S-5对人肝癌细胞Huh-7增殖和凋亡的影响
本文选题:S-5 切入点:肝癌 出处:《郑州大学》2017年硕士论文 论文类型:学位论文
【摘要】:背景和目的:恶性肿瘤严重威胁人类身体健康,原发性肝癌(简称肝癌),90%属于肝细胞癌,为全世界发病率最高的恶性肿瘤之一,在中国其死亡率高居所有癌症第二位[1-3]。手术切除为肝癌最有效的治疗手段,但肝癌发现时多处于晚期,手术难以切除,并且术后复发率非常高[4-6]。而目前肝癌治疗药物存在严重的毒副作用[7-9],且治疗效果也不够理想,远未满足临床需求。因此,寻找新的安全、有效的抗肿瘤药物具有重大的社会及经济效益。细胞凋亡是由基因所控制而主动进行的一种程序性的死亡方式[10,11]。由线粒体所介导的内部细胞凋亡途径[13]和死亡受体介导的外部凋亡通路[12]为发生细胞凋亡的两条主要通路,两条通路最终均通过caspase-3的活化而产生凋亡效应。细胞的凋亡与癌细胞的增殖抑制有着紧密的联系,为更多抗癌药物的开发提供了新的思路。S-5是一种3-氧代-1,2-萘醌类似物,该类似物经初步验证具有良好的抗肿瘤作用。在前期相关工作基础上,本研究探讨S-5在体外对人肝癌细胞Huh-7增殖、凋亡的影响及其机制,为进一步开发S-5成为新的抗肝癌药物提供重要理论参考。方法:用不同浓度的S-5(0.94~15μmol·L-1)作用于体外培养的Huh-7细胞,采用MTT法检测细胞生长抑制率;应用FCM(Annexin V-FITC/PI)双染法检测细胞凋亡率;运用吖啶橙/溴化乙啶(AO/EB)双荧光染色法及透射电镜技术观察细胞凋亡形态;JC-1法检测S-5对线粒体膜电位影响;Western blot法检测S-5对Huh-7细胞中Bcl-2、Bax、Caspase-3以及Fas、Fas L和TNF-α蛋白表达的影响。结果:1 S-5可显著抑制Huh-7细胞的增殖(P0.05),作用24h、48h、72h的IC50值分别为:3.955μmol·L-1、3.522μmol·L-1、1.659μmol·L-1,呈明显的剂量和时间依赖效应。2 S-5作用Huh-7后细胞凋亡率显著增加(P0.05),经0.94、1.88、3.75、7.5μmol·L-1处理48h后,细胞凋亡率分别为:(7.37±0.40)%、(34.70±1.32)%、(76.87±1.46)%、(95.0±2.0)%,呈明显的剂量依赖性。3凋亡细胞的形态发生改变,出现凋亡小体及细胞质碎片。4 S-5可诱导线粒体膜电位下降并呈剂量依赖性,经0.94、1.88、3.75、7.5μmol·L-1处理48h后,JC-1聚合物与单体的比值分别为:11.65±3.36、5.69±1.17、2.04±1.54、0.67±0.24。5 S-5可抑制细胞中Bcl-2蛋白表达,上调Bax、Caspase3、Fas、Fas L、TNF-α蛋白的表达,均呈剂量依赖性。结论:1 S-5在体外可显著抑制Huh-7细胞的增殖。2诱导细胞凋亡是S-5抑制Huh-7细胞增殖的重要机制。3 S-5可通过线粒体凋亡途径和死亡受体通路诱导Huh-7细胞凋亡。
[Abstract]:Background and objective: malignant tumor is a serious threat to human health. 90% of primary liver cancer (HCC) belongs to hepatocellular carcinoma (HCC), which is one of the most common malignant tumors in the world. In China, the mortality rate is the second highest in all cancers [1-3]. Surgical resection is the most effective treatment for liver cancer. And the recurrence rate is very high [4-6]. However, the current treatment of liver cancer has serious side effects [7-9], and the therapeutic effect is not satisfactory, which is far from meeting the clinical needs. Effective antineoplastic drugs have great social and economic benefits. Apoptosis is a programmed mode of death controlled by genes [1011]. Mitochondrial mediated internal cell apoptosis pathway [13] and death response. Somatic mediated external apoptotic pathway [12] is the two main pathway of apoptosis. The apoptosis of the two pathways is closely related to the inhibition of the proliferation of cancer cells, which provides a new idea for the development of more anticancer drugs. S-5 is a 3-oxo-1-2-naphthoquinone analogue. The antitumor effect of S-5 on