海洋细菌HQM9T的鉴定及其琼胶酶研究
发布时间:2022-02-20 22:10
琼胶酶是一种能够降解琼胶,生成琼胶寡糖的糖苷水解酶。近年来,随着糖生物学的深入研究,人们发现琼胶寡糖尤其是新琼寡糖在诱导细胞调亡、抗氧化、抗炎、促进双歧杆菌生长、预防糖尿病等方面具有显著的生理活性,因此可广泛应用在食品、饲料、化妆品和医药领域。琼胶寡糖制备方面,传统的化学酸解法方法存在着反应条件难控制、降解产物不纯等问题,而酶解法则有底物专一性强、产物特异性高、反应条件温和等优点,因此对琼胶酶的研究具有重要意义。本文以本实验室分离得到的海洋细菌HQM9T为主要研究对象,完成了其新种鉴定、发酵产酶条件优化以及琼胶酶基因的克隆表达等工作。海洋细菌HQM9T分离自生长在威海海域的收集的石花菜表面,是一株具有很强琼胶降解能力细菌,在2216E平板上培养3-5天可完全液化平板。HQM9T的呼吸醌类型是MK-6,主要脂肪酸类型是C15:0ISO, C17:0iSO3OH, C16:1w7c/15iSO2OH, C16:03OH, C16:0, C17:02OH, C14:0, C13:1AT12-13, C13:0iso.主要的极性脂包括磷脂酰乙醇胺和一种未知的脂质。基因组DNA(G+C)含量是3...
【文章来源】:山东大学山东省211工程院校985工程院校教育部直属院校
【文章页数】:89 页
【学位级别】:硕士
【文章目录】:
摘要
ABSTRACT
縮略词
第一章 绪论
1.1 琼胶
1.2 琼胶酶
1.2.1 琼胶酶的来源
1.2.2 琼胶酶在糖苷水解酶家族中的分类
1.2.3 琼胶酶活性的检测方法
1.2.4 琼胶酶的应用
1.2.5 琼胶酶的研究进展
1.3 本论文研究的立题依据
第二章 海洋细菌新种—噬琼胶海水菌(Aquimarina agarivorans sp.nov)HQM9~T的鉴定及发酵产酶条件优化
2.1 实验材料和仪器
2.1.1 实验材料
2.1.2 实验菌株
2.1.3 主要仪器
2.2 实验方法
2.2.1 菌株生理生化鉴定
2.2.2 菌株API快速鉴定
2.2.3 细菌脂肪酸含量测定
2.2.4 细菌极性脂分析
2.2.5 细菌醌型分析
2.2.6 菌株保藏
2.2.7 菌株HQM9~T产酶发酵条件优化
2.3 实验结果与分析
2.3.1 菌株HQM9~T的生理生化特征
2.3.2 菌株HQM9~T的脂肪酸含量
2.3.3 菌株HQM9~T醌型及极性脂分析
2.3.4 菌株HQM9~T产琼胶酶发酵条件的正交实验结果
2.3.5 优化后菌株HQM9~T琼胶酶的发酵进程曲线测定
2.4 讨论
第三章 海洋细菌HQM9~T基因组测序结果分析与胞外琼胶酶谱质谱鉴定
3.1 实验材料和仪器
3.1.1 实验材料
3.1.2 实验菌株
3.1.3 主要仪器
3.2 实验方法
3.2.1 种子液的制备
3.2.2 菌株HQM9~T粗酶液的制备
3.2.3 不同时间琼胶酶琼胶酶组分的变化情况
3.2.4 活性电泳检测粗酶液琼胶酶组分
3.2.5 菌株HQM9~T基因组的提取
3.2.6 菌株HQM9~T基因组测序和分析
3.2.7 琼胶酶基因的虚拟酶切与质谱鉴定结果比较
3.3 实验结果与分析
3.3.1 不同碳源诱导下的菌株HQM9~T的胞外琼胶酶
3.3.2 质谱鉴定结果
3.3.3 菌株HQM9~T基因组测序结果分析
3.3.4 菌株HQM9~T琼胶酶基因的虚拟酶切与质谱鉴定比较
3.4 讨论
第四章 菌株HQM9~T琼胶酶基因的克隆与表达
4.1 实验材料与仪器
4.1.1 培养基
4.1.2 实验菌株和质粒
4.1.3 主要仪器
4.2 实验方法
4.2.1 琼胶酶基因的生物信息学分析
4.2.2 琼胶酶基因的克隆
4.2.3 其它基因的pMAL融合表达
4.3 实验结果与分析
4.3.1 琼胶酶基因的生物信息学分析
4.3.2 琼胶酶基因的扩增
4.3.3 基因和载体的双酶切
4.3.4 SDS-PAGE检测琼胶酶基因的表达情况
4.3.5 重组酶的活性检测
4.3.6 重组酶Aga16AD的纯化
4.3.7 重组酶酶学性质研究
4.3.8 其它基因的pMAL融合表达
4.4 讨论
总结
参考文献
致谢
攻读学位期间发表的学术论文目录
附录
学位论文评阅及答辩情况表
【参考文献】:
期刊论文
[1]一株产琼胶酶土壤细菌Paenibacillus sp. MY03的筛选与分子鉴定[J]. 韩文君,古静燕,李天东,罗英,阮期平. 绵阳师范学院学报. 2007(02)
[2]琼胶酶的研究进展[J]. 李能章,邱荣蓉,彭远义. 生命科学研究. 2006(S1)
[3]Lowry法和Bradford法测定玻璃酸钠中蛋白质含量的比较[J]. 杨桂兰,郭学平. 中国生化药物杂志. 2003(03)
