小麦TaMOC1基因的启动子分析及CRISPR-Cas9突变体的获得
发布时间:2020-05-09 17:46
【摘要】:小麦(Triticum aestivum L.)是主要的粮食作物。分蘖是包括小麦在内的单子叶禾本科植物最重要的农艺性状之一,直接影响小麦结实进而影响单产,因此小麦的分蘖研究具有重要的发育生物学意义。水稻(Oryza sativa L.)的MOC1基因是控制其分蘖的发生及分蘖芽生长的关键基因。本课题组前期已分离了TaMOC1基因,并对其表达模式及功能进行了初步探究。基因表达的调控包括转录水平的调控、转录后水平的调控和翻译后蛋白水平的调控等,但转录水平的调控是最重要的,而启动子的调控作用在转录水平上的调控是最重要的。因此,启动子的序列、结构及其功能元件的研究对于了解基因表达调控原理非常重要。在本课题的研究中,我们克隆了TaMOC1的启动子序列并对它的序列结构及作用元件进行初步分析。同时,为了深入探究TaMOC1的功能,我们利用CRISPR/Cas的方法构建TaMOC1定点突变的表达载体,以小麦幼胚为材料,进行小麦遗传转化实验。具体研究结果如下:(1)半定量实验的分析结果显示TaMOC1-7A、TaMOC1-7B、TaMOC1-7D在根、茎尖、叶和小穗中均有表达,其中在茎尖中TaMOC1-7B表达量较高。(2)TaMOC1-7A、TaMOC1-7B、TaMOC1-7D的启动子序列顺式作用元件的分析结果显示它们启动子中含有多种调控元件。分蘖受多种因素影响。因此我们推测:TaMOC1启动子可能通过多种激素诱导调控TaMOC1表达,并与逆境胁迫信号途径有关,并且TaMOC1启动子可能通过与分生组织表达有关的顺式调控元件参与TaMOC1调控小麦分蘖。(3)P_(TaMOC1-7D)::GUS、P_(TaMOC1-7D)P1::GUS、P_(TaMOC1-7D)P2::GUS拟南芥遗传转化实验的结果表明CAT-box调控元件决定了TaMOC1的表达部位,对于TaMOC1启动子的活性有重要意义。(4)我们得到了5株pBUE411-TaMOC1-Cas9 T0代转基因植株,植株育性较差。同时,我们已获得部分T1代转基因植株测序结果,测序结果表明TaMOC1突变体植株的靶位点序列处部分核苷酸序列发生了改变,造成其氨基酸序列发生了变化,进一步的定量PCR结果显示TaMOC1的表达量明显下调。下一步我们将对P_(TaMOC1-7D)::GUS转基因T2代植株进行大量GUS染色及相关组织切片分析,进一步确定TaMOC1的表达模式。此外,我们将对pBUE411-TaMOC1-Cas9转基因株系进行大田种植,分别对其冬前及拔节期分蘖情况、穗发育及结实情况进行观察,确定TaMOC1对小麦分蘖的作用。
【图文】:
图 1-1 CRISPR 位点结构图Fig. 1-1 CRISPR site map/Cas 系统的工作原理物 RNA 干扰(RNAi)原理相似,CRISPR/Cas 系统,通过的表达被沉默(Zhang et al., 2016)。首先,CRISPR/Cas 系码的蛋白的协助下,找到与间隔序列互补的外源 DNA 序列r)。原间隔序列的选取并不是随机的,它的两端都有几个非常序列临近基序的 PAM(protospacer adjacent motif,PAM)( 通常由 NGG 三个碱基构成(N 为任意碱基)(Feng et al., 2合物将原间隔序列从外源 DNA 剪切下来,并在其他酶的协 序列的前导区的下游(Liang et al., 2018)。随后,,DNA 将打段新的间隔序列就被添加到了基因组 CRISPR 序列。然后,调控下合成 pre-CRISPR-derived RNA(pre-crRNA)和 tran
小麦 TaMOC1 基因的启动子分析及 CRISPR-Cas9 突变体的获得3 结果与分析3.1 TaMOC1-7A、TaMOC1-7B、TaMOC1-7D 的表达模式分析小麦 TaMOC1-7A、TaMOC1-7B、TaMOC1-7D 三个基因来源于不同的祖先,其表达模式可能存在差异。我们选取了幼根、幼叶、三叶一心时期的茎尖及小花小穗原基分化期的小穗原基为材料,对 TaMOC1-7A、TaMOC1-7B、TaMOC1-7D 分别了设计特异引物RTQPTaMOC1-7A-F/RTQPTaMOC1-7A-R 、 RTQPTaMOC1-7B-F/RTQPTaMOC1-7B-R 和RTQPTaMOC1-7A-F/RTQPTaMOC1-7A-R 通过半定量实验对它们进行表达模式分析,结果显示TaMOC1-7A、TaMOC1-7B、TaMOC1-7D 在根、茎尖、叶和小穗中的表达模式均有表达,其中在茎尖中 TaMOC1-7B 表达量最高(图 3-1)。
