高温处理的尼罗罗非鱼性腺分化过程及性别决定相关基因时空表达模式研究
发布时间:2021-10-17 10:24
鱼类属于低等脊椎动物,其性别决定机制包括基因型性别决定(GSD)、环境依赖型性别决定(ESD)和基因-环境依赖型性别决定(GSD+ESD)。环境因素包括温度、光照、p H值、含氧量、种群密度、外源性类固醇类激素等,研究发现,温度是鱼类性别决定中影响作用较大且最关键的一类环境因素,被称为温度依赖型性别决定(TSD)。有些鱼类的性别决定受遗传和温度的双重控制,且具有性染色体,被称为遗传性别决定和温度依赖型性别决定的混合型(GSD+TSD),如尼罗罗非鱼(Oreochromis niloticus)就是一种GSD+TSD鱼类。尼罗罗非鱼雄鱼生长速度比雌鱼快30%多,发展高雄或全雄尼罗罗非鱼的养殖可有效提高经济效益。在尼罗罗非鱼性别分化关键期进行高温处理,可使雄鱼比例显著提高,即一部分遗传型雌鱼性逆转为生理型雄鱼。本研究以尼罗罗非鱼为研究对象,以正常养殖温度(28℃)和高温处理温度(36℃)进行养殖,通过分析各组生殖细胞类型和出现时序的差异、性别分化相关基因表达水平以及表达位置的差异,揭示高温处理的雌鱼与正常雌、雄鱼性腺发育过程的异同点。研究结果如下:1、本研究通过HE染色和Vasa免疫组化对...
【文章来源】:山东农业大学山东省
【文章页数】:48 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
全雌家系高温处理示意图
高温处理的尼罗罗非鱼性腺分化过程及性别决定相关基因时空表达模式研究3 结果与分析3.1 尼罗罗非鱼基因组 DNA 的提取采用试剂盒法提取的尼罗罗非鱼基因组 DNA,样品包含 XX 和 XY 个体,将提的部分基因组 DNA 进行 1%的琼脂糖凝胶电泳检测,电泳后在凝胶成像仪的紫外灯下察,如图 2 所示,所提取的基因组 DNA 条带清晰,片段完整,之后经分光光度计测浓度,发现所提取的所有基因组 DNA 浓度均在 200-300 μg/mL 之间,并且 OD260/OD2的比值均在 1.8 与 2.0 之间,完全符合 PCR 反应的模板要求,可进行下一步试验。M
图 2 尼罗罗非鱼基因组 DNA 电泳图Fig.2 Genomic DNAelectrophoresis map of Nile tilapia注:M: DL5000 DNAMarkerNote: M: DL5000 DNAMarker3.2 通过性别连锁分子标记鉴别雌、雄鱼采用性别特异分子标记引物通过 PCR 反应检测各组雌雄罗非鱼的遗传性别,经过 1%的琼脂糖凝胶电泳检测,如图 3 结果显示,雌性尼罗罗非鱼只有一条长1151bp 的条带,雄性尼罗罗非鱼包含两条条带,长度分别为 1151bp,711bp。M
【参考文献】:
期刊论文
[1]大黄鱼gsdf和amh基因的克隆及表达分析[J]. 林爱强,谢仰杰,徐双斌,叶坤,龚诗琦,王志勇. 南方水产科学. 2017(06)
[2]鱼类性腺发育及产卵类型研究进展[J]. 徐钢春,鲍明明,杜富宽,徐跑. 长江大学学报(自科版). 2017(06)
[3]尼罗罗非鱼仔鱼个体发育及性腺分化的发育[J]. 陈兴汉,刘晓春,蒙子宁,张勇,林浩然,叶卫. 热带生物学报. 2012(03)
[4]鱼类性别决定的影响因素[J]. 田佳,陈芸,王艺磊,张雅芝. 生命科学. 2010(10)
[5]vasa基因研究进展[J]. 陈玉冬,邹志华,王艺磊,张子平. 动物学杂志. 2010(04)
[6]鱼类生殖细胞[J]. 徐红艳,李名友,桂建芳,洪云汉. 中国科学:生命科学. 2010(02)
[7]泥鳅的性腺分化及温度对性腺分化的影响[J]. 陈玉红,林丹军,尤永隆. 中国水产科学. 2007(01)
[8]鱼类精巢发育的研究进展[J]. 王成武,王树迎,宋卉,张怀菊. 山东畜牧兽医. 2004(02)
