当前位置:主页 > 医学论文 > 畜牧兽医论文 >

缝隙连接在镉致BRL 3A细胞凋亡中的作用

发布时间:2018-11-03 14:19
【摘要】:缝隙连接(OJ)介导相邻细胞间的物质交换和信息交流,在调控细胞生长、增殖、转化和凋亡的稳态平衡中起着重要作用。镉是一种重要的工业和环境污染物,可诱导多种细胞凋亡。为探讨镉对大鼠肝细胞(BRL 3A)缝隙连接通讯功能的影响及缝隙连接在镉致BRL 3A细胞凋亡中的作用,本实验以不同浓度的醋酸镉(0、2.5、10 μmol/L)作用BRL 3A细胞12 h或10 μmol/L醋酸镉、5 μmol/L 18β-甘草次酸(18 P-glycyrrhizic acid, GA)单独或联合作用细胞9 h,采用实时分析技术(RTCA)测定细胞指数(CI),显微镜观察细胞形态,划痕染料标记示踪法(SL/DT)检测细胞缝隙连接通讯(GJIC),激光共聚焦观察缝隙连接蛋白Cx43分布,hoechst 33258染核,流式细胞术测定胞内Ca2+浓度([Ca2+],)和细胞凋亡率,免疫印迹测定Cx32、Cx43、p-Cx43、Bax、Bcl-2、caspase-3和MAPK成员ERK、JNK和p38的活化。结果表明:①0、2.5、10 μpmol/L镉暴露12 h后,CI值显著或极显著降低(P0.05或P0.01),细胞间荧光黄(LY)两侧扩散距离极显著减少(P0.01),Cx43在细胞膜上分布减少、胞内增多,Cx32、Cx43和p-Cx43表达显著或极显著降低(P0.05或P0.01)。②10 μmol/L镉暴露9 h后,LY两侧扩散距离明显减少,Cx32表达无显著变化(P0.05),Cx43表达极显著降低(P0.01),p-Cx43表达极显著升高(P0.01),胞内Ca2+浓度([Ca2+].)极显著升高(P0.01)。缝隙连接阻滞剂(GA)和镉联合作用对镉引起的Cx32、Cx43和p-Cx43表达变化无明显影响(P0.05),但能增强镉引起的[Ca2+]。的升高(P0.01)。③10μmol/L镉暴露9 h后,可引起BRL 3A细胞核形态的变化,出现核皱缩、核碎裂等典型的凋亡特征,并增加肝细胞的凋亡率。GA和镉联合作用可增强镉诱导的胞核形态的改变、细胞凋亡率升高和Bax/Bcl-2比值和cleaved caspase-3/procaspase-3比值升高(P0.05或P0.01)。镉可诱导ERK、JNK和p38的磷酸化水平极显著上升(P0.01)。GA和镉联合作用能极显著增加镉引起的ERK和p38磷酸化水平的升高(P0.01),但对JNK的磷酸化水平无显著影响(P0.05)。结论,镉对BRL 3A细胞有明显的细胞毒性,可抑制GJIC,其机制可能是镉诱导BRL3A细胞Cx43分布异常,Cx32和Cx43表达及Cx43磷酸化水平的改变,以及[Ca2+],升高。缝隙连接阻滞后可增强镉对肝细胞的毒性损伤,促进镉诱导的细胞凋亡,这可能与凋亡相关蛋白的调控,以及ERK和p38信号途径有关,故缝隙连接在镉致肝细胞凋亡中起着重要作用
[Abstract]:Gap junction (OJ) mediates material exchange and information exchange between adjacent cells, which plays an important role in regulating the homeostasis of cell growth, proliferation, transformation and apoptosis. Cadmium is an important industrial and environmental pollutant, which can induce apoptosis of many kinds of cells. To investigate the effect of cadmium on the function of gap junction communication in rat hepatocytes (BRL 3A) and the role of gap junction in the apoptosis of BRL 3A cells induced by cadmium. In this study, cadmium acetate (10 渭 mol/L) at different concentrations of cadmium acetate was used to treat BRL 3A cells for 12 h or 10 渭 mol/L, and 5 渭 mol/L 18 尾 -glycyrrhetinic acid (18 P-glycyrrhizic acid, GA) alone or in combination for 9 h). The cell morphology was observed by (CI), microscope with real time analysis technique (RTCA), and the distribution of gap junction protein Cx43 was observed by scratch dye tracer (SL/DT) and (GJIC), laser confocal analysis. Hoechst 33258 was stained with nucleus, intracellular Ca2 concentration ([Ca2],) and apoptosis rate were measured by flow cytometry. The activation of ERK,JNK and p38 