当前位置:主页 > 医学论文 > 畜牧兽医论文 >

表达绿色荧光蛋白重组鸭肠炎病毒构建

发布时间:2018-04-02 15:26

  本文选题:鸭肠炎病毒 切入点:UL基因 出处:《中国农业科学》2016年14期


【摘要】:【目的】鸭肠炎病毒(duck enteritis virus,DEV)不同毒株间存在明显差异,DEV疫苗株的UL2基因在195bp后连续缺失528bp,导致第65位氨基酸后连续缺失176aa~([1])。将绿色荧光蛋白(GFP)基因插入DEV UL2基因中,获得表达绿色荧光蛋白的重组病毒,以研究UL2基因对DEV生物特性的影响和探讨DEV作为载体表达外源基因的可行性。【方法】以实验室保存的DEV细胞适应株DNA为模板,利用PCR技术扩增出病毒UL2基因上下游序列并克隆入pMD-18T载体;以UL2基因作为外源基因插入靶点及同源重组臂,将CMV启动子控制的含有GFP-gpt基因表达盒克隆入DEV UL2基因中,构建含GFP基因的转移质粒载体pT-UL2-GFP-gpt;用脂质体将其与DEV细胞适应株共转染CEF细胞,待80%细胞出现病变后,冻融3次,接种到新鲜CEF细胞单层的6孔培养板中,用含5%血清、1%双抗、1%琼脂的M199培养液覆盖,在荧光显微镜下挑取单个有绿色荧光的蚀斑,再接到新的细胞上,重复蚀斑筛选、纯化表达绿色荧光蛋白的重组病毒;利用PCR、基因测序技术鉴定重组病毒;重组病毒接种CEF(moi=0.01),每12h取出1瓶接毒细胞,分别收集上清和细胞,测量其病毒含量,绘制一步生长曲线;重组病毒在CEF中连续传代20次,在荧光显微镜下观察绿色荧光蛋白表达情况,并用PCR检测GFP的传代稳定性;重组病毒免疫4周龄SPF鸭后14d,肌肉注射接种DEV强毒(CVCC AV1221),观察免疫保护情况。【结果】经双酶切鉴定,成功构建了含绿色荧光蛋白报告基因的转移质粒载体p T-UL2-GFP-gpt,将其与DEV共转染CEF细胞后8h,即可见转染细胞中有带有绿色荧光的梭形细胞,经过8轮蚀斑筛选,获得纯化的重组病毒rDEV-△UL2-GFP-gpt;PCR鉴定及基因测序结果显示,GFP标记基因成功地插入到DEV基因组中,替换了DEV UL2基因的196—723位核苷酸;一步生长曲线结果显示,重组病毒在细胞和上清中的病毒含量分别在36h和72h达到峰值,为10~(6.2)TCID_(50)/0.1m L、10~(5.5)TCID_(50)/0.1m L,与亲本毒无明显差异;重组病毒在CEF中连续传代,1—5代可以稳定表达GFP基因,第6代起,开始出现少量没有荧光的细胞病变,15—20代中绝大部分细胞病变无绿色荧光,GFP在细胞连续传代过程中容易出现突变;重组病毒以10~(3.0)TCID_(50)/只免疫麻鸭,免疫后14d能完全抵抗DEV强毒株的攻击,与亲本毒免疫原性一致。【结论】成功构建了表达绿色荧光蛋白的DEV,首次证实UL2基因缺失不影响其在细胞中的复制,也不影响其免疫原性。荧光重组病毒的构建为DEV UL2基因功能、活载体疫苗研究奠定了基础。
[Abstract]:[objective] there were significant differences among different strains of duck enteritis virus (DEAV). The UL2 gene of DEV vaccine strain was deleted 528 BP after 195bp, which led to the deletion of 176aaAU after 65th amino acid.The green fluorescent protein (GFP) gene was inserted into the DEV UL2 gene to obtain the recombinant virus expressing green fluorescent protein.In order to study the effect of UL2 gene on the biological characteristics of DEV and explore the feasibility of expressing exogenous gene with DEV as a vector, [methods] DNA, an adaptive cell line of DEV cells, was used as a template.The upstream and downstream