Huh-7 proliferation and apoptosis of human hepatoma cells in vitro and its mechanism were studied based on the previous related work, and the antitumor effect of S-5 on the proliferation and apoptosis of human hepatoma cells in vitro was investigated. In order to further develop S-5 as a new anti-hepatoma drug, it provides an important theoretical reference. Methods: the cell growth inhibition rate was detected by MTT assay, the apoptosis rate was detected by FCM(Annexin V-FITC / Pi double staining, and the Huh-7 cells were treated with different concentrations of S-5 0.94 渭 mol 路L -1 and 0.94 渭 mol 路L -1, respectively. The effects of S-5 on mitochondrial membrane potential in Huh-7 cells were observed by acridine orange / ethidium bromide AO/ EBB double fluorescence staining and transmission electron microscopy. Western blot assay was used to detect the expression of Bcl-2OU BaxCaspase-3, Fas-FAS L and TNF- 伪 protein in Huh-7 cells. Results: 1 / 1 S-5 significantly inhibited the proliferation of Huh-7 cells (P 0.05). The IC50 values of 24 h / 48 h and 72 h were 3.955 渭 mol 路L -1, 3.522 渭 mol 路L -1 and 3.522 渭 mol 路L -1, 1.659 渭 mol 路L -1, respectively. In a dose-dependent and time-dependent manner, the apoptotic rate of Huh-7 cells increased significantly after treatment with 0.94 渭 mol 路L -1, 1.88 渭 mol 路L -1 and 3.75 渭 mol 路L -1, respectively. The apoptotic rate was 7.37 卤0.40 and 34.70 卤1.32, respectively, in a dose-dependent manner. The apoptotic cells showed obvious dose-dependent changes in morphology. The appearance of apoptotic bodies and cytoplasmic fragments of 4.4-S-5 could induce the decrease of mitochondrial membrane potential in a dose-dependent manner. The ratio of JC-1 polymer to monomer was: 1: 11.65 卤3.36 卤5.69 卤1.174.04 卤1.540.67 卤0.24.5 S-5 after 48h treatment with 0.94 ~ 1.88 渭 mol 路L ~ (-1), the expression of Bcl-2 protein was inhibited, and the expression of Bax-Caspase3FasFAS FAS / TNF- 伪 protein was up-regulated. Conclusion: 1 / 1 S-5 can significantly inhibit the proliferation of Huh-7 cells and induce apoptosis in vitro. It is an important mechanism that S-5 inhibits the proliferation of Huh-7 cells. 3. 3 S-5 can induce apoptosis of Huh-7 cells through mitochondrial apoptosis pathway and death receptor pathway.
【学位授予单位】:郑州大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2017
【分类号】:R735.7
【相似文献】
相关期刊论文 前10条
1 王建霞,黄永富,张清泉;细胞凋亡与疾病关系[J];交通医学;2000年06期
2 王东生,袁肇凯,郭志华;细胞凋亡与中医药[J];中国中医药信息杂志;2000年12期
