当前位置:主页 > 硕博论文 > 医学博士论文 >

转铁蛋白修饰的新型多聚物载药纳米粒的研制及靶向逆转白血病多药耐药的体外研究

发布时间:2017-09-28 09:38

  本文关键词:转铁蛋白修饰的新型多聚物载药纳米粒的研制及靶向逆转白血病多药耐药的体外研究


  更多相关文章: 转铁蛋白 多药耐药 柔红霉素 汉防己甲素 靶向纳米给药系统


【摘要】:目的为了增加抗肿瘤药物的主动靶向性,降低药物毒副作用,同时克服白血病的多药耐药(MDR),我们研制了一种既能特异性定位于肿瘤细胞膜受体又能阻止药物外排的新型多聚物载药纳米粒——转铁蛋白(Tf)修饰的共载化疗药物柔红霉素(DNR)和中药耐药逆转剂汉防己甲素(Tet)的聚乳酸羟基乙酸-聚赖氨酸-聚乙二醇(PLGA-PLL-PEG)多聚物纳米粒DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG-Tfo方法合成PLGA-PLL-PEG多聚物并进行结构分析,以单载DNR的多聚物纳米粒DNR-PLGA-PLL-PEG为先行试验基础,摸索合成工艺,进一步制备共载DNR及Tet的多聚物纳米粒DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG,最后共价连接肿瘤细胞膜表面高表达的转铁蛋白受体(TfR)的靶向配体Tf,形成靶向肿瘤细胞的载药多聚物纳米粒DNR-PLGA-PLL-PEG-Tf及DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG-Tf。通过核磁共振氢谱、激光粒度仪、高效液相色谱仪、凝胶渗透色谱、高分辨扫描电镜等对制备的纳米粒进行物理表征,通过体外透析试验了解载药纳米粒的释药特性,采用药物抑制试验评估空白纳米粒的安全性以及载药纳米粒在体外对人白血病敏感细胞株K562细胞和耐药细胞株K562/ADR细胞的抑制作用,流式细胞技术检测细胞凋亡率和细胞内DNR的含量,荧光显微镜观察柔红霉素在细胞内的分布,qRT-PCR和Western blotting分析TfR基因和蛋白、mdrl/P-gp以及凋亡相关基因和蛋白的转录和表达。结果1、成功合成的PLGA-PLL-PEG多聚物产率较高(61±14%)、结构明确。以其作为载体制备的靶向载药多聚物纳米粒DNR-PLGA-PLL-PEG-Tf和DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG-Tf,扫描电镜下呈球形或近似球形,粒径分别为229±19 nm和213±12 nm,Zeta电位分别为-18.74±0.28 mV和-19.16±0.31 mV。DNR-PLGA-PLL-PEG-Tf的DNR载药量为5.21±0.11%,Tf含量为2.43±0.26%;DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG-Tf的载药量分别为DNR 3.63±0.15%和Tet 4.27%±0.12%,T晗量为2.18%±0.11%。Tf偶联反应前后药物含量测定结果显示:反应过程中纳米载体所携载的药物稳定,没有泄漏现象。体外释放实验显示:DNR-PLGA-PLL-PEG-Tf、 DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG-Tf的药物释放呈双相性模式,在最初8h存在突释现象,分别释放出52.93±3.76%的DNR,50.47±3.74%的DNR和47.86±2.42%的Tet,此后呈现良好的缓释特征,释放时间超过一周。2、对于敏感细胞株K562细胞,靶向载药纳米粒DNR-PLGA-PLL-PEG-Tf和DNR的抑制作用均随着浓度的增加而增强,DNR-PLGA-PLL-PEG-Tf的IC50值低于DNR(0.91土0.10 gg/mlvs 1.31±0.24 gg/ml),差异有统计学意义。DNR-PLGA-PLL-PEG-Tf和DNR对K562细胞的凋亡率分别为50.24土3.40%和40.78±1.10%,显著高于Con组(P0.05),DNR-PLGA-PLL-PEG-Tf诱导细胞凋亡的能力较DNR强(P0.05)。DNR-PLGA-PLL-PEG-Tf和DNR处理K562细胞后,细胞胞浆胞核均可见较多的DNR分布及明显细胞凋亡的特征性改变,如核固缩、核碎裂、核溶解。DNR-PLGA-PLL-PEG-Tf能显著上调K562细胞tfr基因的转录及TfR蛋白表达(P0.05)。3、对于耐药细胞株K562/ADR细胞,无论DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG-Tf或是DNR和Tet的混合水溶液(DNR/Tet)的抑制作用亦均随着浓度的增加而增强,DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG-Tf的ICso值(为DNR和Tet的总药量之和)低于DNR/Tet(0.87±0.01 gg/mlvs1.47±0.]5 μg/ml),差异有统计学意义。加入耐药逆转剂Tet后,DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG-Tf较DNR-PLGA-PLL-PEG-Tf能显著增加细胞凋亡率(58.21±2.71%vs8.84±0.24%)及细胞内DNR浓度(RFI:37.96±0.42vs16.37±0.64)(P0.05)。与DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG相比,载体经Tf修饰后,DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG-Tf更能增加细胞凋亡率(58.21±2.71%vs 33.41±3.03%)及细胞内DNR浓度(RFI:37.96±0.42vs27.19±1.17)(P0.05)。DNR-PLGA-PLL-PEG组、DNR-PLGA-PLL-PEG-Tfi组和DNR组中DNR主要分布于细胞浆,DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG组、DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG-Tf组和DNR/Tet组中DNR主要分布在细胞浆和细胞核内。DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG、 DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG-Tf、 DNR/Tet组细胞中均可见到细胞凋亡的特征性改变,如核固缩、核碎裂、核溶解。DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG-Tf能显著上调K562/ADR细胞tfr基因的转录和TfR蛋白表达(P0.05);下调K562/ADR细胞mdrl mRNA的转录和P-gp的表达(P0.05);上调Caspase 3和Bax的基因转录和蛋白表达(P0.05),下调Bcl-2、Survivin和NF-κB的基因转录和蛋白表达(P0.05)。结论1、合成的多聚物纳米粒PLGA-PLL-PEG可携载多种药物,末端经Tf修饰,可形成具有主动靶向性能的纳米载体PLGA-PLL-PEG-Tf,粒径均一并具有缓释特点。2、单载柔红霉素的靶向载药纳米粒DNR-PLGA-PLL-PEG-Tf对人白血病敏感细胞株K562细胞有明显的细胞毒性,可能通过细胞内吞作用将药物转运至胞浆内,并缓慢释放药物进入细胞核从而诱导凋亡。同时可能通过上调细胞表面tfr的基因转录和TfR蛋白表达,进一步促进TfR介导的药物内吞作用。3、共载柔红霉素和汉防己甲素的靶向载药纳米粒DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG-Tf在体外对人白血病耐药株K562/ADR细胞有生长抑制作用,可通过下调细胞mdr1/P-gp表达减少DNR的外排作用增加药物蓄积,上调Bax/Bcl-2比值和Caspase3的基因转录和蛋白表达、下调Survivin和NF-κB的基因转录和蛋白表达,从而增强对耐药细胞的促凋亡作用。DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG-Tf还可能通过上调tfr基因转录和TfR蛋白表达进一步促进TfR介导的药物内吞作用。4、 PLGA-PLL-PEG-Tf靶向纳米药物载体是一种有潜力应用于治疗白血病或其他恶性肿瘤的新型、通用的主动靶向载体平台。
【关键词】:转铁蛋白 多药耐药 柔红霉素 汉防己甲素 靶向纳米给药系统
【学位授予单位】:东南大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2015
【分类号】:R943;R96
【目录】:
  • 中文摘要5-8
  • ABSTRACT8-14
  • 缩略词表14-17
  • 第一章 前言17-21
  • 1.1 白血病与多药耐药17
  • 1.2 中药汉防己甲素逆转白血病多药耐药的研究17-18
  • 1.3 PLGA-PLL-PEG-Tf靶向纳米载体的研究18-20
  • 1.4 本课题的研究任务20-21
  • 第二章 文献综述 纳米给药系统在肿瘤靶向治疗及逆转多药耐药中的应用21-31
  • 2.1 肿瘤多药耐药与靶向治疗21-22
  • 2.2 聚合物纳米载药系统在肿瘤靶向治疗中的应用22-26
  • 2.3 转铁蛋白受体为靶点的肿瘤靶向治疗26-30
  • 2.4 小结与展望30-31
  • 第三章 新型主动靶向载药纳米粒DNR-PLGA-PLL-PEG-Tf和DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG-Tf的制备31-57
  • 3.1 材料与方法31-40
  • 3.1.1 主要试剂31-32
  • 3.1.2 实验器材32-33
  • 3.1.3 试剂配制33
  • 3.1.4 实验方法33-40
  • 3.1.4.1 制备PLGA-PLL-PEG聚合物33-35
  • 3.1.4.2 包裹化疗药物柔红霉素及中药耐药逆转剂汉防己甲素35-36
  • 3.1.4.3 Tf修饰的主动靶向载药纳米粒的制备36-37
  • 3.1.4.4 靶向载药纳米粒质量考察37-39
  • 3.1.4.5 细胞与细胞培养39
  • 3.1.4.6 空白载体毒性评估试验39
  • 3.1.4.7 统计学处理39-40
  • 3.2 结果40-52
