当前位置:主页 > 医学论文 > 传染病论文 >

MicroRNA介导甲型H1N1流感病毒减毒株的致病力及免疫效力研究

发布时间:2018-02-15 12:14

  本文关键词: 甲型(H1N1)流感病毒 microRNA 减毒活疫苗 安全性 免疫原性 出处:《南方医科大学》2016年博士论文 论文类型:学位论文


【摘要】:背景和目的:流行性感冒,简称流感,是由流感病毒感染引起的一种急性呼吸道传染病,严重危害人类健康。全球性的流感大流行危害性尤为严重,甲型流感病毒曾引起了多次大范围的流行,造成了全球巨大的人力资源和物力资源的损失,极易造成社会动荡。流感疫苗是防治流感大流行的有效手段。目前常用的流感疫苗主要分为两类:灭活疫苗与减毒活疫苗。相比之下减毒活疫苗更有优势,①它通过同自然感染相似的鼻腔免疫,同时激发局部粘膜免疫以及机体的体液、细胞免疫反应,作用时间长。②减毒活疫苗可以通过滴鼻途径给药,避免了注射途径带来的问题。③可提供有效的交叉免疫保护。传统的冷适应流感减毒活疫苗制备过程复杂,耗时长,难以满足流感大流行时疫苗的需求。研发安全、高效、易于生产的减毒活疫苗是新型流感疫苗的发展方向。microRNA (miRNA)介导的流感弱毒株快速构建方法具有良好的前景。本课题利用microRNA介导的基因沉默机制设计一种全新的病毒减毒策略。microRNA (miRNA)是一类进化上保守的非编码小分子RNA,与其靶序列的结合,可抑制其翻译。并且miRNA的分布具有组织特异性。根据上述两个特点,将miRNA的结合靶位装载进病毒基因组,在病毒感染宿主细胞的过程中,内源性miRNA与其靶序列结合,抑制病毒RNA在特定组织的翻译及病毒的增殖,从而导致减毒。本课题组前期选择肺组织内源性高表达的let-7b作为靶向miRNA,将其结合靶位装入南京2009甲型H1N1流感病毒株(A/Nanjing/108/2009 H1N1)的RNA聚合酶复合物中的PB1片段编码区,并采用反向遗传学方法拯救出重组流感病毒miRT-H1N1。在体外实验中研究发现miRT-H1N1在miR-let-7b高表达的人支气管上皮细胞中(human bronchial epithelial cell line HBE)复制受限,毒力下降。miR-let-7b通过与其靶序列的结合,抑制miRT-H1N1的PB1合成从而抑制miRT-H1N1的复制。本课题组前期研究在细胞水平上证实了miRT-H1N1的减毒作用,但miRT-H1N1是否可成为有效的流感病毒减毒株,还需要通过动物模型体内实验进行验证。我们选用Balb/c小鼠进行动物实验。其优点在于:小鼠的生理生化和发育与人类相似;遗传背景均一,试验结果精确可靠;与鼠相关的细胞因子等试剂已商品化;有研究证明Balb/c小鼠对高致病性的流感病毒易感性高,2009新型H1N1病毒可在Balb/c小鼠内复制,不需要培养预适应株,可作为流感候选疫苗评价的动物模型。本研究的目的就是通过鼻腔免疫BALB/c小鼠的方法验证miRT-H1N1是否在小鼠体内实现减毒,初步评估其安全性。然后从体液免疫、细胞免疫、粘膜免疫三个方面研究miRT-H1N1的免疫原性,并评价miRT-H1N1对小鼠的免疫保护性。为microRNA介导的流感病毒减毒活疫苗的研发奠定基础。方法:1.miRT-H1N1的致病力研究应用血凝试验测定三种病毒miRT-H1N1、scbl-H1N1和wt-H1N1的血凝素(HA)效价,并用组织细胞培养法检测这三种病毒在鸡胚中的半数组织细胞培养物感染量(TCID50)。选用6周龄BALB/c雌性小鼠为动物模型,按病毒种类(miRT-H1N1、 scbl-H1N1和wt-H1N1)及不同梯度剂量分组,每组10只,PBS对照组每组5只。将各个稀释度(107TCID50~103TCID50)病毒液滴鼻感染小鼠,连续观察14天,记录体重变化和死亡情况,Reed-Muench法计算小鼠MLD50。