葡萄抗霜霉病相关基因VaHAESA和VaNPR1筛选及抗性机理研究
发布时间:2020-12-04 22:24
葡萄(Vitis Vinfera L)是我国重要的经济果树,常因霜霉病(downymildew)的危害遭受严重损失。利用葡萄自身资源,分离鉴定出葡萄抗霜霉病基因,对研究葡萄抗病机理和利用抗病基因改良葡萄品种都具有重要价值。而植物的两层免疫系统为筛选抗病基因提供了理论基础。第一层是植物模式识别受体(pattern recognitionreceptors,PRRs)识别病原菌的相关的分子模式(pathogen-associated molecular patterns,PAMPs)触发的免疫,即 PTI(PAMP-triggered immunity)。第二层是通过植物抗病基因(R基因)编码的蛋白,识别病原菌分泌的效应因子(effectors)激发的免疫,即ETI(effector-triggered immunity)。我们根据这PTI途径,利用已知转录组数据,筛选出在亲和(compatible)与非亲和(incompatible)霜霉菌(Plasmopara viticola)侵染下表达有差异的PRR,进行相应的特征及功能分析;根据ETI途径,分析了系统获得性抗性(systemica...
【文章来源】:中国农业大学北京市 211工程院校 985工程院校 教育部直属院校
【文章页数】:121 页
【学位级别】:博士
【部分图文】:
图1-1霜霉菌及其形态??
卵菌纲,霜霉目,霜霉科,单轴霉属m。单轴霉属的多核、无隔管状菌丝体蔓延在寄??主的细胞间隙中,以瘤状吸器进入植物细胞内吸收营养。一般情况下,发病部位会产生白色??霜状霉层(图1-A、B),即病菌的孢子囊梗和孢子囊。孢子囊梗从叶片叶片的气孔伸出,后??分支出小梗,大多为三分支,也有叉状分枝,小梗之间多数呈直角,如图1-C。孢子囊梗上??长出孢子囊,孢子囊再产生并释放出游动孢子,如图1-DW。??"...'1;:1£;3??图1-1霜霉菌及其形态??(A)葡萄叶片上的霜霉菌(B)孢子囊梗和孢子囊(C)从气孔处形成的孢子梗(D)孢子囊梗产生的孢??子囊(Gessler?以?a/.,2011)???Figure?1?-1.?Morphological?characteristics?of?P.viticola??(A)?Plasmopara?viticola?on?abaxial?leaf?surface.?(B)?Sporangiophores?and?sporangia?of?Plasmopara?viticola.?(C)??Sporangiophores?in?formation?exiting?from?a?stoma.?(D)?Sporangia?on?sporangiophores?(Gessler?et?al.20?\?1).??霜霉菌的繁殖方式分为有性繁殖和无性繁殖两个阶段,其侵染方式也分为初次侵染和二??次侵染两个阶段(图1-2)。冬季,雄器和藏卵器通过受精作用产生融合细胞,形成二倍体卵??孢子,卵孢子在病叶或者其他病残组织在土壤里越冬。第二年春天,霜霉菌卵孢子在适宜的??温度和湿度条件下产生抱子囊
胞膜内?所以,除了上述提到的复合受体,类细胞质受体激酶(receptor-like?cytoplasmic??kinases,RLCKs)在其中起到了重要作用[65^。许多RLCKs已经成为连接PRRs和下游防??御系统的核心物质(图1-3)[58]。在这些RLCKs中,BIKl(botrytis-inducedkinasel)是重要的中??心组件[7°]。作为拟南芥RLCKsVII型蛋白亚家族的一员,当没有配体诱导时,BIK1以无活??性的形式分别与FLS2和BAK1相结合[7U72]。当受flg22诱导后,BAK1与FLS2的复合体??使BIK1磷酸化。BIK1从复合体游离出来,激活下游信号。RIK1还能与FLS2,?EFR,?PEPRs??和CERK1直接结合来调控PRRs激发的信号通路[71%。在拟南芥中,RLCKVII家族中其他??成员PBSl-LIKEl(PBLl),PBL27,?PCRKs和一个RLCK?XII家族成员,都能与PRRs直接结??合并在PTI信号通路中发挥重要作用[7W6]。??8??
本文编号:2898327
【文章来源】:中国农业大学北京市 211工程院校 985工程院校 教育部直属院校
【文章页数】:121 页
【学位级别】:博士
【部分图文】:
图1-1霜霉菌及其形态??
卵菌纲,霜霉目,霜霉科,单轴霉属m。单轴霉属的多核、无隔管状菌丝体蔓延在寄??主的细胞间隙中,以瘤状吸器进入植物细胞内吸收营养。一般情况下,发病部位会产生白色??霜状霉层(图1-A、B),即病菌的孢子囊梗和孢子囊。孢子囊梗从叶片叶片的气孔伸出,后??分支出小梗,大多为三分支,也有叉状分枝,小梗之间多数呈直角,如图1-C。孢子囊梗上??长出孢子囊,孢子囊再产生并释放出游动孢子,如图1-DW。??"...'1;:1£;3??图1-1霜霉菌及其形态??(A)葡萄叶片上的霜霉菌(B)孢子囊梗和孢子囊(C)从气孔处形成的孢子梗(D)孢子囊梗产生的孢??子囊(Gessler?以?a/.,2011)???Figure?1?-1.?Morphological?characteristics?of?P.viticola??(A)?Plasmopara?viticola?on?abaxial?leaf?surface.?(B)?Sporangiophores?and?sporangia?of?Plasmopara?viticola.?(C)??Sporangiophores?in?formation?exiting?from?a?stoma.?(D)?Sporangia?on?sporangiophores?(Gessler?et?al.20?\?1).??霜霉菌的繁殖方式分为有性繁殖和无性繁殖两个阶段,其侵染方式也分为初次侵染和二??次侵染两个阶段(图1-2)。冬季,雄器和藏卵器通过受精作用产生融合细胞,形成二倍体卵??孢子,卵孢子在病叶或者其他病残组织在土壤里越冬。第二年春天,霜霉菌卵孢子在适宜的??温度和湿度条件下产生抱子囊
胞膜内?所以,除了上述提到的复合受体,类细胞质受体激酶(receptor-like?cytoplasmic??kinases,RLCKs)在其中起到了重要作用[65^。许多RLCKs已经成为连接PRRs和下游防??御系统的核心物质(图1-3)[58]。在这些RLCKs中,BIKl(botrytis-inducedkinasel)是重要的中??心组件[7°]。作为拟南芥RLCKsVII型蛋白亚家族的一员,当没有配体诱导时,BIK1以无活??性的形式分别与FLS2和BAK1相结合[7U72]。当受flg22诱导后,BAK1与FLS2的复合体??使BIK1磷酸化。BIK1从复合体游离出来,激活下游信号。RIK1还能与FLS2,?EFR,?PEPRs??和CERK1直接结合来调控PRRs激发的信号通路[71%。在拟南芥中,RLCKVII家族中其他??成员PBSl-LIKEl(PBLl),PBL27,?PCRKs和一个RLCK?XII家族成员,都能与PRRs直接结??合并在PTI信号通路中发挥重要作用[7W6]。??8??
本文编号:2898327
本文链接:https://www.wllwen.com/kejilunwen/jiyingongcheng/2898327.html
最近更新
教材专著