  • 3.2.1 靶向载药纳米粒的制备40-51
  • 3.2.1.1 PLGA-PLL-PEG制备过程中各步合成产物的表征及合成条件的筛选40-43
  • 3.2.1.2 PLGA-PLL-PEG装载DNR及Tet条件的考察43-45
  • 3.2.1.3 Tf载药纳米粒中Tf的验证45-47
  • 3.2.1.4 纳米粒包封率及载药量的测定47
  • 3.2.1.5 Tf载药纳米粒及其溶液外观47-48
  • 3.2.1.6 Tf载药纳米粒DNR-PLGA-PLL-PEG-Tf、DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG-Tf的物理表征48-49
  • 3.2.1.7 Tf载药纳米粒微观形态考察49-50
  • 3.2.1.8 DNR-PLGA-PLL-PEG-Tf、DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG-Tf的体外药物释放特性50-51
  • 3.2.2 空白载体的毒性评价51-52
  • 3.3 讨论52-57
  • 第四章 单载柔红霉素的多聚物纳米粒体外抗人白血病敏感细胞株K562细胞的作用57-74
  • 4.1 材料与方法57-66
  • 4.1.1 主要试剂57-58
  • 4.1.2 实验器材58
  • 4.1.3 试剂配制58-59
  • 4.1.4 方法59-66
  • 4.1.4.1 体外细胞毒性试验59-60
  • 4.1.4.2 流式细胞仪检测细胞凋亡率60-61
  • 4.1.4.3 流式细胞仪检测细胞内DNR的浓度61
  • 4.1.4.4 荧光显微镜观察各组细胞内药物的分布及凋亡形态学改变61
  • 4.1.4.5 实时荧光定量PCR法检测tfr基因转录水平61-64
  • 4.1.4.6 Western blotting法检测TfR蛋白表达水平64-66
  • 4.1.4.7 统计学处理66
  • 4.2 结果66-70
  • 4.2.1 DNR-PLGA-PLL-PEG-Tf具有体外抗K562细胞作用66-67
  • 4.2.2 DNR-PLGA-PLL-PEG-Tf能增加K562细胞的凋亡率67-68
  • 4.2.3 DNR-PLGA-PLL-PEG-Tf能增加细胞核内DNR浓度68-69
  • 4.2.4 DNR-PLGA-PLL-PEG-Tf能上调tfr mRNA转录及蛋白表达水平69-70
  • 4.3 讨论70-74
  • 第五章 共载柔红霉素和汉防己甲素的多聚物纳米粒体外抗人白血病耐药细胞株K562/ADR的胞的作用74-99
  • 5.1 材料与方法74-78
  • 5.1.1 主要试剂74
  • 5.1.3 试剂配制74
  • 5.1.4 方法74-78
  • 5.1.4.1 汉防己甲素安全剂量的选择74-75
  • 5.1.4.2 共载DNR和Tet的多聚物纳米粒的体外抗肿瘤特性75
  • 5.1.4.3 流式细胞仪检测细胞凋亡率75-76
  • 5.1.4.4 流式细胞仪检测细胞内DNR的浓度76
  • 5.1.4.5 荧光显微镜观察各组细胞内药物的分布及细胞的凋亡形态学改变76
  • 5.1.4.6 qRT-PCR法检测活性心、mdr1、caspase 3、bax、bcl-2、survivin、nf-κb基因转录水平76-77
  • 5.1.4.7 Western blotting法检测TfR、P-gp、Bax、Bcl-2、Caspase 3、NF-κB和Survivin蛋白表达水平77-78
  • 5.1.4.8 统计学处理78
  • 5.2 结果78-89
  • 5.2.1 小剂量Tet对K562/ADR细胞无明显细胞毒作用78-79
  • 5.2.2 DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG-Tf具有抗K562/ADR细胞的特性79-80
  • 5.2.3 DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG-Tf能增加K562/ADR细胞凋亡率80-81
  • 5.2.4 DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG-Tf能增加细胞内的DNR浓度81-83
  • 5.2.5 DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG-Tf能增加细胞胞浆和胞核内的DNR浓度83-84
  • 5.2.6 DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG-Tf能上调tfr mRNA转录及蛋白表达水平84-86
  • 5.2.7 DNR/Tet-PLGA-PLL-PEG-Tf能下调mdr1/P-gp水平86-87
  • 5.2.8 凋亡相关基因转录和蛋白表达水平的变化87-89
  • 5.3 讨论89-99
  • 第六章 总结与展望99-101
  • 6.1 总结99-100
  • 6.2 展望100-101
  • 参考文献101-114
  • 博士阶段主要成果114-115
  • 个人简介115-116
  • 致谢116