sequences of the virus UL2 gene were amplified by PCR and cloned into the pMD-18T vector. The CMV promoter controlled GFP-gpt gene expression box was inserted into the DEV UL2 gene with UL2 gene as the target and homologous recombination arm.A single green fluorescent plaque was selected under a fluorescence microscope and then was inserted into a new cell. The recombinant virus expressing green fluorescent protein was purified by repeated plaque screening.The results of PCR identification and gene sequencing of purified recombinant virus rDEVUL2-GFP-gptHN showed that the GFP-labeled gene was successfully inserted into the DEV genome and replaced the 196-723 nucleotides of the DEV UL2 gene, and the results of one-step growth curve showed that the GFP-labeled gene was successfully inserted into the DEV genome and replaced the 196-723 nucleotides of the DEV UL2 gene.The virus content of recombinant virus in cell and supernatant reached its peak at 36h and 72h, respectively, which was 10~(6.2)TCID_(50)/0.1m L10, 5.5TCIDD / 0.1 L, which had no significant difference with parental virus, and the recombinant virus could express GFP gene stably in 1-5 passages of CEF, and the sixth generation.In the 15-20 passage, most of the cytopathic diseases were easy to mutate in the continuous passage of cells, and the recombinant virus was only immunized with 10~(3.0)TCID_(50)/.On the 14th day after immunization, DEV could completely resist the attack of DEV virulent strain, which was consistent with the immunogenicity of parent virus. [conclusion] the expression of green fluorescent protein was successfully constructed. It was proved for the first time that the deletion of UL2 gene did not affect its replication in cells.Nor does it affect its immunogenicity.The construction of fluorescent recombinant virus lays a foundation for the study of DEV UL2 gene function and live vector vaccine.
【作者单位】: 中国兽医药品监察所;
【基金】:北京市自然科学基金(6162025)
【分类号】:S852.65

