mtDNA和TYR基因在区分貂、狐和貉组织中的应用
发布时间:2021-09-24 13:56
水貂、狐狸和貉是重要的毛皮经济动物,近些年来,因具有较高的经济价值而被大量人工饲养。除作为裘皮加工业原材料外,去皮后产生的胴体,由于其价格低廉,时常被非法加工成畜禽产品,对食品安全造成了严重威胁。因此,建立毛皮动物组织的分子鉴别检测技术,对维护毛皮动物产业健康发展具有重要意义。本研究旨在利用Cytb基因从常见肉制品中鉴别貂狐貉组织,并进一步利用TYR和12S rRNA基因对不同品种的水貂进行区分,最后利用mtDNA中D-loop区的差异性对相同品种不同水貂个体进行鉴别。首先,本研究根据GenBank已发表的水貂、狐狸和貉的Cytb基因序列设计了3对特异引物,分别进行PCR扩增及酶切验证,并对各引物的特异性、灵敏度、以及交叉性进行分析。同时,优化退火温度并构建多重PCR,并对其特异性、灵敏度、稳定性进行试验验证。其次,选取水貂的TYR基因和mtDNA中的12S rRNA基因,对三种不同品种的水貂进行基因扩增、回收、测序,并将其结果进行比较分析。第三,选取水貂mtDNA的D-loop区全长设计引物,进行PCR扩增、回收、纯化、克隆、挑菌、测序,随后进行数据分析。结果显示:(1)所建立的多重...
【文章来源】:山东农业大学山东省
【文章页数】:70 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
水貂线粒体基因组结构
mtDNA和TYR基因在区分貂、狐和貉组织中的应用14(9)将吸附柱CB3放回收集管中,12,000g离心2min,弃掉废液。将吸附柱CB3置于室温放置5min以上,以彻底晾干吸附柱中残留漂洗液中的乙醇;(10)将晾干后的吸附柱CB3转入一个干净的离心管中,向吸附膜的中间部位悬空滴加35μL洗脱缓冲液TE,室温放置2min以上,12,000g离心2min,将溶液收集;将提取的DNA模板经Nano-600超微量核酸蛋白测定仪测定,选取浓度>50ng/μL、OD260nm/OD280nm的数值在1.8-2.1之间的DNA模板,放置-20℃冰箱进行保存。2.2.1.2引物设计与合成由于本试验的目的在于建立一个多重PCR检测方法,所以3种毛皮动物的引物设计必须要保障后续试验的成功。在多重PCR中,为保证试验的扩增效率,3对引物扩增条件应相对一致,为下一步试验提供保障。多重PCR的引物在设计在满足普通PCR的条件外,同时也需要注意下面几个方面:①对于该方法主要应对常见肉类中是否掺杂貂狐貉肉,因此设计引物要对比对常见动物与貂、狐和貉cytb基因序列的进行进化树分析(见图2),②各条引物之间不能互补,尤其是形成二聚体;检验是否形成二聚体,需要进行单一PCR扩增。③扩增物种之间的引物序列也不能存在较大的同源性;依据图2结果,对3种毛皮动物和家犬的Cytb基因序列进行比对(见图3)。④各条引物的Tm尽量相同,保证扩增的退火温度一致。⑤各引物扩增的片段大小一定要呈现梯度,而且片段之间的距离要大于200bp以上,来便于观察电泳结果。图210种动物细胞色素b基因进化树分析Fig.2Evolutionarytreeanalysisofcytochromebgenesin10animals
山东农业大学硕士专业学位论文15图3貂、狐、貉和犬Cytb基因序列进行比对结果Fig.3Cytbgenesequencecomparisonofmink,fox,raccoondoganddog根据NCBI已发表的水貂Cytb序列(GenBank:KF990329.1)、狐狸Cytb序列(GenBank:DQ498127.1)、貉Cytb序列(GenBank:JX099889.1),依据图3比对的结果,A、B为水貂上下游引物初始端,C、D为狐狸上下游引物初始端,E、F为貉上下游引物初始端,再根据其他多重PCR扩增条件,利用PrimerPremier6.0软件设计3对特异性引物,引物序列如下表1,由北京六合华大基因有限公司合成;并让其设计且合成一对能够扩增脊椎动物的通用引物;上游引物:5′-GTAGTCATATGCTTGTCTC-3′,下游引物:5′-CTTCCGTCAATTCCTTTAAG-3′(1200bp)。
