玉竹多糖对ZDF大鼠肝脏AMPK-ACC信号通路的影响
发布时间:2020-11-03 01:43
目的通过玉竹多糖干预ZDF大鼠,监测AMPK-ACC信号通路对糖脂代谢的影响,探究其机制为临床应用提供依据。方法采用随机对照试验设计,将40只7-8周龄的雄性ZDF大鼠用高脂饲料诱导发糖尿病,将10只ZLF正常大鼠作为对照组用正常饲料饲养。造模4周后筛选造模成功大鼠随机分为对照组、二甲双胍组、玉竹多糖低剂量组、玉竹多糖高剂量组,并二甲双胍组予二甲双胍150mg/kg/天,玉竹多糖低剂量组予玉竹多糖1.26g/kg/天玉竹多糖高剂量组予玉竹多糖2.52g/kg/天;对照组给予同体积蒸馏水灌胃,疗程为8周。于2、4、6周监测空腹血糖(FBG);于6周时进行2h口服葡萄糖耐量实验(OGTT),第8周戊巴比妥钠麻醉后,腹主动脉取血处死大鼠,全自动血液生化分析仪器检测糖化血清蛋白(GSP)、血脂四项(总胆固醇(TC)、甘油三酯(TG)、低密度脂蛋白胆固醇(LDL-C)、游离脂肪酸(FFA)水平,称肝脏全重,留取肝脏组织Western-blot法检测肝脏组织AMPKα1、AMPKα2、磷酸化乙酰辅酶A羧化酶(p-ACC)蛋白表达。结果与正常组比较,模型组大鼠血糖相关指标2、4、6周FGB、OGTT-AUC,GSP均显著升高(P0.05,P0.01),血脂相关指标TG、CHO、LDL-C及FFA均显著升高(P0.01)。组织学观察,肝脏切片HE染色可见模型组ZDF大鼠肝脏细胞形态破坏、脂肪明显沉积。经western蛋白测定得出,肝AMPKα1、AMPKα2蛋白表达显著增加减少、p-ACC蛋白表达显著减少(P0.05)。与模型组比较,二甲双胍组、玉竹多糖高、低剂量组血糖相关指标FGB、OGTT-AUC,GSP均显著降低(P0.05,P0.01);二甲双胍组及玉竹多糖高剂量组血脂相关指标TG、CHO、LDL-C及FFA显著降低(P0.05,P0.01),但玉竹多糖低剂量组CHO、LDL-C及FFA显著降低(P0.05),TG仅有降低趋势,无统计学差异。给药组肝脏细胞均较模型组排列整齐、脂肪沉积明显减少。与模型组相比,二甲双胍组及玉竹多糖高剂量组大鼠肝脏肝AMPKα1、AMPKα2蛋白表达显著增加,p-ACC蛋白表达显著增加(P0.05)。玉竹多糖低剂量组大鼠AMPKα1、p-ACC蛋白表达显著增加(P0.05),而AMPKα2蛋白表达成增加趋势,而无统计学差异。结论1、玉竹多糖可降低ZDF2型糖尿病伴血脂异常大鼠FBG、OGTT及GSP,调节糖代谢。2、玉竹多糖可降低ZDF2型糖尿病伴血脂异常大鼠血脂四项(TG、CHO、LDL-C及FFA),能够有效改善糖尿病大鼠肝脏脂肪沉积的现象;调节脂代谢异常。3、玉竹多糖可增高ZDF2型糖尿病伴血脂异常大鼠肝脏AMPKα1、AMPKα2的表达,促进ACC蛋白的磷酸化;从而降低肝细胞脂质沉积,减轻肝脏脂肪变性,提高胰岛素敏感性,改善糖脂代谢紊乱。
【学位单位】:北京中医药大学
【学位级别】:硕士
【学位年份】:2019
【中图分类】:R285.5
【部分图文】:
ACC被AMPK磷酸化后失去活性,使体内Malonyl-CoA合成减少,激活CPT-I??相应地促进了长链酯酰辅酶A从胞质进入线粒体的氧化,降低脂质在外周组织的沉积,??增强了脂肪酸氧化作用(如图1)?m,使甘油和脂肪酸氧化分解生成二氧化碳和水,释??放大量能量供机体利用。李如行18]通过电针刺激胰岛素抵抗大鼠的作用证明电针可通过??激活脂联素介导的信号通路,上调AMPK蛋白表达,进而下调ACC蛋白表达,以调整??机体脂质代谢紊乱从而改善胰岛素抵抗状态。??20??