【参考文献】

相关期刊论文 前2条

1 张雪莲,范伟兴,周玉传,缪德年,钱莺娟,陈溥言;表达绿色荧光蛋白的重组CVI988病毒的构建及特性[J];中国病毒学;2003年05期

2 黄引贤,欧守杼,邝荣禄,林维庆;鸭瘟病毒的研究[J];华南农学院学报;1980年01期

【共引文献】

相关期刊论文 前10条

1 刘月焕;;加强水禽传染病的防控技术研究和技术储备[J];中国农业科学;2016年14期

2 孙莹;李俊平;黄小洁;李岭;曹明慧;李启红;李慧姣;杨承槐;;表达绿色荧光蛋白重组鸭肠炎病毒构建[J];中国农业科学;2016年14期

3 张苗苗;李慧昕;韩宗玺;刘怀然;王玉龙;邵昱昊;孔宪刚;;表达新城疫病毒F基因重组鸭肠炎病毒的构建[J];中国预防兽医学报;2016年02期

4 张传健;许梦微;王志胜;侯继波;王继春;;鸭瘟鸡胚化弱毒株细菌人工染色体的构建与鉴定[J];江苏农业学报;2014年05期

5 姜甜甜;张大丙;;鸭瘟强毒与疫苗毒的囊膜糖蛋白序列比较[J];中国兽医杂志;2013年02期

6 杨承槐;李俊平;李启红;刘丹;黄建华;蒋桃珍;李慧姣;夏业才;;含LacZ表达盒的鸭瘟病毒TK基因缺失转移载体的构建[J];中国兽药杂志;2013年01期

7 王岩;吴玉臣;崔保安;;鸭病毒性肠炎病毒河南株gI基因的克隆与同源比较[J];中国家禽;2012年23期

8 张坤;刁有祥;程彦丽;崔京腾;王蛟;刘鑫;;鸭瘟病毒对SPF鸭的致病性研究[J];西北农林科技大学学报(自然科学版);2012年07期

9 范薇;程安春;汪铭书;隋丽华;孙岩松;;鸭瘟病毒gD基因胞外区的原核表达及ELISA检测方法的建立与应用[J];中国兽医科学;2012年05期

10 王岩;杨明凡;崔保安;阴晓霞;邓永欢;闫艺克;王汉邦;;鸭瘟病毒河南株gI基因的克隆与测序[J];广东农业科学;2012年03期

【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 李小青,周蕊,贾蕴丽,贾放,余泽华,陈新文;肌动蛋白在AcMNPV向细胞外运输过程中作用的初步研究[J];中国病毒学;2004年06期

2 朱反修,王福山,齐义鹏;昆虫杆状病毒表达系统中阳性重组病毒的筛选[J];生物化学与生物物理进展;1995年01期

3 钞安军;郭晓庆;顾阳;朱前磊;付朋飞;崔保安;陈红英;;PCV2 ORF2蛋白重组PRV病毒PGO株的生物学特性[J];中国兽医学报;2014年06期

4 曹永长,毕英佐,刘丽;一种获得重组传染性法氏囊病病毒的新方法[J];中国兽医学报;2002年01期

5 于曼,秦鄂德,陈水平,赵月峨,范宝昌,段鸿元,姜涛,杨佩英,胡志君;登革2型PrM基因的重组病毒对不同型别登革病毒复制的阻断作用[J];中国生物化学与分子生物学报;2002年05期

6 井波;李呈军;陈化兰;;利用反向遗传技术拯救H9N2重组病毒[J];中国兽医学报;2011年06期

7 颜艳;杨鹏辉;罗德炎;崔萍;王希良;何维明;;用反向遗传8质粒系统构建流感H1N1重组病毒[J];西北农林科技大学学报(自然科学版);2007年09期

8 周洁文;滕巧泱;闫丽萍;边延峰;张旭;徐大伟;石迎;周雨霞;李泽君;;高增殖性能犬流感CIV-PR8重组病毒的制备[J];中国预防兽医学报;2012年07期

9 邓小昭,何亮,刁振宇,张林元,李光富;重组病毒/家蚕细胞系统稳定高效表达HBeAg基因的研究[J];药物生物技术;1998年02期

10 方肇寅,O.Kew,任斌,郑渡平,温乐英,杨辰夫,苏锦,陈美光,郑焕英,孟宪坤,张振国,刘复林,H.Yoshikura;在我国流行的脊髓灰质炎中发现脊灰病毒Ⅰ型自然重组株[J];病毒学报;1993年03期

相关会议论文 前9条

1 杨松涛;夏咸柱;乔军;常爽;谢之景;鞠会艳;邹啸环;;表达猫细小病毒VP2蛋白重组腺病毒的构建及其免疫原性研究[A];第六届全国会员代表大学暨第11次学术研讨会论文集(下)[C];2005年

2 杨松涛;夏咸柱;乔军;常爽;谢之景;鞠会艳;邹啸环;;表达猫细小病毒VP2蛋白重组腺病毒的构建及其免疫原性研究[A];中国畜牧兽医学会家畜传染病学分会第六届全国会员代表大会暨第11次学术研讨会论文集[C];2005年

3 郑海红;孙志;王金勇;朱兴全;袁世山;;PRRSV-PCV重组病毒遗传不稳定性研究[A];中国畜牧兽医学会动物传染病学分会第十二次学术研讨会论文集[C];2007年

4 肖化忠;刘德立;齐义鹏;;双拷贝V-CATH基因重组病毒的杀虫活性及昆虫的液化死亡机制[A];全国生物防治暨第八届杀虫微生物学术研讨会论文摘要集[C];2000年

5 陈晶;刘晓慧;艾军;孙招金;孙京臣;郭霄峰;;糖蛋白基因重排至第二位对狂犬病病毒生物学特性的影响[A];2010全国狂犬病防控高层论坛论文集[C];2010年

