当前位置:主页 > 医学论文 > 病理论文 >

IKK-a-pEGFP、TRAF1-pDsRed、EGFP-pDsRed融合蛋白重组体的构建和表达

发布时间:2018-07-10 03:52

  本文选题:EGFP + DsRed ; 参考:《华中科技大学》2006年硕士论文


【摘要】: 肿瘤坏死因子-α(tumor necrosis factor-α)主要由活化的T细胞、单核/巨噬细胞、NK细胞产生并分泌,具有多种不同的生物学功能。它以两种生物活性形式存在,即26kD的跨膜型TNF-α(transmembran TNF-α,TM-TNF-α)和17kD的分泌型TNF-α(secreted TNF-α, S-TNF-α)。TM-TNF-α是S-TNF-α的前体,在TNF-α转换酶(TACE)的作用下,其胞外段被切割,脱落成S-TNF-α。 近年来研究发现,TM-TNF-α和其受体结合后,不仅可以启动受体后的信号传导,即正向信号,而且能向自身所在的细胞传递信号,即“反向信号”(reverse signaling),并引起相应的生物学效应。 本室的前期实验通过免疫共沉淀技术证实IKK-α和TRAF1分别可以与TM-TNF-α共沉淀下来,提示这两种信号分子有可能以直接或间接的方式与TM-TNF-α的胞浆段结合,传递反向信号。 本实验主要通过基因工程技术从细胞中获取IKK-α和TRAF1全长编码基因,分别与可以发生荧光共振能量转移(FRET)的荧光蛋白对构建成融合蛋白,同时构建荧光共振能量转移检测用的阳性质粒,为通过荧光共振能量转移技术进一步研究它们在活体细胞内相互之间的作用奠定基础。本研究主要结果如下: 一. IKK-α-pEGFP、TRAF1-pDsRed、EGFP-pDsRed构建、克隆及鉴定 1.重组体的构建和克隆:提取Raji细胞总RNA进行逆转录,以cDNA为模板,用PCR扩增IKK-α和TRAF1目的基因;通过巢式PCR进行鉴定,以确认扩增片段的特异性。同时以pIRES-EGFP质粒为模板,经PCR扩增得到EGFP目的基因片断。以Xho I和EcoR I双酶切pEGFP-N3质粒和IKK-α目的基因,以EcoR I和SacII双酶切pDsRed-N1质粒和TRAF1及EGFP目的基因,并用T4 DNA连接酶连接,获得IKK-α-pEGFP、TRAF1-pDsRed及EGFP-pDsRed的重组体,然后将连接产物转化DH5α感受态细菌,挑选阳性克隆。 2.阳性克隆的鉴定:以菌落PCR初步筛选阳性克隆,再用上述限制性内切酶双酶切鉴定,结果显示三种重组体经酶切分别能得到2.2Kb、1.3Kb和720bp的目的片断,与连接的目的基因大小一致。进一步DNA测序分析,证实三个重组体均各包含IKK-α、TRAF1和EGFP的编码区,没有突变和移码。提示IKK-α-pEGFP、TRAF1-pDsRed及EGFP-pDsRed三个重组体已经构建成功。 二. IKK-α-pEGFP、TRAF1-pDsRed、EGFP-pDsRed三个重组体在真核细胞表达与鉴定 将三种重组体分别转染COS7细胞,可见IKK-α-pEGFP融合蛋白(绿色荧光)弥散分布在胞浆内,TRAF1-pDsRed融合蛋白(红色荧光)则局限在细胞亚区。而表达EGFP-pDsRed融合蛋白既能呈现绿色荧光,又可呈现红色荧光,主要分布在胞浆内。提示IKK-α-pEGFP、TRAF1-pDsRed、EGFP-pDsRed三种融合蛋白均在真核细胞中被成功表达。 本实验成功地构建了IKK-α-pEGFP、TRAF1-pDsRed、EGFP-pDsRed三种重组体,且在真核细胞中得到表达,并证实IKK-α和TRAF1两种分子的胞内定位。为进一步用FRET技术研究两分子间及与TM-TNF-α胞内段之间的相互作用奠定基础。EGFP-pDsRed阳性质粒的构建也为FRET检测提供阳性参照。
[Abstract]:Tumor necrosis factor - alpha (tumor necrosis factor- alpha) is mainly produced and secreted by activated T cells, mononuclear / macrophages and NK cells. It has a variety of different biological functions. It exists in two forms of biological activity, namely, 26kD's transmembrane TNF- alpha (transmembran TNF- a, TM-TNF- a) and 17kD secretory alpha alpha (alpha). .TM-TNF- alpha is a precursor of S-TNF- alpha. Under the action of TNF- alpha converting enzyme (TACE), its extracellular segment is cut off and shedding into S-TNF- alpha.
In recent years, it has been found that the binding of TM-TNF- alpha to its receptor can not only initiate the signal transduction after the receptor, namely the positive signal, but also transmit the signal to the cell in its own, that is the "reverse signaling", and causes the corresponding biological effects.
The previous experiments in the laboratory confirmed that IKK- alpha and TRAF1 could be co precipitated with TM-TNF- alpha by immunoprecipitation technique, suggesting that these two signal molecules may be combined with the cytoplasm of TM-TNF- alpha in a direct or indirect way and transmit the reverse signal.