【相似文献】

中国期刊全文数据库 前10条

1 王志清;刘卫;徐辉碧;杨祥良;;载三氧化二砷的PEG-PLGA隐性纳米粒的制备及体外研究(英文)[J];Chinese Journal of Chemical Engineering;2007年06期

2 ;Effect of Excipients on Stability and Structure of rhCuZn-SOD Encapsulated in PLGA Microspheres[J];Chemical Research in Chinese Universities;2004年03期

3 郭晓东;;Surface Modification of Biomimetic PLGA-(ASP-PEG) Matrix with RGD-Containing Peptide:a New Non-Viral Vector for Gene Transfer and Tissue Engineering[J];Journal of Wuhan University of Technology(Materials Science Edition);2006年03期

4 陈剑;樊新;周忠诚;阮建明;;PLGA材料仿生改性的最新进展[J];粉末冶金材料科学与工程;2008年06期

5 ;Preparation and mineralization of PLGA/Gt electrospun fiber mats[J];Chinese Science Bulletin;2009年08期

6 李双燕;;PLGA组织工程支架材料的研究与展望[J];国外丝绸;2009年02期

7 郝杰;郑启新;;Biomineralization of the Surface of PLGA-(ASP-PEG) Modified with the K_(16) and RGD-containing Peptide[J];Journal of Wuhan University of Technology(Materials Science Edition);2009年05期

8 ;Preparation of Tolterodine Metabolite Loaded Biodegradable PLGA Microspheres[J];Chemical Research in Chinese Universities;2010年01期

9 ;Comparison of BSA Release Behavior from Electrospun PLGA and PLGA/Chitosan Membranes[J];Chemical Research in Chinese Universities;2011年04期

10 Y.H.Wu;N.Li;Y.Cheng;Y.F.Zheng;Y.Han;;In vitro Study on Biodegradable AZ31 Magnesium Alloy Fibers Reinforced PLGA Composite[J];Journal of Materials Science & Technology;2013年06期

中国重要会议论文全文数据库 前10条

1 郑强;潘志军;薛德挺;李杭;李建兵;;纳米PLGA/HA复合物和骨髓基质干细胞在软骨修复中的应用[A];2009年浙江省骨科学学术年会论文汇编[C];2009年

2 王汉杰;苏文雅;廖振宇;王生;常津;;PLGA/Liposome核壳纳米粒子的制备[A];天津市生物医学工程学会第30次学术年会暨生物医学工程前沿科学研讨会论文集[C];2010年

3 王光林;吴辉;;联合静电纺丝法和转筒接收法制备PLGA—胶原—丝素纳米神经导管[A];第六届西部骨科论坛暨贵州省骨科年会论文汇编[C];2010年

4 赵洁;全大萍;廖凯荣;伍青;;含不同侧氨基密度的ASP-PEG-PLGA的合成与表征[A];中国生物医学工程学会第六次会员代表大会暨学术会议论文摘要汇编[C];2004年

5 黄艳霞;任天斌;张丽红;吕凯歌;蒋欣泉;潘可风;任杰;;PLGA/NHA-RGD复合材料的制备及性能研究[A];2006年上海市医用生物材料研讨会论文汇编[C];2006年

