当前位置:主页 > 医学论文 > 中药论文 >

黄芪甲苷对辐射诱导脑细胞抗凋亡机理初探

发布时间:2020-07-29 21:29
【摘要】:天然药物具有多靶点和低毒性的特点,因此可作为潜在的神经保护剂。皂苷对神经系统疾病和损伤的神经保护作用的报道越来越多:其可通过直接促进细胞存活、改善突触可塑性来促进神经调节网络再生。辐射诱发大脑氧化应激水平和炎症反应的发生,从而影响认知功能和神经元的结构,最终会导致神经发生、分化和细胞凋亡的异常变化。黄芪甲苷(AS-Ⅳ)是黄芪主要活性成分之一,以抗氧化、抗高血压、抗糖尿病、抗梗塞、抗炎症、抗凋亡和促进伤口愈合、血管再生等一系列保护作用而闻名。大量文献表明,AS-Ⅳ抗凋亡的作用与改善中枢神经系统各种疾病有关,但目前关于AS-Ⅳ对辐射诱导神经细胞凋亡的保护机制鲜有研究报道。本研究通过辐射造模,探讨AS-Ⅳ对辐射诱导的体内外脑细胞凋亡的抗性机制,为抗辐射的中药材活性分子和脑保健品的开发提供理论基础。方法:1.体内试验:以昆明小鼠为研究对象,随机分为5组,每组20只:空白对照组(Control)、溶剂组(DMSO)、溶剂+辐射组(DMSO+R)、低浓度AS-Ⅳ+辐射组(AS-Ⅳ-L+R)、高浓度AS-Ⅳ+辐射组(AS-Ⅳ-H+R)。试验采用腹腔注射的方法,每天一次,进行给药。Control组给予生理盐水,DMSO组和DMSO+R组都给予DMSO,且终浓度不能超过0.01%。AS-Ⅳ-L+R组和AS-Ⅳ-H+R组给药量分别为20 mg/kg和40 mg/kg,给药30 d后,进行8 Gy ~(60)Coγ射线全身一次性均匀辐射。辐射一周后,采集大脑组织样和分子样。大脑切片进行TUNEL染色显示凋亡情况,Western Blotting检测小鼠脑组织凋亡相关蛋白表达量的变化。2.体外试验:以神经样细胞PC12为研究对象,分为5个组:空白对照组(Control)、溶剂组(DMSO)、溶剂+辐射组(DMSO+R)、低浓度AS-Ⅳ+辐射组(AS-Ⅳ-L+R)、高浓度AS-Ⅳ+辐射组(AS-Ⅳ-H+R)。Control组不做任何处理,DMSO组和DMSO+R组都给予DMSO,且终浓度不能超过0.01%。AS-Ⅳ-L+R组和AS-Ⅳ-H+R组给药量分别为25μg/mL和50μg/mL,细胞贴壁后,加药,长至70%?80%后进行紫外辐射处理,剂量为6.5 J/cm~2。流式细胞术检测PC12细胞凋亡情况,Western Blotting检测PC12细胞凋亡相关蛋白表达量的变化。结果:1.体内试验:小鼠大脑切片TUNEL染色结果显示:与Control组相比,DMSO+R组中细胞凋亡率极显著上升(P0.001),与DMSO+R组相比,AS-Ⅳ-H+R组细胞凋亡率下降,差异具有显著性(P0.05)。Western Blotting的结果显示:与Control组相比,DMSO+R组的JNK和p38的蛋白磷酸化水平呈现显著上升趋势(P0.05;P0.01);p53、Caspase-9和Caspase-3的蛋白表达水平和Bax与Bcl-2的比值均呈现显著上升趋势(P0.05;P0.001;P0.001;P0.001);JNK和p38的蛋白表达水平没有显著性差异(P0.05)。与DMSO+R组相比,AS-Ⅳ-L+R组的JNK和p38的蛋白磷酸化水平呈现显著下降趋势(P0.05);p53、Caspase-9和Caspase-3的蛋白表达水平和Bax与Bcl-2的比值均呈现显著下降趋势(P0.05;P0.001;P0.001;P0.01);JNK和p38的蛋白表达水平没有显著性差异(P0.05)。2.体外试验:流式细胞术结果显示,与Control组相比,DMSO+R组中细胞凋亡率极显著上升(P0.001),与DMSO+R组相比,AS-Ⅳ-H+R组细胞凋亡率下降,差异具有显著性(P0.01)。Western Blotting的结果显示:与Control组相比,DMSO+R组的JNK和p38的蛋白磷酸化水平呈现显著上升趋势(P0.001);p53、Caspase-9和Caspase-3的蛋白表达水平和Bax与Bcl-2的比值均呈现显著上升趋势(P0.001;P0.001;P0.001;P0.01);JNK和p38的蛋白表达水平没有显著性差异(P0.05)。与DMSO+R组相比,AS-Ⅳ-L+R组的JNK和p38的蛋白磷酸化水平呈现显著下降趋势(P0.01);p53、Caspase-9和Caspase-3的蛋白表达水平和Bax与Bcl-2的比值均呈现显著下降趋势(P0.001;P0.001;P0.01;P0.01);JNK和p38的蛋白表达水平没有显著性差异(P0.05)。结论:1.AS-Ⅳ可有效降低辐射诱导脑细胞的凋亡。2.AS-Ⅳ对辐射诱导脑细胞抗凋亡的作用机制可能与JNK-p38的磷酸化调节有关。
【学位授予单位】:兰州大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2019
【分类号】:R285.5
【图文】:

