高分辨率熔解曲线技术用于结核分枝杆菌临床分离株异烟肼耐药性的快速检测
本文选题:结核分枝杆菌 切入点:高分辨率熔解曲线(HRM) 出处:《中国人兽共患病学报》2017年05期
【摘要】:目的评价高分辨率熔解曲线分析技术(high-resolution melting curve,HRM)检测结核分枝杆菌异烟肼耐药性的应用价值。方法 1)通过传统比例法药敏实验对本实验室保存的49株结核分枝杆菌进行异烟肼耐药性分析。2)进一步对该结核分枝杆菌进行异烟肼耐药相关基因KatG基因和inhA基因进行异烟肼耐药决定区测序分析,筛查突变位点。3)根据筛查到的突变位点设计高分辨率熔解曲线分析所用的特异性引物,对异烟肼耐药基因耐药决定区进行高分辨率熔解曲线分析检测DNA突变,评估用高分辨率熔解曲线分析技术对结核分枝杆菌异烟肼耐药性检测的效率。结果 1)比例法药敏结果显示,49株实验菌株中20株为异烟肼耐药株,29株为异烟肼敏感株。2)测序分析结果显示:(1)KatG基因出现了4种突变形式,分别是234单位点突变;234、315双位点突变;234、463双位点突变;234、315、463三位点联合突变。(2)inhA基因检测到3种突变,即-8位、-15位、-152位。3)(1)对耐药株的基因突变进行分析发现:20株异烟肼耐药株中11株存在KatG基因第315位密码子的突变、占异烟肼耐药株的55%;6株存在inhA基因-15(4株)位碱基、-8(1株)位碱基、-152(1株)位碱基的突变,共占异烟肼耐药株的30%;2株同时存在基因KatG315密码子和inhA-15位碱基的突变,占异烟肼耐药株的10%;1株均未检测到KatG基因和inhA基因的突变,占异烟肼耐药株的5%。通过基因突变检测结核分枝杆菌异烟肼耐药性的敏感性为95%、特异性为100%。(2)用高分辨率溶解曲线检测实验菌株耐药基因突变的结果显示,18株存在基因突变,24株不存在基因突变,检测的灵敏度为94.7%、特异性为80%。(3)以高分辨率熔解曲线检测到突变为耐药的判断标准,检出19株为耐药株,24株为敏感株。以比例法药敏结果为参照,检测的灵敏度为95%、特异性为82.76%。结论高分辨率溶解曲线用于结核分枝杆菌对异烟肼耐药性的检测具有较好的灵敏度,耗时短,在异烟肼耐药结核病的快速诊断方面具有一定的应用价值。
[Abstract]:Objective to evaluate the value of high-resolution melting curved-HRM in the detection of isoniazid resistance of Mycobacterium tuberculosis. Methods 1) 49 strains of Mycobacterium tuberculosis preserved in our laboratory were tested by traditional proportional susceptibility assay. Further analysis of isoniazid resistance-related gene KatG gene and inhA gene was carried out by isoniazid resistance analysis. 2) the sequence analysis of isoniazid resistance determining region was carried out for Mycobacterium tuberculosis. Screening mutation locus. 3) according to the specific primers designed for high resolution fusion curve analysis, the DNA mutation was detected by high resolution melting curve analysis of isoniazid resistance gene. To evaluate the efficiency of high resolution fusion curve analysis in the detection of isoniazid resistance of Mycobacterium tuberculosis. Results 1) the results of proportional drug sensitivity analysis showed that 20 of 49 experimental strains were isoniazid resistant and 29 were isoniazid. The sequence analysis of the susceptible strain. 2) showed that there were four mutations in the KatG gene. The 234315 double locus mutation and 234315463 triple locus combined mutation of 234315463 were identified as 234315463 and 234315463 / 234315463 / 234315463 / 234315463 / 234315463 / 234315463 respectively. The gene mutation of resistant strains was analyzed. It was found that 11 of 20 isoniazid resistant strains had codon 315 mutation of KatG gene. Among the isoniazid resistant strains, there were mutations of inhA codon and inhA-15 codon in 55 / 6 strains of isoniazid resistant strains (1 strain) and 1 strain (1 strain) at the base of 1 strain). In total, 30g / 2 strains of isoniazid resistance strains had mutations in the codon of KatG315 and the mutation of the inhA-15 site base at the same time, and there was no mutation in the nucleotide sequence of KatG315 codon and inhA-15 locus in the 6 strains of isoniazid resistance. No mutation of KatG gene or inhA gene was detected in 10 strains of isoniazid resistant strain. The sensitivity and specificity of detection of isoniazid resistance of Mycobacterium tuberculosis by gene mutation were 95 and 100% respectively. There was no gene mutation in 24 strains. The sensitivity of detection was 94.7 and the specificity was 80%.) according to the criteria of high resolution melting curve to detect mutation as drug resistance, 19 strains were identified as resistant strains and 24 strains as sensitive strains, and the results were compared with the results of proportional method. The sensitivity of detection is 95 and the specificity is 82.76.Conclusion the high resolution dissolution curve has good sensitivity and short time for the detection of isoniazid resistance of Mycobacterium tuberculosis. It has certain application value in fast diagnosis of isoniazid-resistant tuberculosis.