6 ;Synthesis of PLGA Labeled with ~(125)I[A];2006年上海市医用生物材料研讨会论文汇编[C];2006年

7 李艳辉;崔媛;张慧敏;关秀文;;利用等离子体技术在PLGA表面固定胶原的研究[A];2011年全国高分子学术论文报告会论文摘要集[C];2011年

8 何树;毕龙;刘建;扈刚;孟国林;董鑫;郝赋;赵轶男;;新型PLGA/HMS-HA复合微球载体支架对兔骨髓间充质干细胞生物学行为的影响[A];中华医学会第七次全国骨质疏松和骨矿盐疾病学术会议论文汇编[C];2013年

9 ;Preparation of PLGA Ultrasound Microbubble Loaded Hematoporphyrin and optimization of formulation[A];中华医学会第十次全国超声医学学术会议论文汇编[C];2009年

10 李志宏;武继民;汪鹏飞;陈学忠;黄姝杰;关静;张西正;;BMP/PLGA缓释微球的制备与体外释放性能[A];第七届中国功能材料及其应用学术会议论文集(第4分册)[C];2010年

中国重要报纸全文数据库 前3条

1 记者 白毅;合成温敏型PLGA-PEG-PLGA嵌段共聚物[N];中国医药报;2006年

2 尹东锋 钟延强;聚合物 药物 制备工艺 附加剂[N];中国医药报;2006年

3 李博;“人造红细胞”[N];大众卫生报;2009年

中国博士学位论文全文数据库 前10条

1 李玉华;载阿伦磷酸钠PLGA微球的磷酸钙骨水泥复合组织工程骨修复兔股骨髁骨缺损的实验研究[D];山东大学;2015年

2 周璇;RGD靶向微泡与载药微球在肝脏创伤渗血诊断和治疗中的研究[D];中国人民解放军医学院;2015年

3 陶春;可注射镶嵌载生长因子壳聚糖微球的PLGA多孔复合微球支架的研究[D];第二军医大学;2015年

4 封水彬;生物降解型缓释微球的制备、性能及其应用研究[D];华中科技大学;2015年

5 鲍文;靶向纳米载药系统DNR-PLGA-PLL-PEG-Tf治疗恶性血液病的体内、体外研究[D];东南大学;2015年

6 王晨晖;装载蛋白药物的PCADK/PLGA混合微球研究及在重组人生长激素中的应用[D];吉林大学;2016年

7 卢明子;载血红蛋白PEG-PLGA纳米粒子的构建、生物学作用及其靶向性能的研究[D];中国人民解放军军事医学科学院;2016年

8 张皓轩;载辛伐他汀PLGA微球/磷酸钙组织工程骨的生物相容性和成骨活性的研究[D];山东大学;2016年

9 李青;新型高效靶向ROS响应的载药纳米粒子系统在口腔鳞癌治疗中的研究[D];山东大学;2016年

10 齐峰;粒径均一的PLGA颗粒制备及在长效缓释体系和Pickering乳液中的应用[D];中国科学院研究生院(过程工程研究所);2015年

中国硕士学位论文全文数据库 前10条

1 阳刚;复合肌腱修复材料—载细胞用防粘连性隔离/支架型PLGA膜的体外研制[D];中南大学;2010年

2 李文秀;形貌可控的PLGA/PCL复合粒子的制备及体外降解性能的基础研究[D];华南理工大学;2015年

3 黄卓颖;重组人表皮生长因子PLGA纳米粒经皮治疗大鼠糖尿病溃疡的作用研究[D];福建中医药大学;2015年

4 闻继杰;含胺基修饰beta-环糊精的可降解两亲性聚酯的合成及其对蛋白质和抗癌药物的控制释放[D];天津理工大学;2015年

5 王翠伟;基于点击化学制备PCL/PEG两亲性共网络聚合物以及不同支臂PLGA作为疫苗载体的初步研究[D];北京协和医学院;2015年

6 王共喜;PLA/AT纳米复合材料的制备与性能及PLGA纤维的表面改性[D];复旦大学;2014年

7 袁金山;PLGA静电纺丝膜预防大鼠术后粘连的初步研究[D];山东理工大学;2011年

8 司徒俊青;A54修饰葡聚糖-PLGA嫁接物胶束的靶向递药研究[D];浙江大学;2016年

9 过淼;壳聚糖/PLGA纳米粒增强SN-38口服吸收效应及其机制研究[D];南京师范大学;2013年

10 邢爱;医用可降解聚酯高分子的合成与表征[D];河北科技大学;2013年



本文编号:935121

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/shoufeilunwen/yxlbs/935121.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户cb6e9***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com