[4]琼胶酶研究进展[J]. 杜宗军,王祥红,李筠,陈吉祥. 微生物学通报. 2003(01)
[5]用海藻细胞工程技术,发展我国的海水养殖业[J]. 戴继勋. 世界科技研究与发展. 2002(03)
[6]海藻多糖降解酶的性质和作用机理[J]. 胡晓珂,江晓路,管华诗. 微生物学报. 2001(06)
[7]细菌降解琼胶的研究进展[J]. 王静雪,江晓路,胡晓珂. 中国水产科学. 2001(03)
本文编号:3635903
【文章来源】:山东大学山东省211工程院校985工程院校教育部直属院校
【文章页数】:89 页
【学位级别】:硕士
【文章目录】:
摘要
ABSTRACT
縮略词
第一章 绪论
1.1 琼胶
1.2 琼胶酶
1.2.1 琼胶酶的来源
1.2.2 琼胶酶在糖苷水解酶家族中的分类
1.2.3 琼胶酶活性的检测方法
1.2.4 琼胶酶的应用
1.2.5 琼胶酶的研究进展
1.3 本论文研究的立题依据
第二章 海洋细菌新种—噬琼胶海水菌(Aquimarina agarivorans sp.nov)HQM9~T的鉴定及发酵产酶条件优化
2.1 实验材料和仪器
2.1.1 实验材料
2.1.2 实验菌株
2.1.3 主要仪器
2.2 实验方法
2.2.1 菌株生理生化鉴定
2.2.2 菌株API快速鉴定
2.2.3 细菌脂肪酸含量测定
2.2.4 细菌极性脂分析
2.2.5 细菌醌型分析
2.2.6 菌株保藏
2.2.7 菌株HQM9~T产酶发酵条件优化
2.3 实验结果与分析
2.3.1 菌株HQM9~T的生理生化特征
2.3.2 菌株HQM9~T的脂肪酸含量
2.3.3 菌株HQM9~T醌型及极性脂分析
2.3.4 菌株HQM9~T产琼胶酶发酵条件的正交实验结果
2.3.5 优化后菌株HQM9~T琼胶酶的发酵进程曲线测定
2.4 讨论
第三章 海洋细菌HQM9~T基因组测序结果分析与胞外琼胶酶谱质谱鉴定
3.1 实验材料和仪器
3.1.1 实验材料
3.1.2 实验菌株
3.1.3 主要仪器
3.2 实验方法
3.2.1 种子液的制备
3.2.2 菌株HQM9~T粗酶液的制备
3.2.3 不同时间琼胶酶琼胶酶组分的变化情况
3.2.4 活性电泳检测粗酶液琼胶酶组分
3.2.5 菌株HQM9~T基因组的提取
3.2.6 菌株HQM9~T基因组测序和分析
3.2.7 琼胶酶基因的虚拟酶切与质谱鉴定结果比较
3.3 实验结果与分析
3.3.1 不同碳源诱导下的菌株HQM9~T的胞外琼胶酶
3.3.2 质谱鉴定结果
3.3.3 菌株HQM9~T基因组测序结果分析
3.3.4 菌株HQM9~T琼胶酶基因的虚拟酶切与质谱鉴定比较
3.4 讨论
第四章 菌株HQM9~T琼胶酶基因的克隆与表达
4.1 实验材料与仪器
4.1.1 培养基
4.1.2 实验菌株和质粒
4.1.3 主要仪器
4.2 实验方法
4.2.1 琼胶酶基因的生物信息学分析
4.2.2 琼胶酶基因的克隆
4.2.3 其它基因的pMAL融合表达
4.3 实验结果与分析
4.3.1 琼胶酶基因的生物信息学分析
4.3.2 琼胶酶基因的扩增
4.3.3 基因和载体的双酶切
4.3.4 SDS-PAGE检测琼胶酶基因的表达情况
4.3.5 重组酶的活性检测
4.3.6 重组酶Aga16AD的纯化
4.3.7 重组酶酶学性质研究
4.3.8 其它基因的pMAL融合表达
4.4 讨论
总结
参考文献
致谢
攻读学位期间发表的学术论文目录
附录
学位论文评阅及答辩情况表
【参考文献】:
期刊论文
[1]一株产琼胶酶土壤细菌Paenibacillus sp. MY03的筛选与分子鉴定[J]. 韩文君,古静燕,李天东,罗英,阮期平. 绵阳师范学院学报. 2007(02)
[2]琼胶酶的研究进展[J]. 李能章,邱荣蓉,彭远义. 生命科学研究. 2006(S1)
[3]Lowry法和Bradford法测定玻璃酸钠中蛋白质含量的比较[J]. 杨桂兰,郭学平. 中国生化药物杂志. 2003(03)
[4]琼胶酶研究进展[J]. 杜宗军,王祥红,李筠,陈吉祥. 微生物学通报. 2003(01)
[5]用海藻细胞工程技术,发展我国的海水养殖业[J]. 戴继勋. 世界科技研究与发展. 2002(03)
[6]海藻多糖降解酶的性质和作用机理[J]. 胡晓珂,江晓路,管华诗. 微生物学报. 2001(06)
[7]细菌降解琼胶的研究进展[J]. 王静雪,江晓路,胡晓珂. 中国水产科学. 2001(03)
本文编号:3635903
本文链接:https://www.wllwen.com/nykjlw/scyylw/3635903.html