in Cx32,Cx43,p-Cx43,Bax,Bcl-2,caspase-3 and MAPK members were detected by Western blot. The results showed that after exposure to 10 渭 pmol/L cadmium for 12 h, the CI value decreased significantly (P0.05 or P0.01), the diffusion distance between the two sides of the fluorescent yellow (LY) decreased significantly (P0.01), and the distribution of Cx43 on the cell membrane decreased. The expression of Cx32,Cx43 and p-Cx43 decreased significantly (P0.05 or P0.01). After 9 h of cadmium exposure at 210 渭 mol/L, the diffusion distance on both sides of LY decreased significantly, but the expression of Cx32 did not change significantly (P0.05). The expression of Cx43 was significantly decreased (P0.01), the expression of p-Cx43 was significantly increased (P0.01), and the intracellular Ca2 concentration ([Ca2]) was significantly increased (P0.01). Very significantly increased (P0.01). The combined action of gap junction blocker (GA) and cadmium had no significant effect on the changes of Cx32,Cx43 and p-Cx43 expression induced by cadmium (P0.05), but could enhance [Ca2] induced by cadmium. After exposure to cadmium at 310 渭 mol/L for 9 h, the nuclear morphology of BRL 3A cells was changed, and typical apoptotic features such as nuclear shrinkage and nuclear fragmentation were observed. Combined effects of GA and cadmium could enhance the changes of nuclear morphology induced by cadmium, increase the rate of apoptosis and increase the ratio of Bax/Bcl-2 and cleaved caspase-3/procaspase-3 (P0.05 or P0.01). Cadmium could significantly increase the phosphorylation level of ERK,JNK and p38 (P0.01). GA combined with cadmium could increase the phosphorylation level of ERK and p38 induced by CD (P0.01). But there was no significant effect on the phosphorylation level of JNK (P0.05). Conclusion: cadmium has obvious cytotoxicity to BRL 3A cells, and the mechanism of inhibiting GJIC, may be the abnormal distribution of Cx43, the changes of Cx32 and Cx43 expression and Cx43 phosphorylation, and the increase of [Ca2] in BRL3A cells induced by cadmium. The blocking of gap junction can enhance the toxicity of cadmium to hepatocytes and promote the apoptosis induced by cadmium, which may be related to the regulation of apoptosis-related proteins and the signaling pathway of ERK and p38. So gap junction plays an important role in cadmium induced hepatocyte apoptosis.
【学位授予单位】:扬州大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2015
【分类号】:S859.87