将12只6周龄BALB/c雌性小鼠随机分为3组(miRT-H1N1组、scbl-H1N1、wt-H1N1),每组4只,经鼻滴入105TCID50病毒液,分别于感染后第3、5天取肺组织,检测病毒载量。感染第3天,取小鼠肺组织,抽提其病毒RNA,用RT-PCR法扩增miRT-H1N1和WT-H1N1的PB1基因片段,送检测序。2. miRT-H1N1的免疫原性研究将6周龄BALB/c雌性小鼠随机分为miRT-H1N1组和PBS对照组,每组6只,第1次免疫后28天加强免疫1次。采集第一次免疫后28天,第二次免疫后14天小鼠血清,应用血凝抑制试验(HI)、病毒中和试验(MN)和免疫酶联吸附试验(ELISA),分别测定血凝抑制抗体、血清病毒中和抗体和血清抗体IgG。采集第2次免疫后14天鼻腔、肺脏冲洗液,经ELISA测定分泌性抗体(sIgA)。采集第2次免疫后14天小鼠脾细胞悬液,经ELISA测定IFN-y和IL-4水平。3. miRT-H1N1的免疫保护性研究将6周龄BALB/c雌性小鼠随机分为miRT-H1N1组和PBS对照组,每组12只,免疫方法同前。在第二次免疫后14天通过滴鼻方式给予100LD50的H1N1流感病毒进行攻毒实验。其中6只观察小鼠14天内体重变化及存活率,另外6只小鼠于攻毒第3,5天处死,采集小鼠肺组织病理切片HE染色观察病理变化,参照Cimolai等的病理评分系统行肺组织病理评分IPS (Histopathologic Score)。并用组织细胞培养法检测肺组织病毒载量。RT-PCR法检测攻毒第3、5天小鼠肺组织炎症细胞因子IL-6、TNF-α、IFN-γ水平。结果:1.miRT-H1N1的致病力研究(1)体外实验中,三种病毒miRT-H1N1、scbl-H1N1及WT-H1N1的血凝素(HA)效价分别为1:29、1:28、1:28。鸡胚中培养的miRT-H1N1病毒滴度与WT-H1N1, scbl-H1N1的相似,三组间差异无统计学意义。(2)小鼠体重变化及半数致死量:成功构建了2009甲型H1N1流感病毒株(A/Nanjing/108/2009 H1N1)感染BALB/c小鼠模型。实验观察到WT-H1N1组小鼠自感染病毒第3天开始出现反应迟钝,食欲减退,体重下降等症状,第5至8天小鼠体重陆续下降超过原始体重的25%,实施安乐死,其中107TCID50剂量组全部死亡。与之相反,感染miRT-H1N1的小鼠活动基本正常,即使感染最高剂量(107TCID50)的miRT-H1N1,小鼠体重下降也不明显(10%),没有出现死亡,即LD50107TCID50。 WT-H1N1与scbl-H1N1组的半数致死量相似,分别为105.3TCID50,105.38 TCID50。(3)小鼠肺组织病毒载量:在感染第3、5天小鼠的肺组织内均可分离出病毒,感染第3天wt-H1N1组的病毒滴度与scb1-H1N1组相似,分别为10537TCID50/g,105.49 TCID50/g,而miRT-HlN1组的病毒滴度为103.50 TCID50/g,明显低于野毒株(P0.05)。感染第5天,三组病毒滴度有所下降,分别为103.71、103.49、101.5 TCID50/g,与wt-H1N1组、scbl-H1N1组相比,miRT-H1N1组的病毒滴度明显降低,下降超过100倍(P0.05)。用RT-PCR法扩增小鼠肺组织中miRT-H1N1和WT-H1N1的PB1基因片段,电泳结果显示扩增到了特异性的目的条带,测序确认重组突变病毒miRT-H1N1包含突变目标序列,未发现有病毒逃逸突变体。2. miRT-H1N1的免疫原性研究(1) miRT-H1N1免疫后小鼠体液免疫应答效果:miRT-H1N1滴鼻免疫BALB/c小鼠28天后即可刺激小鼠机体产生较高水平的血1gG、HI和病毒中和抗体,抗体几何平均滴度分别为905、403、227,二免14天小鼠体内血清抗体滴度达到最高,分别为2873、2032、313,与PBS对照组比较,差异有统计学意义(P0.05)。