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保护斑马鱼(Danio rerio)胚胎免受细菌感染的新型母源性LPS结合蛋白ZRANB2的鉴定

发布时间:2017-09-06 15:38

  本文关键词:保护斑马鱼(Danio rerio)胚胎免受细菌感染的新型母源性LPS结合蛋白ZRANB2的鉴定


  更多相关文章: 斑马鱼 胚胎 ZRANB2 母源性 LPS结合蛋白


【摘要】:斑马鱼是研究母源性免疫的重要模式生物,已经逐渐成为人们进行免疫学研究的新宠。本文采用高通量分离的方法从斑马鱼胚胎提取液中分离得到一个LPS结合蛋白-ZRANB2。ZRANB2普遍存在于各种生物体中,但是其功能和作用机制所知甚少。本文对ZRANB2进行了生物信息学分析、表达模式分析、体内体外抗菌活性研究以及抗菌活性中心的探寻,初步证明ZRANB2是一个母源性免疫因子。首先,本文分别在分子水平和蛋白水平,证明ZRANB2在斑马鱼各组织中都有表达,卵巢中表达量最高,在胚胎发育早期ZRANB2也大量存在,这说明其确实为一母源性蛋白。其次,通过序列比对发现,斑马鱼ZRANB2与哺乳动物、鸟类、两栖类和硬骨鱼的ZRANB2的一致性在氨基酸水平达到79.2%,80.3%,80.6%和82.3%,这说明ZRANB2的序列比较保守。经三维结构预测得知,斑马鱼ZRANB2与人ZRANB2结构相似,都主要由β折叠片层组成。再次,体外功能验证证明重组ZRANB2 (rZRANB2)作为模式识别受体可以识别细菌信号分子LPS,能与革兰氏阴性菌大肠杆菌、鳗弧球菌和嗜水气单胞菌结合,可以作为抗菌效应分子来直接杀死细菌。还对其体内活性进行了验证,将rZRANB2用显微注射技术注入斑马鱼早期胚胎可以显著提高胚胎对斑马鱼病原菌嗜水气单胞菌的抵抗能力,同时注入抗ZRANB2的抗体会让抵抗力明显地降低,而注入抗actin的抗体却没有此作用。最后,证明了Z1/37和Z11/37具有体外抗菌活性,将其注入胚胎也会提高胚胎对嗜水气单胞菌的抵抗力,但是多肽Z38/198却没有相应的抗菌活性。综上所述,本文阐明了ZRANB2是一个母源性LPS结合蛋白,可以通过结合和杀死细菌来保护斑马鱼早期胚胎抵御病原菌的侵袭,这是关于ZRANB2功能的一个新发现。本文为研究动物中普遍存在的锌指蛋白的免疫功能提供了新的视角。
【关键词】:斑马鱼 胚胎 ZRANB2 母源性 LPS结合蛋白
【学位授予单位】:中国海洋大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2015
【分类号】:S917.4
【目录】:
  • 摘要5-6
  • Abstract6-13
  • 第一章 文献综述13-33
  • 1 斑马鱼简介13-15
  • 2 鱼类的免疫系统15-23
  • 2.1 免疫系统的个体发生15-16
  • 2.2 淋巴器官16-17
  • 2.2.1 胸腺16
  • 2.2.2 肾脏16-17
  • 2.2.3 脾17
  • 2.3 参与免疫反应的细胞17
  • 2.4 鱼类的非特异性免疫17-22
  • 2.4.1 物理屏障17-18
  • 2.4.2 非特异性细胞的细胞毒性18
  • 2.4.3 抗菌肽18
  • 2.4.4 吞噬作用18
  • 2.4.5 补体18-19
  • 2.4.6 肿瘤坏死因子(TNF)19
  • 2.4.7 干扰素(INF)19-20
  • 2.4.8 白介素(IL)20
  • 2.4.9 其它的细胞因子和趋化因子20
  • 2.4.10 蛋白激酶抑制剂20
  • 2.4.11 溶菌酶20-21
  • 2.4.12 天然抗体21
  • 2.4.13 正五聚蛋白21
  • 2.4.14 转铁蛋白21-22
  • 2.5 鱼类的特异性免疫22-23
  • 2.5.1 抗体22
  • 2.5.2 免疫记忆22-23
  • 2.5.3 细胞的细胞毒性23
  • 2.5.4 适应性免疫中的细胞因子23
  • 3 先天性免疫23-29
  • 3.1 先天性免疫系统的非自我识别23-26
  • 3.2 先天性免疫与疾病26-28
  • 3.3 母源性免疫与鱼类28-29