小鼠大脑,细胞凋亡,染色法


色法显示 AS-Ⅳ对辐射诱导小鼠大脑细胞凋亡的影响图(标尺为 50 μm)。(B)小鼠大脑细胞凋亡凋亡率统/组,*** P < 0.001,* P < 0.05。ELstaining showed the effect ofAS-Ⅳ on apoptosis of micUNELstaining map of mouse brain tissue sections (scale 5ptotic apoptosis rate of mouse brain cells. n = 3, *** P < 0.射诱导小鼠大脑细胞凋亡相关蛋白表达的影响验结果如图 3-2A 所示,AS-Ⅳ对辐射诱导小鼠体情况如下:组相比,DMSO+R 组的 JNK 和 p38 的蛋白磷酸-2C:P<0.05;图 3-2E:P<0.01);p53、Caspa和 Bax 与 Bcl-2 的比值均呈现显著上升趋势(图.001;图 3-2I:P< 0.001;图 3-2G:P< 0.001);显著性差异(图 3-2B:P>0.05;图 3-2D:P>

统计图,小鼠大脑,磷酸化,相关蛋白


24图 3-2 AS-Ⅳ对辐射诱导小鼠大脑细胞凋亡相关蛋白表达及其磷酸化水平的影响。(A)为凋亡相关蛋白及其磷酸化水平的 Western Blotting 检测图。(B-I)分别为小鼠大脑中 JNK、p-JNK、p38、p-p38、p53、Bax/Bcl-2、Caspase-9 和 Caspase-3 蛋白相对灰度值变化统计图。n > 3,*** P < 0.001,** P < 0.01,* P < 0.05。Figure 3-2 Effect ofAS-Ⅳ on apoptosis-related protein expression and phosphorylation in brainof radiation-induced animal models. (A) Western Blotting assay for apoptosis-related proteins andtheir phosphorylation levels. (B-I) Statistical plots of relative gray value changes of JNK, p-JNK,p38, p-p38, p53, Bax / Bcl-2, Caspase-9 and Caspase-3 proteins in animal models, respectively.n > 3, *** P < 0.001, ** P < 0.01, * P < 0.05.