6 陈晶;刘晓慧;艾军;孙招金;孙京臣;郭霄峰;;糖蛋白基因重排至第二位对狂犬病病毒生物学特性的影响[A];中国畜牧兽医学会生物制品学分会中国微生物学会兽医微生物学专业委员会2010年学术年会(第三届中国兽药大会学术论坛)论文集[C];2010年

7 纪素坤;邓明亮;费文涛;胡长敏;陈颖钰;郭爱珍;陈焕春;;BHV-1gG~-/tk~-/GM-CSF~+重组病毒的构建及其免疫效果评价[A];中国畜牧兽医学会家畜传染病学分会第八届全国会员代表大会暨第十五次学术研讨会论文集[C];2013年

8 姚敏;戴梦红;陈冬梅;黄玲俐;袁宗辉;;猪细胞色素CYP3A29异源表达及其功能活性研究[A];中国畜牧兽医学会兽医药理毒理学分会第十次研讨会论文摘要集[C];2009年

9 吴乐;李辉;李云庆;;大鼠延髓背角Ⅲ层深部内GFP基因重组病毒标记神经元的形态学特点[A];解剖学杂志——中国解剖学会2002年年会文摘汇编[C];2002年

相关博士学位论文 前6条

1 虞凌雪;表达猪GM-CSF重组PRRSV弱毒疫苗株的构建及其免疫特性分析[D];中国农业科学院;2014年

2 焦洋;HIV-1耐药相关特征性突变位点及复制适应性研究[D];中国疾病预防控制中心;2015年

3 李治军;表达猪源GM-CSF或IL-4的重组猪繁殖与呼吸综合征病毒的构建及其免疫效率评价[D];西北农林科技大学;2015年

4 孙学强;马疱疹病毒1型感染性克隆及表达猪链球菌2型亚单位重组病毒的构建[D];南京农业大学;2010年

5 周井祥;猪繁殖与呼吸综合征病毒GP5、M蛋白基因核酸疫苗和重组犬2型腺病毒疫苗构建及免疫原性的研究[D];吉林大学;2007年

6 邱薇;犬2型腺病毒基因重组活疫苗的基础研究[D];中国人民解放军军需大学;2001年

相关硕士学位论文 前10条

1 王玉龙;表达IBV主要结构蛋白重组DEV的构建及其免疫保护性评价[D];甘肃农业大学;2015年

2 周明哲;棉铃虫核多角体病毒的传播动态及含SOD重组病毒的构建[D];中国科学院研究生院(武汉病毒研究所);2004年

3 李海超;PCV2的分子流行病学分析及PCV2嵌合重组病毒的制备[D];东北农业大学;2014年

4 杨慧敏;表达绿色荧光蛋白的猪伪狂犬病病毒与猪细小病毒VP2基因的重组病毒的构建[D];河南农业大学;2009年

5 母晓宇;两株缺失SORF3/TK基因重组鸭肠炎病毒的构建及其基本生物学特性研究[D];东北农业大学;2013年

6 董井泉;缺失US10,,UL44基因重组鸭肠炎病毒的构建与重组病毒基本生物学特性研究[D];东北农业大学;2014年

7 尹文玲;猪伪狂犬病病毒(浙江株)感染性细菌人工染色体克隆的构建[D];西北农林科技大学;2010年

8 金利容;缺失v-cath基因的棉铃虫单核衣壳核型多角体重组病毒的构建[D];华中师范大学;2006年

9 贾雷立;核酸探针与PCR方法对重组病毒vFV282株的鉴定研究[D];东北农业大学;2003年

10 杨用光;表达IBDV-VP2蛋白的重组禽Ⅰ型腺病毒(rFAv-VP2)的构建及纯化[D];扬州大学;2006年



本文编号:1701015

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/dongwuyixue/1701015.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户beafb***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com