当前位置:主页 > 医学论文 > 病理论文 >

细胞传代对SD大鼠骨髓间充质干细胞衰老的影响

发布时间:2020-11-03 09:39
   目的探究体外传代培养对SD大鼠骨髓间充质干细胞(BMSCs)衰老的影响。方法全骨髓贴壁法分离培养大鼠BMSCs,待细胞汇合率达80%~90%时,进行消化传代及纯化培养。对不同代数细胞,进行倒置显微镜下观察细胞形态学及生长特性,绘制1~7 d生长曲线,流式细胞仪检测细胞表面抗原标志物(CD29、CD45和CD90)和细胞周期,β-半乳糖苷酶染色并记录阳性细胞数,Western印迹法检测衰老相关蛋白P53和P21表达情况。结果 SD大鼠BMSCs的CD29、CD90高表达(95%),CD45低表达(5%),细胞周期中G0/G1期占87.37%;相较于P1~5代细胞,P7~9代细胞增殖能力明显下降,β-半乳糖苷酶染色阳性细胞明显增多;随着传代次数的增加,BMSCs的P53、P21表达增高。结论体外培养传代次数的增加可导致SD大鼠BMSCs衰老。
【部分图文】:

生长曲线,代数,细胞


.2BMSCs细胞周期流式细胞仪检测P3BM-SCs细胞周期,细胞100%为二倍体,其中G0/G1期87.37%,G2/M期4.06%,S期8.57%,提示绝大部分细胞处于静止休眠期,符合干细胞周期特征。2.3不同代数细胞生长情况分别对P1、P3、P5、P7和P9代细胞进行1~7d连续培养测定发现,传代后1~2d处于潜伏期,细胞增长不明显,3~5d进入指数増长期,6d后细胞增殖速度便有所减缓,进入平台期,增殖基本停滞,生长曲线见图1。从结果可发现P3~P5代的细胞增殖状况更良好。图1CCK-8检测不同代数BMSCs1~7d的增殖能力2.4不同代数细胞β-半乳糖苷酶染色阳性率对不同代数的细胞行β-半乳糖苷酶染色,红色箭头标注的着深蓝色的细胞即为衰老细胞(图2)。随之进行β-半乳糖苷酶染色阳性细胞计数,其中P7(52.67%±7.93%)和P9(83.67%±3.27%)相较于P1(3.67%±1.25%)、P3(8.33%±3.11%)和P5(20.00%±5.35%),SA-β-gal阳性细胞比例明显增高(图2)。2.5不同代数细胞P53和P21表达变化随着传代次数的增加,衰老相关蛋白P53和P21的蛋白水平表达量也逐渐增高,Western印迹结果示:P53和P21在P9代的蛋白相对表达量分别为3.43±0.66和3.31±0.28,明显高于P1代,见图3,表1。图2倒置相差显微镜下观察β-半乳糖苷酶染色阳性细胞(×100)图3细胞传代对衰老相关蛋白P53和P21表达的影响表1不同代数细胞P53和P21表达水平(x±s,n=3)组别P53蛋白P21蛋白P11.00±0.001.00±0.00P31.60±0.111.15±0.07P52.41±0.361.

