外源海藻糖通过激发高温干旱下小麦环式电子流保护PSⅡ
发布时间：2021-08-26 00:52
小麦是一种在全世界范围内广泛种植的重要粮食作物,然而高温和干旱已经成为影响小麦能否高产的重要因素。且在野外真实的大田生产中,高温和干旱胁迫经常同时发生。胁迫破坏光合机构,限制小麦生长发育,进而导致产量降低。大量报道表明非还原性二糖海藻糖可以提高光系统Ⅱ活性,保护和稳定反应中心,但其调控机制仍不清楚。胁迫下,环式电子流是一种重要的保护机制,能够保护光系统Ⅱ复合体。本文研究了外源海藻糖对高温干旱胁迫下小麦幼苗光系统Ⅱ活性、D1蛋白含量、PQ库大小以及ATP合酶活性等的影响,探讨了其与环式电子流之间的联系以及通过何种机制保护光系统Ⅱ复合体,为光系统Ⅱ的保护提供理论依据。主要结果如下:1.外源海藻糖激发了高温干旱胁迫下小麦幼苗环式电子流高温、干旱和共同胁迫下,小麦幼苗叶片P700+初始还原速率加快;外源海藻糖处理可进一步提高小麦幼苗叶片P700+初始还原速率、激发环式电子流进而保护光合机构。用抗霉素A抑制PGR5-依赖环式电子流途径,发现外源海藻糖处理的小麦幼苗P700+初始还原速率下降超过50%,说明外源海藻糖处理激发环式电子流主要通过激发PGR5-依赖环式电子流途径。2.外源海藻糖缓解了高...
【文章来源】：华东师范大学上海市 211工程院校 985工程院校 教育部直属院校
【文章页数】：78 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
图１小麦幼苗的培养??
华东师范大学硕士学位论文??２５°Ｃ下进行。第二片伸展叶用于测量。??…？一?ＮＡＤＰＨ?二１＝１??／?．．…?＠??ｇ＾ｖ「＼?Ｖ＂??ＮＤＩＩ?＾８１１?＾?ＰＱ?Ｃｖｔｂ６ｆ?ＶＳ＼ｊ??ＯＥＣ?—國画＾??＇ｓ－７■—?）??ＩＩ２Ｏ?〇２＇ｈ＋??图２光合电子传递链示意图??Ｆｉｇ．?２?Ｓｃｈｅｍａｔｉｃ?ｓｈｏｗｉｎｇ?ｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈｅｔｉｃ?ｅｌｅｃｔｒｏｎ?ｔｒａｎｓｐｏｒｔ?ｃｈａｉｎ??２．３．３?ＰＱ库测量??Ｐ７００?氧化还原状态的测量通过?Ｄｕａｌ－ＰＡＭ－１００（ＨｅｉｎｚＷａｌｚ，?Ｅｆｆｅｌｔｒｉｃｈ，?Ｇｅｒｍａｎｙ）??完成（ＳｃｈｒｅｉｂｅｒａｎｄＫｌｕｇｈａｍｍｅｒ，?２００８）。Ｐ７００信号的测量：在远红光背景下，首先??给予单周转光（ＳＴ，５０?ｍｓ，ＰＱ库被氧化），随后给予多周转光（ＭＴ，?５０?ｍｓ，ＰＱ??库被完全还原）（Ｓａｖｋｃｈｅｔａｌ．，２００１；Ｓｃｈｒｅｉｂｅｒｅｔａｌ．，?１９８９）。远红光背景下?ＳＴ?和?ＭＴ??照光后Ｐ７００氧化曲线与Ｐ７００＋的稳态水平之间的互补面积分别代表ＳＴ处（ＳＴ－??ａｒｅａｓ）和ＭＴ处的面积（ＭＴ－ａｒｅａｓ）。这被用来计算与Ｐ７００相关的电子传递链间电子??的功能库大小：ｅ－?／Ｐ７（Ｋ）＝?ＭＴ．ａｒｅａｓ?／?ＳＴ－ａｒｅａｓ?（Ｓａｖｉｔｃｈ?ｅｔ?ａｌ．，?２００１）。所有的测定需暗适??应３０?ｍｉｎ并在２５°Ｃ下进行。第二片伸展叶用于测量。??２．３．４?Ｐ５１５／Ｐ５３５?测量??参照?Ｓｃｈｒｅｉｂｅｒ?和?Ｋｌｕｇｈａｍｍｅｒ（Ｓｃｈｒｅｉｂｅｒ?ａｎｄ?Ｋｌｕｇｈａｍ