In this experiment, IKK- alpha and TRAF1 full-length encoding genes were obtained from the cells by genetic engineering technology, and the fusion protein was constructed with fluorescence resonance energy transfer (FRET) fluorescent protein, respectively, and the positive plasmids used for fluorescence resonance energy transfer detection were constructed, which was further studied by fluorescence resonance energy transfer technology. The results are as follows:
Construction, cloning and identification of IKK- alpha -pEGFP, TRAF1-pDsRed and EGFP-pDsRed
1. the construction and cloning of the recombinant: extracting the total RNA of Raji cells for reverse transcription, using cDNA as the template, amplification of IKK- alpha and TRAF1 target genes with PCR, identification by nested PCR to confirm the specificity of the amplified fragment. At the same time, pIRES-EGFP plasmid was used as a template to amplify the fragment of EGFP target gene. The grain and IKK- alpha target genes, using EcoR I and SacII double enzymes to cut pDsRed-N1 plasmids and TRAF1 and EGFP target genes, were linked with T4 DNA ligase, and IKK- alpha -pEGFP, TRAF1-pDsRed and recombinant plasmid were obtained. Then the joint products were transformed into alpha receptive bacteria to select positive clon.
2. identification of positive clones: screening positive clones with colony PCR and using the restriction endonuclease double enzyme to identify the positive clones. The results showed that three kinds of recombinant bodies were able to obtain the target fragments of 2.2Kb, 1.3Kb and 720bp by enzyme cut, and the size of the linked target genes. Further DNA sequencing analysis showed that all three recombinant bodies contained IKK- a, TRAF each. The coding regions of 1 and EGFP showed no mutation and frameshift, suggesting that IKK-, -pEGFP, TRAF1-pDsRed and EGFP-pDsRed three recombinants have been successfully constructed.
Two. Expression and identification of three recombinants of IKK- alpha -pEGFP, TRAF1-pDsRed and EGFP-pDsRed in eukaryotic cells
The three recombinant proteins were transfected into COS7 cells respectively. It was found that the IKK- alpha -pEGFP fusion protein (green fluorescence) was dispersed in the cytoplasm, and the TRAF1-pDsRed fusion protein (red fluorescence) was localized in the cell subregion. The expression of EGFP-pDsRed fusion protein could present both green fluorescence and red fluorescence, mainly in the cytoplasm. It indicated that IKK- alpha -pEGFP, The three fusion proteins of TRAF1-pDsRed and EGFP-pDsRed were successfully expressed in eukaryotic cells.
In this experiment, three recombinant IKK- alpha -pEGFP, TRAF1-pDsRed, EGFP-pDsRed were successfully constructed and expressed in eukaryotic cells, and the intracellular localization of the two molecules of IKK- A and TRAF1 was confirmed. The construction of the basis for the further study of the interaction between the two molecules and the interaction between the two molecules and the intracellular segments of TM-TNF- alpha was constructed by FRET technology. It also provides positive reference for FRET detection.
【学位授予单位】:华中科技大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2006
【分类号】:R392