【参考文献】:
期刊论文
[1]建昌马mtDNA D-loop区遗传多样性及系统进化分析[J]. 周凡莉,黄卫平,金素钰,杨世忠,黄林,饶开晴,郑玉才. 中国畜牧兽医. 2020(01)
[2]基于Cytb基因的NCBI数据库序列可靠性分析[J]. 黄娅琳,徐燕红,侯森林,顾翀实. 基因组学与应用生物学. 2019(09)
[3]2018年中国水貂 狐 貉取皮数量统计分析[J]. 王殿华. 北京皮革. 2019(09)
[4]近红外光谱定性定量检测牛肉汉堡饼中猪肉掺假[J]. 白京,李家鹏,邹昊,田寒友,刘飞,李文采,王辉,张振琪,王守伟. 食品科学. 2019(08)
[5]多重PCR技术在实验动物病原检测中的应用[J]. 张飞燕,赵玲,金洁,王芸,吕龙宝. 中国比较医学杂志. 2018(10)
[6]毛皮动物饲料使用过程中存在的问题与解决方法[J]. 常璞. 农民致富之友. 2018(18)
[7]基于质谱的蛋白质组学技术在食品真伪鉴别及品质识别方面的应用[J]. 田尉婧,张九凯,程海燕,李鲜,陈颖. 色谱. 2018(07)
[8]近三年国内近红外检测应用研究进展[J]. 杨晓丽,黄晓寒,杨秋艳. 云南化工. 2018(06)
[9]加快毛皮动物绿色养殖对策研究[J]. 纪丽丽,屈平平,李涛,姜八一. 中国畜牧兽医文摘. 2018(04)
[10]山东省毛皮动物绿色养殖技术推广策略的探讨[J]. 屈平平,李涛,姜八一. 中国畜牧兽医文摘. 2018(03)
硕士论文
[1]主要毛皮动物毛皮/肉/脂肪组织特性及褪黑激素对兔的发育调节[D]. 王康.山东农业大学 2017
[2]利用毛皮动物胴体加工饲料用肉骨粉标准的研究制定[D]. 许茂思.东北林业大学 2016
[3]TYR、ASIP基因多态性与绵羊毛色相关的研究[D]. 孟浩浩.石河子大学 2014
[4]用线粒体12S rRNA基因序列研究寄生蚌螨遗传结构及系统发育[D]. 谢院荣.南昌大学 2005
本文编号:3407875
【文章来源】:山东农业大学山东省
【文章页数】:70 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
水貂线粒体基因组结构
mtDNA和TYR基因在区分貂、狐和貉组织中的应用14(9)将吸附柱CB3放回收集管中,12,000g离心2min,弃掉废液。将吸附柱CB3置于室温放置5min以上,以彻底晾干吸附柱中残留漂洗液中的乙醇;(10)将晾干后的吸附柱CB3转入一个干净的离心管中,向吸附膜的中间部位悬空滴加35μL洗脱缓冲液TE,室温放置2min以上,12,000g离心2min,将溶液收集;将提取的DNA模板经Nano-600超微量核酸蛋白测定仪测定,选取浓度>50ng/μL、OD260nm/OD280nm的数值在1.8-2.1之间的DNA模板,放置-20℃冰箱进行保存。2.2.1.2引物设计与合成由于本试验的目的在于建立一个多重PCR检测方法,所以3种毛皮动物的引物设计必须要保障后续试验的成功。在多重PCR中,为保证试验的扩增效率,3对引物扩增条件应相对一致,为下一步试验提供保障。多重PCR的引物在设计在满足普通PCR的条件外,同时也需要注意下面几个方面:①对于该方法主要应对常见肉类中是否掺杂貂狐貉肉,因此设计引物要对比对常见动物与貂、狐和貉cytb基因序列的进行进化树分析(见图2),②各条引物之间不能互补,尤其是形成二聚体;检验是否形成二聚体,需要进行单一PCR扩增。③扩增物种之间的引物序列也不能存在较大的同源性;依据图2结果,对3种毛皮动物和家犬的Cytb基因序列进行比对(见图3)。④各条引物的Tm尽量相同,保证扩增的退火温度一致。⑤各引物扩增的片段大小一定要呈现梯度,而且片段之间的距离要大于200bp以上,来便于观察电泳结果。图210种动物细胞色素b基因进化树分析Fig.2Evolutionarytreeanalysisofcytochromebgenesin10animals