  • 4 高通量分离技术29-30
  • 5 锌指蛋白研究概况30-31
  • 5.1 锌指结构30-31
  • 5.2 锌指蛋白31
  • 6 ZRANB2的研究概况31-32
  • 7 本文的研究目的和技术路线32-33
  • 7.1 研究目的32
  • 7.2 技术路线32-33
  • 第二章 斑马鱼母源性免疫因子的高通量分离与鉴定33-95
  • 1 前言33
  • 2 材料和方法33-63
  • 2.1 实验材料33-36
  • 2.1.1 实验动物33
  • 2.1.2 实验仪器33-34
  • 2.1.3 实验试剂34-36
  • 2.2 从斑马鱼胚胎提取液中高通量分离母源性免疫因子36-40
  • 2.2.1 斑马鱼卵液的制备36-37
  • 2.2.2 制备交联有LPS的琼脂糖凝胶柱37
  • 2.2.3 上样与洗脱37-38
  • 2.2.4 SDS-PAGE检测38-39
  • 2.2.5 质谱鉴定39-40
  • 2.3 Western blotting检测目的蛋白在不同组织和不同发育时期的存在情况40-41
  • 2.3.1 斑马鱼各组织和不同发育时期匀浆液的获得40
  • 2.3.2 Western blotting检测40-41
  • 2.4 斑马鱼zranb2基因序列的获得41-47
  • 2.4.1 斑马鱼胚胎总RNA提取41-42
  • 2.4.2 斑马鱼胚胎总cDNA的获得42-45
  • 2.4.3 斑马鱼zranb2基因的克隆45-47
  • 2.5 斑马鱼zranb2的序列分析、进化分析和基因组织结构分析47-48
  • 2.6 Real-time PCR技术检测斑马鱼zranb2的表达情况48-50
  • 2.6.1 Real-time PCR所用实验材料的获得48
  • 2.6.2 RNA的提取、cDNA模板的合成与检测48
  • 2.6.3 设计Real-time PCR特异性引物48-49
  • 2.6.4 Real-time PCR扩增49-50
  • 2.7 原位杂交技术检测斑马鱼zranb2的表达情况50-53
  • 2.7.1 合成探针50
  • 2.7.2 原位杂交技术50-53
  • 2.8 斑马鱼ZRANB2重组蛋白的体外表达53-57
  • 2.8.1 斑马鱼ZRANB2体外表达载体的构建53-54
  • 2.8.2 斑马鱼rZRANB2的体外表达54-55
  • 2.8.3 斑马鱼rZRANB2的纯化55-56
  • 2.8.4 斑马鱼rZRANB2的浓缩56-57
  • 2.9 斑马鱼rZRANB2与LPS结合能力的鉴定57-58
  • 2.9.1 用NHS-LC-biotin标记rZRANB2和BSA57
  • 2.9.2 ELISA技术检测rZRANB2与LPS的结合情况57-58
  • 2.9.3 ELISA技术检测rZRANB2与脂质A的结合情况58
  • 2.9.4 ELISA技术检测rZRANB2与单糖的结合情况58
  • 2.10 斑马鱼rZRANB2与细菌结合能力的鉴定58-59
  • 2.10.1 大肠杆菌、鳗弧球菌和嗜水气单胞菌的培养58-59
  • 2.10.2 Western bloting技术分析重组蛋白与细菌的结合情况59
  • 2.10.3 用异硫氰酸荧光素(FITC)标记法分析rZRANB2与细菌的结合能力59
  • 2.11 斑马鱼rZRANB2的抗菌活性的验证59-60
  • 2.11.1 大肠杆菌、鳗弧球菌和嗜水气单胞菌的培养59
  • 2.11.2 斑马鱼rZRANB2对大肠杆菌和鳗弧球菌的抗菌活性的验证59-60
  • 2.11.3 斑马鱼rZRANB2对嗜水气单胞菌的抗菌活性的验证60
  • 2.12 斑马鱼rZRANB2流式细胞术检测60-61
  • 2.13 斑马鱼胚胎中ZRANB2的抗菌活性的验证61-62
  • 2.13.1 检测斑马鱼胚胎提取液中ZRANB2的抗菌活性61
  • 2.13.2 检测斑马鱼体内ZRANB2是否有胚胎防御作用61-62
  • 2.14 斑马鱼胚胎中ZRANB2的浓度测定62
  • 2.15 斑马鱼ZRANB2活性中心的探寻62-63