【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 朱惠明,蔡筱彦,黄勋,顾红祥,王立生;凋亡素基因治疗系统对人肝癌细胞的影响[J];中华内科杂志;2003年09期

2 易甫,张荣庆,贾国良;EGFP标记的VEGF165重组质粒的构建及其在骨髓间充质干细胞中的表达[J];解放军医学杂志;2005年02期

3 李小月,何金生,沈继龙,宋蔚,汪学龙,胡元生;增强型绿色荧光蛋白真核表达载体的构建和表达[J];中国寄生虫病防治杂志;2005年01期

4 傅建新,王玮,卢大儒,岑建农,陈子兴;增强型绿色荧光蛋白逆转录病毒载体的构建和表达[J];中国实验血液学杂志;2000年04期

5 宋俊敏,徐冬,范尔进,徐世荣,李董,赵春华;慢性粒细胞白血病cyclin D2基因的表达研究[J];中华血液学杂志;2004年02期

6 解军,张悦红,于保锋,陈显久,徐钧,胡晓年,胥显民,程牛亮,牛勃;肝细胞特异性基因治疗载体的构建及活性研究[J];中国生物工程杂志;2004年08期

7 戴勇,徐卓佳,李体远;人EPO-Linker-EGFP融合蛋白的设计和生物活性预测[J];广东医学;2004年11期

8 于津浦,张斌,任秀宝;人重组pMAGE-A1/EGFP真核表达质粒的构建与表达[J];免疫学杂志;2005年02期

9 高文谦,李小鹰,吴小兵,李梁,裴雪涛;AAV载体介导的人β_2-AR、EGFP基因导入心肌细胞的研究[J];中国病理生理杂志;2000年10期

10 纪宗玲,陈苏民,陈南春,张俊杰,吴元明,刘慧平;成纤维细胞中hEra-EGFP融合蛋白的表达定位[J];第四军医大学学报;2001年18期

相关会议论文 前10条

1 曾曙光;吴世卿;张积仁;章锦才;;mtHSP70/EGFP双基因减毒沙门菌真核共表达载体的构建与表达[A];第八次全国口腔颌面—头颈肿瘤会议论文汇编[C];2009年

2 李娟;张西臣;许应天;;牛瑟氏泰勒虫pMV361-p33-EGFP的构建[A];中国畜牧兽医学会家畜寄生虫学分会第六次代表大会暨第十一次学术研讨会论文集[C];2011年

3 王先良;王春辉;江艳;王小利;杨怡姝;满江红;王菲菲;张金良;;基于EGFP报告基因的去甲基化表观遗传毒性评价新方法[A];中国毒理学会环境与生态毒理学专业委员会第二届学术研讨会暨中国环境科学学会环境标准与基准专业委员会2011年学术研讨会会议论文集[C];2011年

4 关继羽;张鹏;宋光启;刘丽梅;王中伟;唐博;陈育新;李子义;;抗菌肽V13KL与EGFP共表达载体的构建及在COS-7细胞、小鼠胚胎中表达的初步分析[A];中国畜牧兽医学会动物解剖学及组织胚胎学分会第十六次学术研讨会论文集[C];2010年

5 杨桂香;彭险峰;曾振灵;;检测雌激素类化合物的哺乳动物细胞表达载体的研究[A];中国畜牧兽医学会2004学术年会暨第五届全国畜牧兽医青年科技工作者学术研讨会论文集(下册)[C];2004年

6 罗一博;张力;武美玲;朱江;刘忠华;;PiggyBac转座子介导EGFP在猪体细胞和克隆胚胎中的表达[A];中国畜牧兽医学会动物繁殖学分会第十五届学术研讨会论文集(上册)[C];2010年

7 林影;植田充美;田中渥夫;;利用蛋白ZZ将EGFP-Fc融合蛋白固定在酵母细胞表层[A];中国生物化学与分子生物学会第八届会员代表大会暨全国学术会议论文摘要集[C];2001年

