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水溶性酵母葡聚糖口服液的研究

发布时间:2017-10-20 01:01

  本文关键词:水溶性酵母葡聚糖口服液的研究


  更多相关文章: 葡聚糖 硫酸化修饰 抗氧化活性 免疫增强活性 稳定性研究


【摘要】:酵母菌含有丰富的营养物质和生物活性物质,在酵母菌中,发挥免疫活性的物质是酵母菌细胞壁中的葡聚糖,其还具有抗病毒、抗肿瘤、抗氧化等生物活性。本文通过对酵母菌进行提取工艺和分子修饰工艺的筛选,制备出9个的硫酸化酵母葡聚糖(s GSC),通过体内、体外活性的筛选,得到活性较好葡聚糖,然后将其制备成口服液并进行稳定性的研究,全文的结论如下:1.通过预实验,选出了盐析法与碱法结合的提取方法,以糖含量为实验指标,对盐溶液的浓度(A)、反应时间(B)和温度(C)三因素进行了L9(34)正交设计,通过直观分析得出RARBRCR;在方差分析中,FA,FC均大于F0.95(2,2),表明因子A与因子C在显著性水平0.05上差异显著;FBF0.90(2,2),表明因子B差异不显著。因此,选择酵母葡聚糖的最佳提取工艺组合为A3B3C1。2.以浓硫酸的浓度和反应时间为影响因素进行两因素的试验,制备了9个s GSC,在DPPH和羟自由基的清除实验中,随着葡聚糖浓度的增加,自由基的清除率逐渐增加,最高分别达到92.52%和83.41%,其中对DPPH自由基的清除率顺序依次为769285134;对羟自由基的清除活性依次为67923451。在超氧化物自由基的清除实验中,各产物的清除率均偏低,且清除率与葡聚糖浓度没有明显的线性关系,初步筛选出三个抗氧化活性较好的产物。3.将三个s GSC进行体内抗氧化及免疫增强活性评价,并研究其活性与分子量和取代度之间的关系。在体内抗氧化实验中,各实验组的超氧化物歧化酶(SOD)活性与对照组并没有显著差异(p0.05);s GSC1组的谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-PX)活性显著高于对照组(p0.05);s GSC1和s GSC2组的过氧化氢酶(CAT)活性显著高于s GSC3组和对照组(p0.05);三个s GSC组的丙二醛(MDA)活性明显低于对照组(p0.05)。抗氧化活性顺序为s GSC1s GSC2s GSC3,s GSC1,s GSC2和s GSC3的取代度和分子量分别为0.16,12.9k Da;0.24,16.5k Da和0.27,19.2k Da。表明随着分子量和取代度的增加,其抗氧化活性逐渐降低。在免疫增强实验中,各实验组的脾脏和胸腺脏器指数与对照组差异显著(p0.05);在淋巴细胞增殖实验中,s GSC1和s GSC2组的A570值显著高于其他组(p0.05),与对照组相比,三个s GSC组的CD4+细胞数显著升高,CD8+细胞数显著降低,两种细胞的比率显著升高(p0.05);三个s GSC组的IL-2和IFN-γ浓度显著高于对照组(p0.05)。综合结果比较低分子量和取代度的s GSC1的免疫增强结果最好。4.制备三批口服液样品,通过光照实验和加速实验对样品进行稳定性评价,在光照实验中,在第5天和第10天时三批样品的糖含量均比第0天的值偏小,表明该口服液对光照不稳定。在加速实验中,三批样品的的各项指标在第0、1、2、3和6个月之间没有显著的变化,表明制备的葡聚糖口服液样品具有较好的稳定性。综上所述,本文筛选出了s GSC的提取条件和分子修饰条件,并对其生物活性进行了评价;将s GSC制备成口服液并对其稳定性进行研究,光照实验表明该口服液对光不稳定,需用棕色瓶子避光保存,加速实验表明该口服液具有较好的稳定性。
【关键词】:葡聚糖 硫酸化修饰 抗氧化活性 免疫增强活性 稳定性研究
【学位授予单位】:中国农业科学院
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2016
【分类号】:S859.79
【目录】:
  • 摘要6-7
  • Abstract7-15
  • 英文缩略表15-16
  • 第一章 引言16-24
  • 1.1 酵母菌16-17
  • 1.2 酵母葡聚糖17
  • 1.3 葡聚糖的生物活性17-19