第2次免疫后小鼠血清1gG、HI水平较第1次免疫后明显升高,差异有统计学意义(P0.05)。(2) miRT-H1N1免疫后小鼠粘膜免疫应答效果:1niRT-H1N1免疫的小鼠鼻冲洗液和肺冲洗液均可检测到sIgA,抗体几何平均滴度分别为16、64,而PBS对照组的sIgA10,两组差异有统计学意义(P0.05)。(3) miRT-H1N1免疫后小鼠细胞免疫应答效果:予以miRT-H1N1 2次免疫小鼠后,特异性HA抗原与免疫小鼠脾淋巴细胞共培养上清测定IFN-γ、IL-4结果显示,PBS对照组小鼠IFN-γ、IL-4两种细胞因子的浓度很低,分别为17.4pg/ml、24.1pg/ml,而miRT-H1N1组用HA刺激后,IFN-γ、IL-4分别达到了54.5pg/ml、70.9pg/ml,差异有统计学意义(P0.05),提示miRT-H1N1在小鼠体内能够同时诱导Thl和Th2细胞免疫应答。3. miRT-H1N1的攻毒保护性研究(1)攻毒实验中小鼠体重变化及生存率:同源流感病毒wt-H1N1攻毒后第2天开始,用PBS免疫的小鼠即开始出现食欲减退,活动减少等症状,体重下降明显,最低下降到原体重的72.5%,下降程度超过原始体重的25%,对小鼠实施安乐死,至攻毒第8天,小鼠全部死亡,存活率为0。与之相反,用miRT-H1N1免疫的小鼠活动基本正常,体重轻度下降,攻毒第8天后体重恢复至初始体重,存活率达到了100%。(2)攻毒后小鼠肺组织病毒载量、病理及炎症因子变化:攻毒第3天,miRT-H1N1组小鼠肺组织病毒滴度为101.53 TCID50/g,明显低于PBS对照组的105.13 TCID50/g (P0.05)。攻毒第5天,PBS对照组小鼠肺组织病毒滴度下降至103.8TCID50/g,而miRT-H1N1组小鼠肺组织中未分离出病毒。攻毒第5天,PBS组小鼠肺组织出现了严重的病理改变,包括肺泡结构塌陷,坏死性支气管炎,组织广泛出血等,相比之下,miRT-H1N1组小鼠肺组织只有轻微的组织病理变化。与之一致的是PBS对照组小鼠肺组织病理学评分高达20.3,而miRT-H1N1组小鼠肺组织病理学评分仅为7.3,差异有统计学意义(P0.05)。攻毒第3天miRT-H1N1组小鼠肺组织炎症因子IL-6, TNF-α, IFN-β的mRNA相对表达量分别为(2.6±0.8,2.4±0.4,10.6±4.7),低于PBS对照组(10.7±1.6,4.4±1.1,39.7±15.5)(P0.05)。攻毒第5天小鼠体内相关炎症反应有所减弱,miRT-H1N1组小鼠肺组织IL-6, TNF-α, IFN-β的mRNA相对表达量分别为(1.5±0.3,1.3±0.1,2.3±0.6),低于PBS对照组(4.0±1.2,3.0±0.9,2.3±0.6)(P0.05)。结论:1.miRT-H1N1在BALB/c小鼠肺组织中的毒性较WT-H1N1、scb1-H1N1显著减弱,其致病力较野毒株明显降低。表明了microRNA介导甲型H1N1流感减毒株在小鼠体内的安全性。但是miRT-H1N1在鸡胚中的生长特性却与野毒株相同,表明miRT-H1N1可以在体外采用鸡胚培养的方式大量制备。2. miRT-H1N1具有良好的免疫原性,可诱导小鼠产生较强的体液免疫、粘膜免疫及细胞免疫反应,从而产生有效的免疫保护效果,完全保护小鼠抵抗流感病毒的攻击。本研究为microRNA介导流感减毒疫苗的深入研究奠定了基础。
[Abstract]:......
【学位授予单位】:南方医科大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2016
【分类号】:R511.7