散点图,细胞凋亡,散点图,情况


26图 3-3 AS-Ⅳ对辐射诱导 PC12 细胞凋亡水平的影响。(A-E)为 Control 组、DMSO 组、DMSO + R 组、AS-Ⅳ-L+ R 组和 AS-Ⅳ-H + R 组的 PC12 细胞凋亡情况散点图。(F)上述每组 PC12 细胞凋亡情况统计结果图。n > 3,*** P < 0.001,** P < 0.01。Figure 3-3 Effect ofAS-Ⅳ on radiation-induced apoptosis in PC12 cells. (A-E) Scatter plot ofPC12 cell apoptosis in Control group, DMSO group, DMSO + R group,AS-Ⅳ-L+ R group andAS-Ⅳ-H + R group. (F) Statistical results of apoptosis in each group of PC12 cells. n > 3, *** P <0.001, ** P < 0.01.

【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 邓过房;;2016年诺贝尔生理或医学奖背景下的细胞死亡方式再认识[J];中学生物学;2017年05期

2 宁旭;于忠鸣;;创造性的自主毁灭——细胞凋亡简介[J];中学生物学;2006年10期

3 刘春秋;卞茂红;;药物致红细胞凋亡的研究进展[J];临床输血与检验;2017年04期

4 刘晨;冯雪;;人CXCR4基因对胰腺癌SW1990细胞凋亡和细胞周期的影响[J];健康之路;2017年06期

5 王方;;过表达TIPE2上调BID分子促进H446细胞凋亡[J];科学中国人;2017年18期

6 贾宁;孙荣钊;;病毒感染对细胞凋亡的影响及作用机制[J];中国动物检疫;2012年08期

7 赵君怡;刘伟国;郭秀丽;;一氧化氮与细胞凋亡相关疾病的关系及其调控[J];中国药学杂志;2010年14期

8 黄小丹;;细胞凋亡与疾病[J];畜牧兽医科技信息;2009年05期

9 陈艺娟;邓甲兴;林永利;;中药影响细胞凋亡的研究进展[J];福建畜牧兽医;2008年01期

10 刘伍梅;汪铭书;程安春;周毅;刘芳;张平英;李雪梅;陈孝跃;;PRRSV感染Marc-145细胞凋亡的形态学观察[J];黑龙江畜牧兽医;2008年03期

相关会议论文 前10条

1 李佑生;王文健;刘毅;何春燕;何燕铭;陈伟华;应健;;黄芪多糖丹酚酸对高糖诱导的足细胞凋亡的影响[A];中华中医药学会血栓病分会第四次学术研讨会暨广东省中医药学会血栓病专业委员会首届学术研讨会论文集[C];2010年