[9]长江江豚精巢发育和组织学特征的研究[J]. 姜新发. 水生生物学报. 1998(04)
[10]尼罗罗非鱼性腺发育的研究[J]. 王令玲,仇潜如,吴福煌. 淡水渔业. 1986(02)
硕士论文
[1]罗非鱼gsdf在性腺的表达及其在性别决定中的功能[D]. 杨惠惠.西南大学 2014
[2]温度对鲫鱼性别决定的影响及分子机制探讨[D]. 岳敏娟.福建师范大学 2009
本文编号:3441602
【文章来源】:山东农业大学山东省
【文章页数】:48 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
全雌家系高温处理示意图
高温处理的尼罗罗非鱼性腺分化过程及性别决定相关基因时空表达模式研究3 结果与分析3.1 尼罗罗非鱼基因组 DNA 的提取采用试剂盒法提取的尼罗罗非鱼基因组 DNA,样品包含 XX 和 XY 个体,将提的部分基因组 DNA 进行 1%的琼脂糖凝胶电泳检测,电泳后在凝胶成像仪的紫外灯下察,如图 2 所示,所提取的基因组 DNA 条带清晰,片段完整,之后经分光光度计测浓度,发现所提取的所有基因组 DNA 浓度均在 200-300 μg/mL 之间,并且 OD260/OD2的比值均在 1.8 与 2.0 之间,完全符合 PCR 反应的模板要求,可进行下一步试验。M
图 2 尼罗罗非鱼基因组 DNA 电泳图Fig.2 Genomic DNAelectrophoresis map of Nile tilapia注:M: DL5000 DNAMarkerNote: M: DL5000 DNAMarker3.2 通过性别连锁分子标记鉴别雌、雄鱼采用性别特异分子标记引物通过 PCR 反应检测各组雌雄罗非鱼的遗传性别,经过 1%的琼脂糖凝胶电泳检测,如图 3 结果显示,雌性尼罗罗非鱼只有一条长1151bp 的条带,雄性尼罗罗非鱼包含两条条带,长度分别为 1151bp,711bp。M
【参考文献】:
期刊论文
[1]大黄鱼gsdf和amh基因的克隆及表达分析[J]. 林爱强,谢仰杰,徐双斌,叶坤,龚诗琦,王志勇. 南方水产科学. 2017(06)
[2]鱼类性腺发育及产卵类型研究进展[J]. 徐钢春,鲍明明,杜富宽,徐跑. 长江大学学报(自科版). 2017(06)
[3]尼罗罗非鱼仔鱼个体发育及性腺分化的发育[J]. 陈兴汉,刘晓春,蒙子宁,张勇,林浩然,叶卫. 热带生物学报. 2012(03)
[4]鱼类性别决定的影响因素[J]. 田佳,陈芸,王艺磊,张雅芝. 生命科学. 2010(10)
[5]vasa基因研究进展[J]. 陈玉冬,邹志华,王艺磊,张子平. 动物学杂志. 2010(04)
[6]鱼类生殖细胞[J]. 徐红艳,李名友,桂建芳,洪云汉. 中国科学:生命科学. 2010(02)
[7]泥鳅的性腺分化及温度对性腺分化的影响[J]. 陈玉红,林丹军,尤永隆. 中国水产科学. 2007(01)
[8]鱼类精巢发育的研究进展[J]. 王成武,王树迎,宋卉,张怀菊. 山东畜牧兽医. 2004(02)
[9]长江江豚精巢发育和组织学特征的研究[J]. 姜新发. 水生生物学报. 1998(04)
[10]尼罗罗非鱼性腺发育的研究[J]. 王令玲,仇潜如,吴福煌. 淡水渔业. 1986(02)
硕士论文
[1]罗非鱼gsdf在性腺的表达及其在性别决定中的功能[D]. 杨惠惠.西南大学 2014
[2]温度对鲫鱼性别决定的影响及分子机制探讨[D]. 岳敏娟.福建师范大学 2009
本文编号:3441602
本文链接:https://www.wllwen.com/kejilunwen/jiyingongcheng/3441602.html
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