3 万晓艳,于苏国,郭玉芹,何庆;细胞凋亡与自身免疫性甲状腺疾病的研究进展[J];中国地方病防治杂志;2002年06期
4 祝伟民,林建棣,马晓东,段小平;运动与细胞凋亡[J];中国临床康复;2004年27期
5 王会玲,景文莉,张小红,高维娟;细胞凋亡与心肌缺血-再灌注损伤[J];承德医学院学报;2005年04期
6 梁薇;细胞凋亡的中药调节机制[J];四川中医;2005年11期
7 张松彪;细胞凋亡与细胞养生[J];中国科技产业;2005年01期
8 杨竹林,伍汉文;细胞凋亡调控因素有关基因的研究[J];国外医学(生理、病理科学与临床分册);1997年02期
9 刘恩梅,杨锡强;细胞凋亡及其影响因素[J];重庆医学;1998年01期
10 ;美开发调控细胞凋亡药物[J];中国肿瘤;1999年07期
相关会议论文 前10条
1 陈颖丽;李前忠;;不同亚细胞位置的细胞凋亡蛋白质的结构特性分析[A];第十一次中国生物物理学术大会暨第九届全国会员代表大会摘要集[C];2009年
2 孙英丽;赵允;朱山;翟中和;;植物细胞凋亡及其机理的研究[A];中国细胞生物学学会第七次会议论文摘要汇编[C];1999年
3 刘二龙;袁慧;;锌与细胞凋亡[A];2003全国家畜内科学学术研讨会论文专辑[C];2003年
4 邱洁;高海青;;锌在细胞凋亡中的作用研究进展[A];山东省微量元素科学研究会第三届学术研讨会论文汇编[C];2006年
5 俞雅萍;;细胞凋亡的机制及途径和影响因素[A];华东六省一市生物化学与分子生物学学会2006年学术交流会论文集[C];2006年
6 于青;袁伟杰;姚建;;晚期糖基化终末产物引起足细胞凋亡的机制[A];2007年浙沪两地肾脏病学术年会资料汇编[C];2007年
7 季宇彬;尹立;汲晨锋;;调控细胞凋亡的线粒体因素[A];肿瘤病因学研究与中西医结合肿瘤综合诊疗交流研讨会论文集[C];2009年
8 吴经纬;汤长发;;运动中细胞凋亡的线粒体变化特征[A];湖南省生理科学会2006年度学术年会论文摘要汇编[C];2007年
9 蒲小平;李长龄;屠鹏飞;宋志宏;;中药肉丛蓉成分抗神经细胞凋亡的实验研究[A];第七届全国生化药理学术讨论会论文摘要集[C];2000年
10 江键;宋诚荣;崔黎丽;方影;王小平;;静电场对细胞凋亡作用的初步探讨[A];中国物理学会第九届静电学术年会论文集[C];2000年
相关重要报纸文章 前10条
1 商东;“细胞凋亡”与临床医学[N];中国医药报;2001年
2 张志军;细胞凋亡与中医药[N];中国医药报;2002年
3 ;“细胞凋亡疗法”正逐步成为治疗癌症的新途径[N];中国高新技术产业导报;2002年
4 记者张建松;治疗癌症新途径:细胞凋亡疗法[N];科技日报;2002年
5 李明辉;“细胞凋亡”治癌症[N];医药导报;2002年
6 洪敏;细胞凋亡研究引人关注[N];中国医药报;2008年
7 陶春祥;细胞凋亡对心脏疾病的影响[N];中国医药报;2003年
8 本报实习记者 梁媛媛;薛定:发现癌症“开关”[N];北京科技报;2010年
9 高书明;诱导癌细胞凋亡[N];中国医药报;2004年
10 勇汇;中药诱导癌细胞凋亡研究进展[N];中国医药报;2002年
相关博士学位论文 前10条
1 杨利;系列多氮类化合物的抗肿瘤活性研究[D];武汉大学;2012年
2 张浩;从分子、细胞和动物水平研究铅诱发氧化损伤及细胞凋亡的效应与机理[D];山东大学;2015年
3 何欣怡;家蚕微孢子虫(Nosema bombycis)抑制家蚕BmN细胞凋亡的功能研究[D];浙江大学;2015年
4 冯全服;从线粒体途径研究川芎嗪诱导HepG2细胞凋亡效应机制[D];南京中医药大学;2015年
5 张晓倩;高糖诱导Bim蛋白高表达而促肾近曲小管上皮细胞凋亡的机制探讨[D];山东大学;2015年
6 孙健玮;PTEN基因负调控Raf1磷酸化的作用及其对PC3细胞凋亡的影响[D];昆明医科大学;2014年
7 徐林艳;肿瘤细胞凋亡过程中TNFRSF10B和CFLAR调控机制研究[D];山东大学;2015年
8 樊庆端;生物调控网络的建模与动力学行为研究[D];上海大学;2015年
9 王德选;WNK_3对钠氯协调转运子的调节及在胚肾细胞凋亡中的保护作用[D];南方医科大学;2015年
10 叶嘉;Nogo-B在急性肺损伤肺泡上皮细胞凋亡中的作用[D];第二军医大学;2015年
相关硕士学位论文 前10条
1 柏祥芳;S-5对人肝癌细胞Huh-7增殖和凋亡的影响[D];郑州大学;2017年
2 曹璐璐;2,2’,4,4’-四溴联苯醚(BDE-47)对人胚肾细胞(HEK293)的毒理效应及作用机制研究[D];中国科学院烟台海岸带研究所;2015年
3 张薇;蒜头果蛋白诱导HepG-2细胞凋亡的研究[D];云南民族大学;2015年
4 唐建国;视黄醇X受体出核抑制对神经元细胞凋亡的影响[D];福建医科大学;2015年
5 安璐;3-氯-1,2-丙二醇细胞毒性及其诱导HEK293细胞凋亡途径探究[D];江南大学;2015年
6 杨翔;Procaspase-8的异常表达抑制TRAIL诱导肿瘤细胞凋亡[D];昆明理工大学;2015年
7 张昌明;I3C通过调控p53泛素化对喉癌Hep-2细胞凋亡的影响[D];延边大学;2015年
8 彭涵;共轭亚油酸对仔猪脂肪细胞凋亡的影响[D];西南大学;2015年
9 李立辉;ΔFosB通过MMP-9调控山羊乳腺上皮细胞凋亡的分子机制[D];西北农林科技大学;2015年
10 杨鑫铖;Hedgehog信号通路在大鼠急性胰腺炎腺泡细胞凋亡中的作用[D];河北医科大学;2015年
,本文编号:1569507
本文链接:https://www.wllwen.com/shoufeilunwen/mpalunwen/1569507.html