2 覃玉荣;张志勇;;细胞浓度变化对细胞凋亡率影响及其机理初探[A];全国电磁兼容学术会议论文集[C];2006年

3 于青;袁伟杰;姚建;;晚期糖基化终末产物引起足细胞凋亡的机制[A];2007年浙沪两地肾脏病学术年会资料汇编[C];2007年

4 吴经纬;汤长发;;运动中细胞凋亡的线粒体变化特征[A];湖南省生理科学会2006年度学术年会论文摘要汇编[C];2007年

5 蒲小平;李长龄;屠鹏飞;宋志宏;;中药肉丛蓉成分抗神经细胞凋亡的实验研究[A];第七届全国生化药理学术讨论会论文摘要集[C];2000年

6 符必谦;奚胜艳;王彦晖;;中药及复方促肿瘤细胞凋亡的作用及机制[A];第二届临床中药学大会论文集[C];2018年

7 林其谁;;线粒体与细胞凋亡[A];第七届全国生物膜学术讨论会论文摘要汇编[C];1999年

8 邱洁;高海青;;锌在细胞凋亡中的作用研究进展[A];山东省微量元素科学研究会第三届学术研讨会论文汇编[C];2006年

9 宁存德;;细胞凋亡与口腔疾病[A];FDI、CSA临床口腔进展学术会议论文汇编[C];1999年

10 华子春;;靶向性诱导肿瘤细胞凋亡药物研发[A];全国第十一届生化与分子药理学学术会议论文集[C];2009年

相关重要报纸文章 前10条

1 方方 曹雪琴;吴政星的挑战与求索[N];科学时报;2011年

2 实习生 刘雨亭;细胞凋亡如何推进?以触发波的“名义”[N];科技日报;2018年

3 ;“细胞凋亡疗法”正逐步成为治疗癌症的新途径[N];中国高新技术产业导报;2002年

4 记者 何德功;基因变异可能致癫痫[N];新华每日电讯;2004年

5 ;3’取代吲哚类衍生物诱导HL-60细胞凋亡的实验研究[N];中国医药报;2003年

6 ;As_(2)S_(2)与STI571协同诱导K562细胞凋亡[N];中国医药报;2003年

7 董学清 吴延华;阿胶抑癌作用显著[N];中国医药报;2003年

8 高书明;诱导癌细胞凋亡[N];中国医药报;2004年

9 杨堤林;中药可诱导肿瘤细胞凋亡[N];中国中医药报;2004年

10 记者张建松;治疗癌症新途径:细胞凋亡疗法[N];科技日报;2002年

相关博士学位论文 前10条

1 林鹏;水貂肠炎病毒NS1非结构蛋白调控细胞凋亡的分子机制[D];中国农业科学院;2019年

2 马邦云;升麻鳖甲汤加减方调控MAPK信号通路诱导AML细胞凋亡的研究[D];南京中医药大学;2019年

3 隽晨霞;LncRNA MALAT1通过对CD80的转录调控影响细胞凋亡的机制[D];南京医科大学;2019年

4 李玉明;猪繁殖与呼吸综合征病毒诱导bystander细胞凋亡机制研究[D];中国农业科学院;2017年

5 魏薇;我国优势基因型弓形虫虫株致密颗粒蛋白15诱导人绒毛膜细胞JEG-3凋亡的机制研究[D];安徽医科大学;2018年

6 徐祥;Nupr1及C/EBPβ在甲基苯丙胺诱导的神经毒性中的作用[D];南方医科大学;2018年

7 沈雯;循环miRNA参与吸烟所致COPD的作用及机制研究[D];昆明医科大学;2018年

8 朱思远;晚期氧化蛋白产物诱导成骨细胞凋亡的机制研究[D];南方医科大学;2018年

9 郑旭;白藜芦醇对甲状腺癌防治作用的实验研究[D];大连医科大学;2018年

10 柏素云;新型吡唑香豆素衍生物和二茂铁吡唑衍生物对细胞凋亡、自噬和细胞周期的调节及机制研究[D];山东大学;2015年

相关硕士学位论文 前10条

1 杨岚菲;电针对大鼠颈肌慢性损伤模型细胞凋亡的影响[D];福建中医药大学;2019年

2 姚敏鹏;视黄醇结合蛋白4(RBP4)激活NLRP3炎性小体在促进梗死心肌细胞凋亡中的作用研究[D];南京医科大学;2019年

3 武珍;FOXO3a上调Mxi1-0促进缺氧后内皮细胞凋亡[D];南京医科大学;2019年

4 罗逸航;大鼠输尿管不全梗阻对其平滑肌影响的研究[D];遵义医科大学;2019年

5 李静;Tipranavir抗肝癌作用及其相关机制研究[D];重庆理工大学;2019年

6 姚浩;青蒿琥酯通过PI3K/Akt/mTOR体外诱导H929和U266细胞凋亡及自噬的实验研究[D];南京中医药大学;2019年

7 崔云霞;不同浓度D-缬氨酸对小鼠成纤维细胞L929增殖和凋亡的影响[D];吉林大学;2019年

8 徐滢;猪流行性腹泻病毒引起Vero细胞凋亡的分子机制研究[D];西北农林科技大学;2019年

9 任倩;FTO通过抑制线粒体UPR缓解小鼠脂肪细胞凋亡的作用机制[D];西北农林科技大学;2019年

10 王小燕;血管紧张素(1-7)通过下调JNK/Caspase-3信号通路减少高糖诱导的INS-1细胞凋亡[D];山西医科大学;2019年



本文编号:2774519

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/zhongyaolw/2774519.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户8c346***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com