山东农业大学硕士专业学位论文15图3貂、狐、貉和犬Cytb基因序列进行比对结果Fig.3Cytbgenesequencecomparisonofmink,fox,raccoondoganddog根据NCBI已发表的水貂Cytb序列(GenBank:KF990329.1)、狐狸Cytb序列(GenBank:DQ498127.1)、貉Cytb序列(GenBank:JX099889.1),依据图3比对的结果,A、B为水貂上下游引物初始端,C、D为狐狸上下游引物初始端,E、F为貉上下游引物初始端,再根据其他多重PCR扩增条件,利用PrimerPremier6.0软件设计3对特异性引物,引物序列如下表1,由北京六合华大基因有限公司合成;并让其设计且合成一对能够扩增脊椎动物的通用引物;上游引物:5′-GTAGTCATATGCTTGTCTC-3′,下游引物:5′-CTTCCGTCAATTCCTTTAAG-3′(1200bp)。
【参考文献】:
期刊论文
[1]建昌马mtDNA D-loop区遗传多样性及系统进化分析[J]. 周凡莉,黄卫平,金素钰,杨世忠,黄林,饶开晴,郑玉才. 中国畜牧兽医. 2020(01)
[2]基于Cytb基因的NCBI数据库序列可靠性分析[J]. 黄娅琳,徐燕红,侯森林,顾翀实. 基因组学与应用生物学. 2019(09)
[3]2018年中国水貂 狐 貉取皮数量统计分析[J]. 王殿华. 北京皮革. 2019(09)
[4]近红外光谱定性定量检测牛肉汉堡饼中猪肉掺假[J]. 白京,李家鹏,邹昊,田寒友,刘飞,李文采,王辉,张振琪,王守伟. 食品科学. 2019(08)
[5]多重PCR技术在实验动物病原检测中的应用[J]. 张飞燕,赵玲,金洁,王芸,吕龙宝. 中国比较医学杂志. 2018(10)
[6]毛皮动物饲料使用过程中存在的问题与解决方法[J]. 常璞. 农民致富之友. 2018(18)
[7]基于质谱的蛋白质组学技术在食品真伪鉴别及品质识别方面的应用[J]. 田尉婧,张九凯,程海燕,李鲜,陈颖. 色谱. 2018(07)
[8]近三年国内近红外检测应用研究进展[J]. 杨晓丽,黄晓寒,杨秋艳. 云南化工. 2018(06)
[9]加快毛皮动物绿色养殖对策研究[J]. 纪丽丽,屈平平,李涛,姜八一. 中国畜牧兽医文摘. 2018(04)
[10]山东省毛皮动物绿色养殖技术推广策略的探讨[J]. 屈平平,李涛,姜八一. 中国畜牧兽医文摘. 2018(03)
硕士论文
[1]主要毛皮动物毛皮/肉/脂肪组织特性及褪黑激素对兔的发育调节[D]. 王康.山东农业大学 2017
[2]利用毛皮动物胴体加工饲料用肉骨粉标准的研究制定[D]. 许茂思.东北林业大学 2016
[3]TYR、ASIP基因多态性与绵羊毛色相关的研究[D]. 孟浩浩.石河子大学 2014
[4]用线粒体12S rRNA基因序列研究寄生蚌螨遗传结构及系统发育[D]. 谢院荣.南昌大学 2005
本文编号:3407875
本文链接:https://www.wllwen.com/kejilunwen/jiyingongcheng/3407875.html
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