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空肠弯曲菌酰胺醇类诱导耐药株与敏感株的组学比较研究

发布时间:2017-04-10 12:10

  本文关键词:空肠弯曲菌酰胺醇类诱导耐药株与敏感株的组学比较研究,由笔耕文化传播整理发布。


【摘要】:空肠弯曲菌(Campylobacter jejuni)是重要的食源性病原菌,可经食物链传播给人,引起人的细菌性腹泻和格林-巴利综合征。酰胺醇类药物(氯霉素(CAP)、氟苯尼考(FFC)和甲砜霉素)除氯霉素外,是兽医临床上防治C. jejuni等革兰氏阴性菌感染的重要抗生素。随着该类药物的广泛应用,造成耐药性的普遍存在,耐药C. jejuni的传播将给人医临床弯曲菌病的治疗带来巨大压力。转录组学、蛋白质组学和代谢组学作为新兴的“组学”研究技术,能够从整体水平阐述特定生物学发生发展过程及调控机制。本文以酰胺醇类诱导耐药C. jejuni为研究对象开展转录组学、蛋白质组学和代谢组学研究,阐明其产生耐药的分子机制。 本研究采用RNA-Seq高通量测序技术对等量混合的C. jejuni敏感株和耐药株进行了链特异性转录组测序。参考C. jejuni ATCC33560基因组,经测序产量和组装质量统计分析,共获得1347个转录本。结合转录组数据库比对,CAP耐药C. jejuni中共鉴定出290个差异表达基因(DEGs),其中182个上调,108个下调;这些DEGs主要参与代谢通路、次级生物合成代谢、不同环境中微生物的代谢、核糖体和鞭毛组装等途径。FFC耐药C. jejuni中共筛选出93个DEGs,其中32个上调,61个下调;这些DEGs主要参与代谢通路、次级生物合成代谢、不同环境中微生物的代谢、核糖体和氮代谢等途径。 采用超滤辅助样品制备(FASP)结合SWATH-MS数据采集方法对C. jejuni敏感株和CAP、FFC耐药株进行非标记定量蛋白质组学分析。结果显示,CAP耐药C. jejuni中共筛选出197个差异蛋白,FFC耐药C. jejuni中共鉴定出84个差异蛋白与有关;两者共有差异蛋白34个,其中上调18个,下调16个。GO (Gene Ontology)功能注释和Pathway代谢途径分析表明,CAP耐药C. jejuni中差异蛋白集中在细胞基质、膜、细胞器等细胞组分中,主要参与代谢、细胞过程和单一生物过程等生物过程,涉及的代谢通路包括代谢途径、次级代谢物的生物合成、氨基酸生物合成和ABC转运蛋白等。FFC耐药C. jejuni中差异蛋白集中在细胞基质、细胞器、细胞膜、和膜基质等细胞组分,主要参与细胞过程、单一生物过程、代谢和定植过程,涉及的代谢通路包括代谢途径、次级代谢物的生物合成、氨基酸生物合成、双组分系统和鞭毛组装等。 基于超高效液相色谱-飞行时间质谱(UHPLC-Q-TOF/MS)对C. jeuni敏感株和CAP, FFC耐药株进行了非靶向代谢组学分析。经主成分分析(PCA)和偏最小二乘法判别分析(OPLS-DA),CAP耐药C. jejuni中共鉴定出41个差异代谢物,FFC耐药C. jejuni中共筛选出40个差异代谢物,两者共有差异代谢物27个。经KEGG代谢通路分析,发现甘油磷脂代谢、鞘磷脂代谢和脂肪酸代谢与CAP耐药相关,而甘油磷脂代谢、鞘氨酸代谢、色氨酸代谢等与FFC耐药相关。 综上所述,C. jejuni对酰胺醇类药物(CAP和FFC)耐药性的产生主要是与核糖体、鞭毛组装、ABC转运蛋白、趋化蛋白等途径有关。另外,甘油磷脂代谢途径在介导酰胺醇类药物耐药性过程中发挥重要作用。本研究表明多组学研究技术平台为揭示C. jejuni耐药机制提供新的角度,同时为进一步阐明酰胺醇类耐药C. jejuni的耐药机制,防止耐药性的产生和研制新的抗生素提供了科学依据。
【关键词】:空肠弯曲菌 酰胺醇类药物 耐药性 转录组学 蛋白质组学 代谢组学
【学位授予单位】:中国农业大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2015
【分类号】:S852.61
【目录】:
  • 摘要5-6
  • Abstract6-11
  • 图表目录11-13
  • 缩略词13-15
  • 第一章 绪论15-33
  • 1.1 研究目的与意义15
  • 1.2 国内外研究现状15-32
  • 1.2.1 空肠弯曲菌概述15-17
  • 1.2.2 空肠弯曲菌耐药现状17
  • 1.2.3 空肠弯曲菌酰胺醇类耐药机制研究17-18
  • 1.2.4 转录组学及其在细菌耐药性研究中的应用18-22