【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 ;什么方式可以杀灭甲型H1N1流感病毒?[J];中华疾病控制杂志;2009年03期

2 ;为什么“猪流感病毒”改称甲型H1N1流感病毒?[J];中华疾病控制杂志;2009年03期

3 高峰;;甲型H1N1流感病毒大流行的预防应重视儿童及中青年患者[J];医学与哲学(临床决策论坛版);2009年07期

4 李皓;;流感病毒与防控措施[J];科技潮;2009年12期

5 魏成军;江新泉;高佩安;;甲型H1N1流感病毒特征及快速检验方法[J];医学研究杂志;2011年04期

6 陈慧英;;流感病毒将可“定位追踪”[J];泸州科技;2013年03期

7 苗凤源;;经鼻接种A型流感病毒对鼷鼠嗅粘膜的影响[J];国外医学.耳鼻咽喉科学分册;1987年02期

8 刘美琴,白小平,樊陕生,肖和宇;B型流感病毒流感22例报告(摘要)[J];临床儿科杂志;1988年06期

9 郝莉萍;于树芬;俞秀廉;齐云华;;荆、防、柴、菊抑制流感病毒的实验研究[J];人民军医;1992年11期

10 郑宾;钟江;;禽流感蔓延给人类敲响警钟[J];科学生活;2005年11期

相关会议论文 前10条

1 伍锐;段正赢;刘泽文;杨克礼;梁望旺;邓均华;周丹娜;田永祥;;A型流感病毒为载体的开发及其应用[A];中国畜牧兽医学会畜牧兽医生物技术学分会暨中国免疫学会兽医免疫分会第八次学术研讨会论文集[C];2010年

2 杜雄伟;李叶;杨卓;;A型流感病毒对小鼠致病机制的研究进展[A];中国畜牧兽医学会家畜传染病学分会第七届全国会员代表大会暨第十三次学术研讨会论文集(上册)[C];2009年

3 曲敬来;;流感病毒A上呼吸道感染快速诊治的研究[A];中医药防治感染病之研究(九)——第九次全国中医药防治感染病学术交流大会论文集[C];2009年

4 高福;;流感病毒侵入与多肽抑制药物[A];第二届传染病诊治高峰论坛暨2009年浙江省感染病、肝病学术年会论文汇编[C];2009年

5 杨琴;张兴晓;杨灵芝;郭庆栋;;流感病毒在三种细胞中的生长对比[A];山东畜牧兽医学会禽病学专业委员会第一次学术研讨会论文集[C];2009年

6 袁达康;黄勇;杨华可;黎景全;李艳芬;;东莞市2004-2008年流感病毒监测结果及分析[A];新发传染病防治学习研讨会论文集[C];2008年

7 高玉伟;夏咸柱;扈荣良;王立刚;刘丹;邹啸环;黄耕;贺文琦;;虎流感病毒的分离、鉴定、基因分析与抗体调查(摘要)[A];中国畜牧兽医学会家畜传染病学分会成立20周年庆典暨第十次学术研讨会论文集(下)[C];2003年

8 李叶;廖明;辛朝安;;A型流感病毒对小鼠致病机制的研究进展[A];人畜共患传染病防治研究新成果汇编[C];2004年

9 曲敬来;常晓;;流感病毒A上呼吸道感染快速诊治的研究[A];2005年全国危重病急救医学学术会议学术论文集[C];2005年

10 祝艳华;王雯慧;陈怀涛;;中药抗流感病毒作用的研究进展[A];中国畜牧兽医学会兽医病理学分会第十五次、中国病理生理学会动物病生专业委员会第十四次学术讨论会论文集[C];2007年

