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神农香菊萜类物质合成关键基因CiDXR的功能鉴定及启动子活性分析

发布时间:2021-10-30 08:47
  神农香菊(Chrysanthemum indicum var.aroma)ticum是菊科(Compositae)菊属(Chrysanthemum)的多年生草本植物,植株香气浓郁,分泌物主要化学成分为龙脑、α-侧柏酮、β-侧柏酮等萜类化合物,是一种珍贵的香料植物。DXR基因是萜类物质合成MEP途径的一个关键的限速酶,对下游MEP的合成具有重要影响。为探究并完善神农香菊萜类物质合成通路关键酶基因的表达方式,本研究以神农香菊为实验材料,预测并分析了其萜类物质合成通路的关键酶基因,克隆并分析了神农香菊萜类合酶(CiDXR)基因及其启动子。研究结果如下:在经过茉莉酸甲酯处理后的神农香菊转录组数据中,共筛选到21个上调表达的萜类物质合成通路基因,未发现下调表达的基因。GO生物学过程注释到的主要集中在氧化还原过程、代谢过程、裂解酶、解旋酶和萜烯合酶活性生物过程中。在经过UV-B紫外光处理后的神农香菊转录组中,共发现68个差异表达基因,上调表达的片段共有36个,下调表达的基因片段有32个。GO生物过程注释主要集中在氧化还原过程、代谢过程和催化活性中。有6个基因被注释到萜类合酶活性过程。从神农香菊叶片... 

【文章来源】:东北林业大学黑龙江省 211工程院校 教育部直属院校

【文章页数】:66 页

【学位级别】:硕士

【部分图文】:

神农香菊萜类物质合成关键基因CiDXR的功能鉴定及启动子活性分析


图2-2?GO生物过程注释富集分析??Fig.2-2?Enrichment?analysis?of?GO?biologic?process?annotation??

过程图,富集,过程,酶活性


?2基于转录组数据的神农香菊萜类物质合酶分析???C?19588.80269?-1.83?1?16?S?叶绿体?Helianthus?rRNA修饰,氧化还原过程,代谢??annuus?过程,rRNA加工,甲基化,RNA??加工,氧化还原酶活性,rRNA甲??基转移酶活性,甲基转移酶活性,??0-甲基转移酶活性??C19588.51252?-3.00?1392?否?胞外基质?Solanum?异戊二烯转移酶活性??tuberosum??C19588.86252?-1.45?1433?是?叶绿体?Heliantfms?甲基化,甲基转移酶活性??annuus??基50「?????叙?mm??I?i??1"?J?「;??丨丨■?■?_「……r,??图2-4?GO生物过程注释富集分析??Fig.2-4?Enrichment?analysis?of?GO?biologic?process?annotation??-17-??

电泳图,神农,电泳图,叶片


ler?96?(瑞士)的96孔板中,设计qRT-PCR的反应程??序为:??95°C?2?min??94°C?30?s?1??60°C?15?s?>?40?cycles??72°C?10s??37°C?30s??使用2-aaCT法计算基因的表达丰富度,不同部位的表达量的计算以根中表达量记为??1,茉莉酸甲酯处理下的基因表达量以未经处理的植物叶片中的表达量为1。??3.3结果与分析??3.3.1?CVDAT?基因ORF的克隆与序列分析??神农香菊叶片总RNA?(图3-1)的电泳图片表明,5s、18s和28s的三条核糖体带??清晰,说明提取出来的RNA具有良好的完整性,无降解现象,可以用于下一步的反转??录和基因克隆实验。??图3-1神农香菊叶片RNA电泳图??Fig.?3-1?Quantity?of?extracted?total?RNA?of?C.?indicum?aromaticum??利用设计好的特异性引物CiDXR-F/CiDXR-R,以神农香菊总RNA反转录获得的??cDNA为模板,利用PCR扩增获得目的片段(图3-2),可以看出最明亮的条带在??1500bp附近,和前期转录组数据中所预测的长度相近。将剩余PCR产物进行胶回收,??连接pUC-T载体,转入£?C〇//DH5a感受态细胞中,将转化好的菌液涂在含有50mg/L??的Amp的LB抗性培养基中,在37?°C下恒温培养12h-16h。通过PCR扩增筛选出10??个阳性克隆(图3-3),选取3个最亮的条带进行测序。测序结果显示:开放阅读框??(ORF)的长度为1419bp,编码472个氨基酸的多肽链(图3-4),该序列具有3个保??守

【参考文献】:
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博士论文
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硕士论文
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[3]山核桃CcLFY基因启动子的克隆及功能分析[D]. 李峥.浙江农林大学 2012



本文编号:3466431

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