华东师范大学硕士学位论文??第三章结果与分祈??３．１高温干旱胁迫下，海藻糖对于Ｐ７００＋初始还原速率的影响??观察图３，常温及胁迫（干旱、高温、高温干旱）条件下，相对于ＣＫ组，外??源海藻糖可以增强小麦幼苗Ｐ７００＋初始还原速率，尤其是在干旱胁迫下，Ｐ７００＋初??始还原速率增加了?１０４％。??１６?□?ＣＫ?＾ＴＲＥ??｜?１４?■?￡?３?ａ?ａ??■〇?１２?＇?１?ｉ?ｉ??８１Ｊ?Ｊ?ｉ?？?Ｉ?Ｓ?＾?Ｉ?ｒｉ??ｃ?ＤＲＯ?ＤＲ１?ＤＲ２?ＤＲ３?ＨＲＯ?ＨＲｉ?ＨＲ２?ＨＲ３?ＤＰｆｆｉ．０?ＤＨＲ１ＤＨＲ２?ＤＨＲ３??图３高温干旱胁迫下，外源海藻糖对小麦幼苗叶片Ｐ７００＋初始还原速率的影响??Ｆｉｇ．?３?Ｅｆｆｅｃｔｓ?ｏｆ?ｅｘｏｇｅｎｏｕｓ?ｔｒｅｈａｌｏｓｅ?ｏｎ?ｔｈｅ?ｉｎｉｔｉａｌ?ｒｅｄｕｃｔｉｏｎ?ｒａｔｅ?ｏｆ?Ｐ７００＋?ｉｎ?ｔｈｅ?ｌｅａｖｅｓ?ｏｆ?ｗｈｅａｔ??ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ?ｕｎｄｅｒ?ｄｒｏｕｇｈｔ?ａｎｄ?ｈｅａｔ?ｓｔｒｅｓｓ．??对照组（ＣＫ），海藻糖组（ＴＲＥ）；常温（Ｃ），干旱恢复０ｈ、２４ｈ、４８ｈ和７２ｈ??（ＤＲＯ、?ＤＲ１、ＤＲ２?和?ＤＲ３）；高温恢复?Ｏｈ、２４ｈ?、４８ｈ?和?７２ｈ?（ＨＲＯ、ＨＲ１、ＨＲ２?和??ＨＲ３）；高温干旱恢复?Ｏｈ、２４ｈ、４８ｈ?和?７２ｈ?（ＤＨＲＯ、ＤＨＲ１、ＤＨＲ２?和?ＤＨＲ３）。不同??字母代表显著性差异（Ｐ＜?０．０５）。??干旱恢复２４?ｈ时，海藻糖对于Ｐ７００＋初始还原速率的增强效应仍然保留，但??高温及共同胁迫恢复２４?ｈ时，ＴＲＥ组的Ｐ７００＋初始还原速率与ＣＫ组无明显区别
本文编号：3363210
【文章来源】：华东师范大学上海市 211工程院校 985工程院校 教育部直属院校
【文章页数】：78 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
图１小麦幼苗的培养??
华东师范大学硕士学位论文??２５°Ｃ下进行。第二片伸展叶用于测量。??…？一?ＮＡＤＰＨ?二１＝１??／?．．…?＠??ｇ＾ｖ「＼?Ｖ＂??ＮＤＩＩ?＾８１１?＾?ＰＱ?Ｃｖｔｂ６ｆ?ＶＳ＼ｊ??ＯＥＣ?—國画＾??＇ｓ－７■—?）??ＩＩ２Ｏ?〇２＇ｈ＋??图２光合电子传递链示意图??Ｆｉｇ．?２?Ｓｃｈｅｍａｔｉｃ?ｓｈｏｗｉｎｇ?ｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈｅｔｉｃ?ｅｌｅｃｔｒｏｎ?ｔｒａｎｓｐｏｒｔ?ｃｈａｉｎ??２．３．３?ＰＱ库测量??Ｐ７００?氧化还原状态的测量通过?Ｄｕａｌ－ＰＡＭ－１００（ＨｅｉｎｚＷａｌｚ，?Ｅｆｆｅｌｔｒｉｃｈ，?Ｇｅｒｍａｎｙ）??完成（ＳｃｈｒｅｉｂｅｒａｎｄＫｌｕｇｈａｍｍｅｒ，?２００８）。Ｐ７００信号的测量：在远红光背景下，首先??给予单周转光（ＳＴ，５０?ｍｓ，ＰＱ库被氧化），随后给予多周转光（ＭＴ，?５０?ｍｓ，ＰＱ??库被完全还原）（Ｓａｖｋｃｈｅｔａｌ．，２００１；Ｓｃｈｒｅｉｂｅｒｅｔａｌ．，?１９８９）。远红光背景下?ＳＴ?和?ＭＴ??照光后Ｐ７００氧化曲线与Ｐ７００＋的稳态水平之间的互补面积分别代表ＳＴ处（ＳＴ－??ａｒｅａｓ）和ＭＴ处的面积（ＭＴ－ａｒｅａｓ）。这被用来计算与Ｐ７００相关的电子传递链间电子??的功能库大小：ｅ－?／Ｐ７（Ｋ）＝?ＭＴ．ａｒｅａｓ?／?ＳＴ－ａｒｅａｓ?（Ｓａｖｉｔｃｈ?ｅｔ?ａｌ．，?２００１）。所有的测定需暗适??应３０?ｍｉｎ并在２５°Ｃ下进行。第二片伸展叶用于测量。??２．３．４?Ｐ５１５／Ｐ５３５?测量??参照?Ｓｃｈｒｅｉｂｅｒ?和?Ｋｌｕｇｈａｍｍｅｒ（Ｓｃｈｒｅｉｂｅｒ?ａｎｄ?Ｋｌｕｇｈａｍ
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本文编号：3363210
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