  • 1.3.1 免疫增强17-18
  • 1.3.2 抗病毒活性18
  • 1.3.3 抗肿瘤活性18-19
  • 1.3.4 抗氧化活性19
  • 1.4 酵母葡聚糖的提取19-21
  • 1.5 葡聚糖的修饰21-22
  • 1.6 葡聚糖的制剂类型22
  • 1.7 研究的目的、意义和主要内容22-24
  • 1.7.1 研究的目的和意义22
  • 1.7.2 研究的主要内容22-24
  • 第二章 酵母葡聚糖的提取24-33
  • 2.1 引言24
  • 2.2 材料与方法24-27
  • 2.2.1 试剂24
  • 2.2.2 仪器24-25
  • 2.2.3 提取方法25-26
  • 2.2.4 苯酚-硫酸法测定糖含量26
  • 2.2.5 盐析碱法提取样品26-27
  • 2.2.6 正交试验设计27
  • 2.2.7 数据分析27
  • 2.3 结果27-32
  • 2.3.1 标准曲线的绘制27-28
  • 2.3.2 精密度实验28
  • 2.3.3 稳定性实验28-29
  • 2.3.4 加样回收率实验29
  • 2.3.5 预实验结果29-30
  • 2.3.6 酵母葡聚糖提取工艺30-32
  • 2.4 讨论32
  • 2.5 小结32-33
  • 第三章 酵母葡聚糖的分子结构修饰33-42
  • 3.1 引言33
  • 3.2 材料33-34
  • 3.2.1 试剂33
  • 3.2.2 仪器33-34
  • 3.3 方法34-36
  • 3.3.1 硫酸化修饰34
  • 3.3.2 取代度(DS)的测定34-35
  • 3.3.3 DPPH自由基清除率测定35
  • 3.3.4 超氧化物自由基清除率测定35-36
  • 3.3.5 羟自由基清除率测定36
  • 3.4 结果36-40
  • 3.4.1 标准曲线的绘制36-37
  • 3.4.2 两因素实验设计37
  • 3.4.3 体外抗氧化活性37-40
  • 3.5 讨论40-41
  • 3.6 小结41-42
  • 第四章 硫酸化酵母葡聚糖体内抗氧化及免疫增强活性42-55
  • 4.1 引言42
  • 4.2 材料42-43
  • 4.2.1 试剂42-43
  • 4.2.2 仪器43
  • 4.3 方法43-45
  • 4.3.1 样品的制备43
  • 4.3.2 取代度的测定43
  • 4.3.3 分子量的测定43-44
  • 4.3.4 傅里叶红外光谱测定44
  • 4.3.5 动物实验44
  • 4.3.6 脏器指数44
  • 4.3.7 生化试验44
  • 4.3.8 淋巴细胞增殖实验44-45
  • 4.3.9 CD4~+和CD8~+T淋巴细胞的测定45
  • 4.3.10 血清IL-2 和IFN-γ45
  • 4.4 数据分析45
  • 4.5 结果45-53
  • 4.5.1 化学分析45-46
  • 4.5.2 动物实验46-53
  • 4.6 讨论53-54
  • 4.7 小结54-55
  • 第五章 口服液的制备及稳定性研究55-60
  • 5.1 引言55
  • 5.2 材料55-56
  • 5.2.1 试剂55
  • 5.2.2 仪器55-56
  • 5.3 方法56
  • 5.3.1 葡聚糖口服液的制备56
  • 5.3.2 糖含量的测定56
  • 5.3.3 取代度的测定56
  • 5.3.4 分子量的测定56
  • 5.3.5 相对密度及PH的测定56
  • 5.3.6 光照稳定性56
  • 5.3.7 加速实验56
  • 5.4 结果56-59
  • 5.4.1 光照稳定性结果56-57
  • 5.4.2 加速实验结果57-59
  • 5.5 讨论59
  • 5.6 小结59-60
  • 第六章 全文结论60-61
  • 参考文献61-67
  • 致谢67-68
  • 作者简历68

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本文编号:1064326

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