【作者单位】: 石河子大学动物科技学院;石河子大学生命科学学院;石河子大学医学院;
【基金】:“十二五”国家科技重大专项(No.2013ZX10003003-002) 国家自然科学基金项目(No.31060333)~~
【分类号】:R440;R52
【相似文献】
相关期刊论文 前10条
1 李勇军 ,李少侠 ,张玉振 ,丁娟 ,王娜;骨伤感染中耐甲氧西林凝固酶阴性葡萄球菌耐药性检测[J];中医正骨;2002年05期
2 朱光明;从宏亮;;临床分离的洋葱伯克霍尔德菌的耐药性分析[J];现代中西医结合杂志;2010年13期
3 葛超荣,林瑞炮;结核分枝杆菌耐药机制及耐药性检测的研究进展[J];中华检验医学杂志;2001年02期
4 金法祥 ,李水法;绍兴市甲型副伤寒沙门菌耐药性检测[J];医学文选;2001年05期
5 温晓峥,李智潮;176株福氏2a型志贺氏菌耐药性检测[J];四川省卫生管理干部学院学报;2002年01期
6 应英;海岛渔民甲型副伤寒沙门菌耐药性监测[J];江西医学检验;2005年02期
7 朱燕飞;;女性生殖道支原体感染及耐药性分析[J];浙江预防医学;2008年10期
8 梁岚;张亚茹;;耐甲氧西林葡萄球菌感染的临床分布及耐药性检测[J];内蒙古医学杂志;2009年07期
9 董琼;黄琴美;;50株脑膜炎败血黄杆菌的分布及耐药性分析[J];检验医学与临床;2009年20期
10 徐洁玲;周世娟;贺勇锋;古丽娣;郭丽萍;;幽门螺杆菌对大环内酯类抗生素的耐药性检测[J];中国当代医药;2011年09期
相关会议论文 前10条
1 尚旭明;王海燕;;耐甲氧西林葡萄球菌的耐药性分析[A];中华医学会第七次全国检验医学学术会议资料汇编[C];2008年
2 张健源;李传友;程君;;应用改良的耐药性检测法观察结核分枝杆菌耐药的动态变化[A];中华医学会结核病学分会2010年学术年会论文汇编[C];2010年
3 叶卫红;刘翠银;;268例革兰阴性杆菌肺炎的病原菌分布及耐药性监测[A];湖北省暨武汉市微生物学会分析微生物专业委员会第十届第五次学术会议论文汇编[C];2008年
4 王春光;张铁;韩伟;翟向和;李清艳;吕建存;;禽致病性大肠埃希菌的分离鉴定与耐药性监测[A];京津冀畜牧兽医科技创新交流会暨新思想、新观点、新方法论坛论文集[C];2008年
5 管婧;卓超;苏丹虹;李红玉;;耐甲氧西林金黄色葡萄球菌耐药性及基因分型分析[A];第8届全国抗菌药物临床药理学术会议暨北京大学临床药理研究所成立三十周年论文集[C];2010年
6 杨华;胡忠义;;变性高效液相色谱在结核分枝杆菌耐药性检测中的应用研究[A];2006中国防痨协会全国学会会议论文集[C];2006年
7 肖二辉;石娜;陈永平;;2003-2008年我院细菌耐药性变化的分析[A];2009香港-北京-杭州内科论坛暨2009年浙江省内科学学术年会论文汇编[C];2009年
8 郭瑞林;苏冰;王小华;任忠良;张晓雪;;咸阳地区医院细菌感染发生率与耐药性监测研究[A];中华医学会第七次全国检验医学学术会议资料汇编[C];2008年
9 谷海瀛;;Helicobacter pylori分离培养鉴定分型及耐药性检测研究[A];中华医学会第七次全国检验医学学术会议资料汇编[C];2008年
10 罗家友;王斌;崔恩海;沈翠芬;;2006-2007年湖州中心医院细菌耐药性检测[A];浙江省医学会呼吸系病分会成立三十周年庆典活动暨2008年呼吸病学学术年会论文汇编[C];2008年
相关博士学位论文 前1条
1 贾峥;HIV-1表型耐药以及基因型耐药的检测与分析[D];北京协和医学院;2010年
相关硕士学位论文 前10条
1 钱海英;聊城地区临床分离主要病原菌的分布特征及耐药性[D];山东大学;2015年
2 曹蕴;130例表皮葡萄球菌临床分离株的耐药性分析和mecA/icaA/icaD基因研究[D];安徽医科大学;2014年
3 王颖;白城地区动物源链球菌耐药性检测及优化临床用药方案的研究[D];吉林农业大学;2015年
4 杜文燕;重症监护病房呼吸机相关性肺炎与非呼吸机相关性肺炎病原菌及耐药性的分析比较[D];青岛大学;2015年
5 张文海;扬州市结核分枝杆菌分子分型及耐药性监测[D];扬州大学;2016年
6 张爱民;不同来源乳酸菌的耐药性分析及药敏性乳酸菌的应用[D];扬州大学;2008年
7 刘e,
本文编号:1670120
本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/chuanranbingxuelunwen/1670120.html