  • 3 结果63-92
  • 3.1 从斑马鱼胚胎提取液中高通量分离母源性免疫因子63-65
  • 3.1.1 高通量分离斑马鱼母源性免疫因子的质谱结果63-64
  • 3.1.2 Western blotting检测斑马鱼ZRANB2在不同组织中的分布情况64-65
  • 3.1.3 Western blotting检测斑马鱼ZRANB2在不同时期胚胎中的表达情况65
  • 3.2 斑马鱼zranb2基因的序列分析、结构分析、进化分析和共线性分析65-72
  • 3.2.1 斑马鱼zranb2基因序列的获得65-66
  • 3.2.2 斑马鱼zranb2基因的序列分析66-70
  • 3.2.3 斑马鱼ZRANB2结构分析70-71
  • 3.2.4 斑马鱼ZRANB2进化分析71
  • 3.2.5 斑马鱼zranb2基因的共线性分析71-72
  • 3.3 斑马鱼zranb2在不同组织和不同时期的表达模式72-78
  • 3.3.1 qRT-PCR检测的斑马鱼zranb2在不同组织中的表达模式72-74
  • 3.3.2 qRT-PCR检测的斑马鱼zranb2在不同时期的表达模式74-76
  • 3.3.3 WISH检测的斑马鱼zranb2在不同组织中的表达模式76-78
  • 3.4 斑马鱼rZRANB2的体外重组表达78-80
  • 3.4.1 pET-28a/zranb2表达载体的构建78-79
  • 3.4.2 斑马鱼rZRANB2的体外表达和纯化79-80
  • 3.4.3 斑马鱼rZRANB2的Western blotting鉴定80
  • 3.5 斑马鱼rZRANB2与LPS结合情况的验证80-81
  • 3.6 斑马鱼rZRANB2与细菌结合情况的验证81-83
  • 3.6.1 Western blotting检测结果81-82
  • 3.6.2 FITC标记法的检测结果82-83
  • 3.7 斑马鱼rZRANB2体外抗菌活性的验证83
  • 3.8 斑马鱼rZRANB2流式细胞术检测83-84
  • 3.9 斑马鱼早期胚胎中ZRANB2的免疫防护作用的验证84-87
  • 3.9.1 斑马鱼早期胚胎提取液中ZRANB2抗菌活性的验证84-85
  • 3.9.2 斑马鱼早期胚胎中ZRANB2抗菌活性的验证85-87
  • 3.10 斑马鱼早期胚胎中ZRANB2浓度的确定87-89
  • 3.11 斑马鱼ZRANB2截短后多肽的抗菌活性的验证89-92
  • 3.11.1 斑马鱼ZRANB2截短示意图89
  • 3.11.2 Z_(38/198)、Z_(1/37)和Z_(11/37)体外抗菌活性以及与LPS结合能力的验证89-92
  • 3.11.3 Z_(38/198)、Z_(1/37)和Z_(11/37)体内抗菌活性的验证92
  • 4 讨论92-95
  • 总结与展望95-96
  • 参考文献96-109
  • 致谢109-110
  • 个人简历110
  • 发表的文章110

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3 温鼎声;利用模式生物斑马鱼对化合物心脏毒性和急毒性筛选的研究[D];华南理工大学;2012年

4 梁荣朝;丙烯酰胺对斑马鱼生物余能的影响及对其肝、鳃毒性的作用[D];哈尔滨商业大学;2013年

5 海洋;鱼藤素对斑马鱼胚胎CyclinD1的表达调控及相关抗肿瘤机制研究[D];华南理工大学;2015年

6 蒋宇霞;东江流域沉积物生物毒性及其沉积物质量综合评价[D];中国科学院研究生院(广州地球化学研究所);2015年

7 袁忠月;壳聚糖纳米载体对神经系统影响的研究[D];浙江大学;2015年

8 余凯敏;毒死蜱对斑马鱼胚胎的毒性机制研究[D];中国农业科学院;2015年

9 罗茜;斑马鱼生长抑素-1基因靶向敲降和营救以及基于表达谱的胚胎发育功能分析[D];西南大学;2015年

10 胡月阳;UBE2C基因在斑马鱼胚胎发育中的时空表达规律[D];河北医科大学;2015年



本文编号:803984

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