3.4玉竹多糖对ZDF糖尿病大鼠糖化血清蛋白的影响??模型组大鼠GSP较正常组大鼠,极显著升高(P<0.01);给药8周后,西药组及玉??竹多糖高、低剂量组大鼠GSP较模型组均极显著降低(P<0.01)。??表2各组大鼠GSP的比较(;T±S,nmol/L)??N?GSP??Nor?10?23.51±4.34??Con?9?81.55±5.90##??Met?from?10?63.14士?8.33**??Low?9?65.10土?14.36**???Hi^h?10?63.39?士?8.91**???注:和Nor组比较,P<0.05,用#表示,P<0.01用##表示;和模型组比较,P<0.05用*表示,P<0.01??用**表和西药组比较,P<0.05用※表示,P<0.01用※※表示。??GSP??100?|?##??。80????w*?**?—??〇?60-ri-??
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【相似文献】
本文编号:2867899
【学位单位】:北京中医药大学
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【部分图文】:
ACC被AMPK磷酸化后失去活性,使体内Malonyl-CoA合成减少,激活CPT-I??相应地促进了长链酯酰辅酶A从胞质进入线粒体的氧化,降低脂质在外周组织的沉积,??增强了脂肪酸氧化作用(如图1)?m,使甘油和脂肪酸氧化分解生成二氧化碳和水,释??放大量能量供机体利用。李如行18]通过电针刺激胰岛素抵抗大鼠的作用证明电针可通过??激活脂联素介导的信号通路,上调AMPK蛋白表达,进而下调ACC蛋白表达,以调整??机体脂质代谢紊乱从而改善胰岛素抵抗状态。??20??
3.4玉竹多糖对ZDF糖尿病大鼠糖化血清蛋白的影响??模型组大鼠GSP较正常组大鼠,极显著升高(P<0.01);给药8周后,西药组及玉??竹多糖高、低剂量组大鼠GSP较模型组均极显著降低(P<0.01)。??表2各组大鼠GSP的比较(;T±S,nmol/L)??N?GSP??Nor?10?23.51±4.34??Con?9?81.55±5.90##??Met?from?10?63.14士?8.33**??Low?9?65.10土?14.36**???Hi^h?10?63.39?士?8.91**???注:和Nor组比较,P<0.05,用#表示,P<0.01用##表示;和模型组比较,P<0.05用*表示,P<0.01??用**表和西药组比较,P<0.05用※表示,P<0.01用※※表示。??GSP??100?|?##??。80????w*?**?—??〇?60-ri-??
第0周?第2周?第4周?第6周?第8周??te:?vs?Nor,#P<0.05,##P<0.01,vs?con,*P<0.05,**P<0.01??图2各组大鼠FGB变化情况(7土S,?mmol/L)??多糖对ZDF糖尿病大鼠糖化血清蛋白的影响??组大鼠GSP较正常组大鼠,极显著升高(P<0.01);给药8周后,西高、低剂量组大鼠GSP较模型组均极显著降低(P<0.01)。??表2各组大鼠GSP的比较(;T±S,nmol/L)??N?GSP??Nor?10?23.51±4.34??Con?9?81.55±5.90##??Met?from?10?63.14士?8.33**??Low?9?65.10土?14.36**??Hi^h?10?63.39?士?8.91**or组比较,P<0.05,用#表示,P<0.01用##表示;和模型组比较,P<0.05用*表和西药组比较,P<0.05用※表示,P<0.01用※※表示。??
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