生长曲线,相差显微镜,代数,细胞


细上赴?芷谔卣?。2.3不同代数细胞生长情况分别对P1、P3、P5、P7和P9代细胞进行1~7d连续培养测定发现,传代后1~2d处于潜伏期,细胞增长不明显,3~5d进入指数増长期,6d后细胞增殖速度便有所减缓,进入平台期,增殖基本停滞,生长曲线见图1。从结果可发现P3~P5代的细胞增殖状况更良好。图1CCK-8检测不同代数BMSCs1~7d的增殖能力2.4不同代数细胞β-半乳糖苷酶染色阳性率对不同代数的细胞行β-半乳糖苷酶染色,红色箭头标注的着深蓝色的细胞即为衰老细胞(图2)。随之进行β-半乳糖苷酶染色阳性细胞计数,其中P7(52.67%±7.93%)和P9(83.67%±3.27%)相较于P1(3.67%±1.25%)、P3(8.33%±3.11%)和P5(20.00%±5.35%),SA-β-gal阳性细胞比例明显增高(图2)。2.5不同代数细胞P53和P21表达变化随着传代次数的增加,衰老相关蛋白P53和P21的蛋白水平表达量也逐渐增高,Western印迹结果示:P53和P21在P9代的蛋白相对表达量分别为3.43±0.66和3.31±0.28,明显高于P1代,见图3,表1。图2倒置相差显微镜下观察β-半乳糖苷酶染色阳性细胞(×100)图3细胞传代对衰老相关蛋白P53和P21表达的影响表1不同代数细胞P53和P21表达水平(x±s,n=3)组别P53蛋白P21蛋白P11.00±0.001.00±0.00P31.60±0.111.15±0.07P52.41±0.361.81±0.18P72.86±0.902.79±0.04P93.43±0.661)3.31±0.281)与P1代比较:1)P<0.053讨论BMSCs是骨髓基质中的非造血系成体干细胞,具有多向分化潜
【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 黄玉圣;吕辰菲;庄景燊;徐平;涂晨;吴迪峥;钟招明;;细胞传代对SD大鼠骨髓间充质干细胞衰老的影响[J];中国老年学杂志;2019年09期

2 洪杨;袁明铭;周静;张磊;董涵;;应用微卫星标记对两个SD大鼠封闭群的遗传分析[J];实验动物与比较医学;2018年01期

3 蒋璟玮;刘宝茹;梁丹丹;汪威;罗东;陈俊林;陈锦云;陈文直;王嫣;;不同声强低强度脉冲超声对SD大鼠骨髓间充质干细胞迁移的影响[J];中国介入影像与治疗学;2018年06期

4 苏小华;张劲松;李志东;那顺巴雅尔;许训;陈一淑;刘吉贞;;实验动物学SD大鼠综合性实验设计与探讨[J];科技创新与应用;2019年04期

5 高蔚然;袁亚江;房师强;梅晰凡;;SD大鼠成骨细胞培养方法的改良[J];解剖学杂志;2015年02期

6 刘检;王宇红;凌佳;刘林;孟盼;杨蕙;;优化的SD大鼠小胶质细胞原代培养、纯化及采用高内涵细胞成像分析技术进行的细胞鉴定[J];沈阳药科大学学报;2018年11期

7 孙敬,陈宏,杨颖,夏红飞,彭景楩;植入前期与分娩前期子宫差别表达基因筛选及表达[J];生物化学与生物物理进展;2005年02期

8 卓丽玲;刘宗平;;钙磷对体外培养成骨细胞增殖、分化和矿化影响的研究[J];营养学报;2009年06期

9 黄利华;郭姣;黄珮;纪超;贝伟剑;邓晓君;;新生大鼠肝干细胞的分离、培养与鉴定[J];广东药学院学报;2010年04期

10 孟国林,胡蕴玉,刘丹平,孙磊;大鼠骨髓基质细胞的体外培养[J];中国矫形外科杂志;2001年01期


相关硕士学位论文 前4条

1 雷彬;SD大鼠中线粒体解偶联蛋白与衰老的相关性研究[D];兰州大学;2018年

2 陈亚军;运动及抗氧化剂对大鼠骨骼肌、心肌抗氧化功能的影响[D];华南师范大学;2002年

3 李鹏飞;有氧运动及转移因子干预对糖尿病大鼠血糖代谢的影响[D];河南大学;2015年

4 李兴安;寻找衰老SD大鼠脑RAPD分子标记及抗脑衰老研究[D];苏州大学;2003年



本文编号:2868418

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/binglixuelunwen/2868418.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户9a3f5***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com