【学位授予单位】:山东农业大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2018
【分类号】:Q943.2;S512.1
本文编号:2656503
【图文】:
图 1-1 CRISPR 位点结构图Fig. 1-1 CRISPR site map/Cas 系统的工作原理物 RNA 干扰(RNAi)原理相似,CRISPR/Cas 系统,通过的表达被沉默(Zhang et al., 2016)。首先,CRISPR/Cas 系码的蛋白的协助下,找到与间隔序列互补的外源 DNA 序列r)。原间隔序列的选取并不是随机的,它的两端都有几个非常序列临近基序的 PAM(protospacer adjacent motif,PAM)( 通常由 NGG 三个碱基构成(N 为任意碱基)(Feng et al., 2合物将原间隔序列从外源 DNA 剪切下来,并在其他酶的协 序列的前导区的下游(Liang et al., 2018)。随后,,DNA 将打段新的间隔序列就被添加到了基因组 CRISPR 序列。然后,调控下合成 pre-CRISPR-derived RNA(pre-crRNA)和 tran
小麦 TaMOC1 基因的启动子分析及 CRISPR-Cas9 突变体的获得3 结果与分析3.1 TaMOC1-7A、TaMOC1-7B、TaMOC1-7D 的表达模式分析小麦 TaMOC1-7A、TaMOC1-7B、TaMOC1-7D 三个基因来源于不同的祖先,其表达模式可能存在差异。我们选取了幼根、幼叶、三叶一心时期的茎尖及小花小穗原基分化期的小穗原基为材料,对 TaMOC1-7A、TaMOC1-7B、TaMOC1-7D 分别了设计特异引物RTQPTaMOC1-7A-F/RTQPTaMOC1-7A-R 、 RTQPTaMOC1-7B-F/RTQPTaMOC1-7B-R 和RTQPTaMOC1-7A-F/RTQPTaMOC1-7A-R 通过半定量实验对它们进行表达模式分析,结果显示TaMOC1-7A、TaMOC1-7B、TaMOC1-7D 在根、茎尖、叶和小穗中的表达模式均有表达,其中在茎尖中 TaMOC1-7B 表达量最高(图 3-1)。
【学位授予单位】:山东农业大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2018
【分类号】:Q943.2;S512.1
【参考文献】
相关期刊论文 前10条
1 温超;刘美娟;施敬恬;马男;赵梁军;;菊花侧枝形成与调控研究进展[J];中国农业大学学报;2017年12期
2 唐秀英;王会民;龙起樟;黄永兰;芦明;万建林;;CRISPR/Cas9系统在水稻基因组编辑中的应用[J];分子植物育种;2017年03期
3 贺飞燕;闫建俊;白云凤;冯瑞云;施俊凤;;启动子的类型及应用[J];山西农业科学;2017年01期
4 符聪慧;王建平;张冲;马锋旺;张军科;;苹果PGIP基因部分家族成员启动子的克隆与功能分析[J];园艺学报;2014年11期
5 孙靖然;王丕武;马建;;拟南芥CBF4基因启动子缺失载体的构建及转化[J];吉林农业大学学报;2013年05期
6 王镜淞;杨文鹏;柴友荣;;禾本科植物腋生分枝发生的分子与激素调控[J];天津农业科学;2012年03期
7 蒋苏;蔡润;潘俊松;何欢乐;;黄瓜无侧枝品系S61的形态解剖学观察及其无侧枝成因分析[J];园艺学报;2009年07期
8 巩鹏涛,李迪;植物分枝发育的遗传控制[J];分子植物育种;2005年02期
9 李学勇,钱前,李家洋;水稻分蘖的分子机理研究[J];中国科学院院刊;2003年04期
10 孙晓红,陈明杰,潘迎捷;启动子克隆概述[J];食用菌学报;2002年03期
本文编号:2656503
本文链接:https://www.wllwen.com/kejilunwen/jiyingongcheng/2656503.html
最近更新
教材专著