其机制研究[D];河南科技大学;2019年

5 黄意轩;炭黑吸附苯并芘颗粒物诱导NR8383肺泡巨噬细胞凋亡及其机制研究[D];吉林大学;2019年

6 雒钰杰;干扰Alox5基因促进K562/ADM细胞凋亡及逆转其耐药的研究[D];重庆医科大学;2018年

7 顾桓;直肠癌细胞中环氧合酶1的下调通过NF-kB通路诱导细胞凋亡[D];云南大学;2018年

8 俞丹;斜纹夜蛾亲环素D乙酰化在MbBV诱导寄主血细胞凋亡中的作用的研究[D];云南大学;2018年

9 牟云鸿;促红细胞生成素对高糖环境下系膜细胞凋亡的影响及其可能机制[D];南昌大学;2019年

10 黄银亮;线粒体靶向的比率型双光子荧光探针对细胞凋亡的可视化研究[D];安徽大学;2019年



本文编号:2845043

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/yundongyixue/2845043.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户9c0dd***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com