  • 1.2.5 蛋白质组学及其在细菌耐药性研究中的应用22-25
  • 1.2.6 代谢组学及其在细菌耐药性研究中的应用25-32
  • 1.3 研究内容与方法32-33
  • 第二章 酰胺醇类耐药空肠弯曲菌的链特异性转录组学研究33-63
  • 2.1 材料与方法33-41
  • 2.1.1 材料33-35
  • 2.1.2 方法35-41
  • 2.2 结果41-57
  • 2.2.1 C.jejuni的最小抑菌浓度及靶位点突变41
  • 2.2.2 C.jejuni总RNA样品制备41-42
  • 2.2.3 C.jejuni总RNA样品质量分析42-44
  • 2.2.4 测序产量及组装质量分析44
  • 2.2.5 基因覆盖度、测序深度的分布(基因表达注释)44-45
  • 2.2.6 基因差异表达分析45-47
  • 2.2.7 GO功能显著性富集分析47-49
  • 2.2.8 Pathway分析49-51
  • 2.2.9 新转录本预测51-53
  • 2.2.10 SNP分析53
  • 2.2.11 sRNA分析53-57
  • 2.3 讨论57-61
  • 2.3.1 介导CAP和FFC耐药C.jejuni差异基因的筛选57-58
  • 2.3.2 介导CAP和FFC耐药C.jejuni的DEGs功能分析58-61
  • 2.3.3 sRNA分析61
  • 2.4 小结61-63
  • 第三章 基于SWATH-MS的酰胺醇类耐药空肠弯曲菌非标记定量蛋白质组学研究63-83
  • 3.1 材料与方法63-67
  • 3.1.1 材料63-65
  • 3.1.2 方法65-67
  • 3.2 结果与分析67-76
  • 3.2.1 数据非依赖性采集评价方法的重现性67-68
  • 3.2.2 nLC-MS运行和SWATH定量的重现性68-69
  • 3.2.3 肽段的定量69-70
  • 3.2.4 介导酰胺醇类耐药空肠弯曲菌的差异蛋白质70-73
  • 3.2.5 GO功能分析73-75
  • 3.2.6 Pathway分析75-76
  • 3.3 讨论76-82
  • 3.3.1 非标记定量技术(Label-free quantitation)的优势76-78
  • 3.3.2 非标记定量分析的样品制备方法78-79
  • 3.3.3 酰胺醇类耐药空肠弯曲菌差异蛋白的初步分析79-82
  • 3.4 小结82-83
  • 第四章 酰胺醇类耐药空肠弯曲菌的非靶向代谢组学分析83-115
  • 4.1 材料与方法83-91
  • 4.1.1 材料83-86
  • 4.1.2 方法86-91
  • 4.2 结果与分析91-110
  • 4.2.1 样品淬灭方法优化91-92
  • 4.2.2 样品提取方法优化92-93
  • 4.2.3 C.jejuni耐药株与敏感株非靶向代谢组学分析93-110
  • 4.3 讨论110-114
  • 4.3.1 C.jejuni代谢组学样品前处理方法110-111
  • 4.3.2 介导C.jejuni酰胺醇类耐药差异代谢物分析111-113
  • 4.3.3 多组学综合分析113-114
  • 4.4 小结114-115
  • 第五章 结论115-116
  • 创新点116-117
  • 参考文献117-127
  • 附录127-139
  • 附录1 SWATH采集模式筛选的介导CAP耐药空肠弯曲菌的差异蛋白质127-134
  • 附录2 SWATH采集模式筛选的介导FFC耐药空肠弯曲菌的差异蛋白质134-139
  • 致谢139-141
  • 作者简介141

【参考文献】

中国期刊全文数据库 前5条

1 潘炳旗;宋超;吉爱国;宋淑亮;;新型兽用广谱抗生素氟苯尼考研究现状[J];山东畜牧兽医;2007年05期

2 周大炜;朱之燕;;微生物代谢组学的样品前处理[J];化学通报;2008年06期

3 郝艳华;张维;陈明;;细菌双组分系统的研究进展[J];中国农业科技导报;2012年02期

4 邱全胜;双组分系统——细胞识别渗透胁迫信号的感应器[J];生物化学与生物物理进展;2000年06期

5 钱小红;;定量蛋白质组学分析方法[J];色谱;2013年08期


  本文关键词:空肠弯曲菌酰胺醇类诱导耐药株与敏感株的组学比较研究,,由笔耕文化传播整理发布。



本文编号:296680

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