8 林健清;林财珠;林献忠;;构建hIL10和EGFP基因的双顺反子重组腺病毒载体及其在骨髓间质干细胞中的表达[A];中华医学会疼痛学分会第八届年会暨CASP成立二十周年论文集[C];2009年

9 ;Establishment and characterisation of lfabp-EGFP-LC3 transgenic zebrafish:an in vivo model system to study autophagy in liver[A];“细胞活动 生命活力”——中国细胞生物学学会全体会员代表大会暨第十二次学术大会论文摘要集[C];2011年

10 程娟;徐斐燕;顾胜利;陈亚青;;超声微泡造影剂介导EGFP对兔眼视网膜转染效率的实验研究[A];中国超声医学工程学会第三次全国浅表器官及外周血管超声医学学术会议(高峰论坛)论文汇编[C];2011年

相关重要报纸文章 前2条

1 记者 靖九江;基因与干细胞研究助推糖尿病治疗[N];中国医药报;2009年

2 记者 李天舒 通讯员 朱丹萍;可携带报告基因的甲型流感病毒“人造”成功[N];健康报;2011年

相关博士学位论文 前10条

1 刘中华;不同茎部长度shRNA对模型小鼠EGFP基因表达干扰的研究[D];西北农林科技大学;2011年

2 梅恒;组织因子靶向性蛋白纳米粒的制备及其在抗血栓治疗中的应用[D];华中科技大学;2010年

3 殷慧群;猪诱导性多潜能干细胞的建立[D];安徽农业大学;2010年

4 魏荣;两种重组火鸡疱疹病毒rHVT-gB1/EGFP和rHVT-EGFP的构建[D];南京农业大学;2001年

5 李松南;过表达Cx43的骨髓间充质干细胞移植治疗心梗后心衰的实验研究[D];华中科技大学;2010年

6 胡玉荣;PEG化免疫脂质复合物(PILP)介导双基因对实验性人肝癌的靶向性治疗研究[D];郑州大学;2010年

7 王恒毅;乙型肝炎病毒X基因促进肝卵圆细胞增殖及其分子机制的研究[D];华中科技大学;2011年

8 于红阳;鞘氨醇激酶-1的乙酰化修饰及在糖尿病防治中的作用研究[D];天津大学;2012年

9 解军;MPP穿膜结构域的结构模拟、特征分析及MPP介导的转基因载体体系的构建和转导研究[D];山西医科大学;2003年

10 俞晓岚;过表达CXCR4的骨髓间质干细胞移植治疗大鼠脑梗死的疗效观察[D];福建医科大学;2010年

相关硕士学位论文 前10条

1 陈娜;HCV NS3丝氨酸蛋白酶抑制剂高通量筛选模型的建立[D];吉林大学;2010年

2 刘雷;Bcr启动子驱动EGFP表达转基因小鼠的制备和初步鉴定[D];扬州大学;2010年

3 严国权;芯片探针杂交效率的影响因素分析[D];浙江理工大学;2010年

4 王付龙;NF-κB反应性d2EGFP报告系统的建立与应用[D];第三军医大学;2002年

5 赵丽静;VEGF164与EGFP双基因共表达的优化新型HIV-1慢病毒载体的构建及表达[D];吉林大学;2011年

6 左广锋;辣椒平对人超极化激活的环核苷酸门控通道亚型2(hHCN2)和亚型4(hHCN4)的影响[D];南京医科大学;2011年

7 陈中湘;反义RNA对丙型肝炎病毒基因表达的抑制作用研究[D];中南大学;2010年

8 周杨;重组人酸性成纤维细胞生长因子乳腺特异表达载体的构建及其功能的验证[D];吉林大学;2011年

9 郭瑞娟;阴道毛滴虫病毒转染载体的构建及EGFP在阴道毛滴虫内的表达[D];吉林大学;2007年

10 黄波;TSA浓度及处理时间对猪体细胞核移植胚胎体外发育及转基因eGFP表达的影响[D];东北农业大学;2010年



本文编号:2111935

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/binglixuelunwen/2111935.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户02dbd***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com