相关重要报纸文章 前10条

1 记者 江卉邋通讯员 胡运海 实习生 汪红燕;今冬江城流感病毒有加剧趋势[N];湖北日报;2008年

2 ;新流感病毒可能已在猪身上悄悄传播多年[N];新华每日电讯;2009年

3 记者 葛进 陈超;日拍到新型流感病毒真实形态[N];科技日报;2009年

4 特约记者 吴志军 记者 蔡鹏程;研制成功迅速杀灭流感病毒新产品[N];解放军报;2009年

5 河北省邢台市第一医院副主任医师 黄根柱;流感病毒有四怕[N];健康报;2009年

6 本报记者 马佳;陈继明:为流感病毒绘制族谱[N];北京科技报;2009年

7 江南雪舞;禽流感病毒与流感病毒有何关系?[N];大众卫生报;2005年

8 主任医师 冀衡;流感病毒[N];农村医药报(汉);2003年

9 杨孝文 编译;揭开20世纪初西班牙大流感致命秘密[N];北京科技报;2007年

10 本报驻美国记者 毛黎;“狼”依然在家门口徘徊[N];科技日报;2008年

相关博士学位论文 前10条

1 张文婧;抗A型流感病毒和肠道病毒71型天然化合物的筛选及其抗病毒分子机制研究[D];武汉大学;2012年

2 吴玲;A型流感病毒四种亚型同步检测分型方法建立及两株H5N1亚型禽流感病毒地方株的特性研究[D];武汉大学;2013年

3 范文辉;犬Ⅲ型干扰素的功能特点及B型流感病毒NEP蛋白出核功能研究[D];广西大学;2015年

4 申新田;寡聚噻吩及皂苷类衍生物抑制流感病毒进入靶细胞的作用及机制[D];南方医科大学;2015年

5 赵化阳;小鼠动物模型在哮喘气道高反应治疗和抗流感药物筛选中的应用研究[D];中国农业大学;2015年

6 万志敏;抗体压下H9N2流感病毒囊膜糖蛋白关键抗原表位氨基酸的变异分析[D];扬州大学;2015年

7 林焱;H3N2亚型犬流感病毒江苏分离株基因组特征与致病特性研究[D];南京农业大学;2014年

8 高伟;新型甲型H1N1流感病毒致ALI发病机制研究—炎症、细胞凋亡以及免疫调控[D];南京大学;2012年

9 阳元娥;抗甲型流感病毒卵黄抗体的制备、活性评价及其应用研究[D];广东工业大学;2016年

10 江静雯;B型流感病毒诱发天然免疫应答及M1核质穿梭对于病毒复制的调控研究[D];中国科学技术大学;2016年

相关硕士学位论文 前10条

1 胡云光;人季节性流感病毒H3N2小鼠适应株的建立及分子机制的初步探究[D];北京协和医学院;2015年

2 刘兵;SPF鸡与BALB/c小鼠体内流感病毒唾液酸受体组织分布的差异性分析[D];中国农业科学院;2015年

3 刘晓艳;复方龙芩草微乳液抗H1N1流感病毒的作用、物质基础及机制研究[D];北京中医药大学;2016年

4 李巍巍;粗粒度下流感病毒基因网络信息的建模与应用[D];江南大学;2016年

5 赵苗苗;广东省H3N2亚型犬流感血清流行病学调查和病毒的分离、鉴定及遗传进化分析[D];甘肃农业大学;2016年

6 资海荣;江苏省2010-2014年流感监测及甲型H1N1分子流行病学研究[D];东南大学;2015年

7 孟丽君;宿主蛋白CDC25B调控A型流感病毒复制以及流感病毒NA蛋白ELISA方法建立的研究[D];安徽大学;2016年

8 姜颖越;重组hIFITM3腺病毒的构建及抗流感病毒作用研究[D];延边大学;2016年

9 金梦哲;全球背景下人源甲型流感病毒传播行为分析[D];石家庄铁道大学;2016年

10 王艳翠;CXCL4在小鼠呼吸道感染甲型流感病毒H1N1中的生物学作用及其免疫调节机制研究[D];北京协和医学院;2016年



本文编号:1513242

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/chuanranbingxuelunwen/1513242.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户4d161***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com