【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 金梅林,陈焕春;细胞凋亡及基因调控在兽医病毒学领域研究动态[J];动物医学进展;2000年04期

2 刘燕;与细胞凋亡相关的分子和基因研究进展[J];中国兽药杂志;2002年11期

3 高照全,魏钦平,张继祥,杨洪强;细胞凋亡的研究进展及其在农业上的应用[J];山东农业大学学报(自然科学版);2003年01期

4 高丰,金天明,姜宁,楮秀玲;细胞凋亡的研究现状与发展趋势[J];动物医学进展;2003年06期

5 张星海,郭碧花,杨贤强;茶多酚诱导肿瘤细胞凋亡及机理探讨[J];福建茶叶;2003年01期

6 孙培明,王志亮,李玉保,鲍恩东;热应激蛋白70与细胞凋亡[J];中国动物检疫;2003年06期

7 薛占永,呼秀智;细胞凋亡研究进展[J];邯郸农业高等专科学校学报;2003年04期

8 曾林;钟仰进;梁红;曹阳;;细胞凋亡的研究及进展[J];广东蚕业;2003年03期

9 刘会娟;姜龙;;细胞凋亡的分子机理及其检测方法研究进展[J];畜禽业;2006年02期

10 陈庆华;;细胞凋亡机制的研究应用[J];广东畜牧兽医科技;2006年02期

相关会议论文 前10条

1 陈颖丽;李前忠;;不同亚细胞位置的细胞凋亡蛋白质的结构特性分析[A];第十一次中国生物物理学术大会暨第九届全国会员代表大会摘要集[C];2009年

2 孙英丽;赵允;朱山;翟中和;;植物细胞凋亡及其机理的研究[A];中国细胞生物学学会第七次会议论文摘要汇编[C];1999年

3 刘二龙;袁慧;;锌与细胞凋亡[A];2003全国家畜内科学学术研讨会论文专辑[C];2003年

4 邱洁;高海青;;锌在细胞凋亡中的作用研究进展[A];山东省微量元素科学研究会第三届学术研讨会论文汇编[C];2006年

5 俞雅萍;;细胞凋亡的机制及途径和影响因素[A];华东六省一市生物化学与分子生物学学会2006年学术交流会论文集[C];2006年

6 于青;袁伟杰;姚建;;晚期糖基化终末产物引起足细胞凋亡的机制[A];2007年浙沪两地肾脏病学术年会资料汇编[C];2007年

7 季宇彬;尹立;汲晨锋;;调控细胞凋亡的线粒体因素[A];肿瘤病因学研究与中西医结合肿瘤综合诊疗交流研讨会论文集[C];2009年

8 吴经纬;汤长发;;运动中细胞凋亡的线粒体变化特征[A];湖南省生理科学会2006年度学术年会论文摘要汇编[C];2007年

9 蒲小平;李长龄;屠鹏飞;宋志宏;;中药肉丛蓉成分抗神经细胞凋亡的实验研究[A];第七届全国生化药理学术讨论会论文摘要集[C];2000年

10 江键;宋诚荣;崔黎丽;方影;王小平;;静电场对细胞凋亡作用的初步探讨[A];中国物理学会第九届静电学术年会论文集[C];2000年

相关重要报纸文章 前10条

1 商东;“细胞凋亡”与临床医学[N];中国医药报;2001年

2 张志军;细胞凋亡与中医药[N];中国医药报;2002年

3 ;“细胞凋亡疗法”正逐步成为治疗癌症的新途径[N];中国高新技术产业导报;2002年

4 记者张建松;治疗癌症新途径:细胞凋亡疗法[N];科技日报;2002年

5 李明辉;“细胞凋亡”治癌症[N];医药导报;2002年

6 洪敏;细胞凋亡研究引人关注[N];中国医药报;2008年

7 陶春祥;细胞凋亡对心脏疾病的影响[N];中国医药报;2003年

8 本报实习记者 梁媛媛;薛定:发现癌症“开关”[N];北京科技报;2010年

9 高书明;诱导癌细胞凋亡[N];中国医药报;2004年

10 勇汇;中药诱导癌细胞凋亡研究进展[N];中国医药报;2002年

相关博士学位论文 前10条

1 杨利;系列多氮类化合物的抗肿瘤活性研究[D];武汉大学;2012年

2 张浩;从分子、细胞和动物水平研究铅诱发氧化损伤及细胞凋亡的效应与机理[D];山东大学;2015年

3 何欣怡;家蚕微孢子虫(Nosema bombycis)抑制家蚕BmN细胞凋亡的功能研究[D];浙江大学;2015年

4 冯全服;从线粒体途径研究川芎嗪诱导HepG2细胞凋亡效应机制[D];南京中医药大学;2015年

5 张晓倩;高糖诱导Bim蛋白高表达而促肾近曲小管上皮细胞凋亡的机制探讨[D];山东大学;2015年

6 孙健玮;PTEN基因负调控Raf1磷酸化的作用及其对PC3细胞凋亡的影响[D];昆明医科大学;2014年

7 徐林艳;肿瘤细胞凋亡过程中TNFRSF10B和CFLAR调控机制研究[D];山东大学;2015年

8 樊庆端;生物调控网络的建模与动力学行为研究[D];上海大学;2015年

9 王德选;WNK_3对钠氯协调转运子的调节及在胚肾细胞凋亡中的保护作用[D];南方医科大学;2015年

10 叶嘉;Nogo-B在急性肺损伤肺泡上皮细胞凋亡中的作用[D];第二军医大学;2015年

相关硕士学位论文 前10条

1 曹璐璐;2,2’,4,4’-四溴联苯醚(BDE-47)对人胚肾细胞(HEK293)的毒理效应及作用机制研究[D];中国科学院烟台海岸带研究所;2015年

2 张薇;蒜头果蛋白诱导HepG-2细胞凋亡的研究[D];云南民族大学;2015年

3 唐建国;视黄醇X受体出核抑制对神经元细胞凋亡的影响[D];福建医科大学;2015年

4 安璐;3-氯-1,2-丙二醇细胞毒性及其诱导HEK293细胞凋亡途径探究[D];江南大学;2015年

5 杨翔;Procaspase-8的异常表达抑制TRAIL诱导肿瘤细胞凋亡[D];昆明理工大学;2015年

6 张昌明;I3C通过调控p53泛素化对喉癌Hep-2细胞凋亡的影响[D];延边大学;2015年

7 彭涵;共轭亚油酸对仔猪脂肪细胞凋亡的影响[D];西南大学;2015年

8 李立辉;ΔFosB通过MMP-9调控山羊乳腺上皮细胞凋亡的分子机制[D];西北农林科技大学;2015年

9 杨鑫铖;Hedgehog信号通路在大鼠急性胰腺炎腺泡细胞凋亡中的作用[D];河北医科大学;2015年

10 贾琼琼;MicroRNA-214对H_2O_2损伤L6骨骼肌成肌细胞增殖和凋亡的影响[D];河北医科大学;2015年



本文编号:2308042

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/dongwuyixue/2308042.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户01db3***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com