【摘要】:细菌耐药性问题日趋严重,使得有些细菌感染达到了无药可用的境地,因此研发新型抗菌药物成为人们关注的焦点。噬菌体及其裂解酶可以特异、高效地裂解细菌,成为治疗细菌性感染,特别是耐药性细菌感染的一种新型生物制剂,展现出了巨大的应用潜力。粪肠球菌(Enterococcus faecalis)是一种机会致病菌,可以造成多种局部或全身性的感染性疾病。由于抗生素的滥用和粪肠球菌对许多抗生素的固有耐药,使得临床上由治疗粪肠球菌造成的感染变得非常困难。本研究以耐万古霉素粪肠球菌噬菌体EF-P10及其裂解酶LysEF-P10为研究对象,对其作为抗菌制剂的应用潜力及其裂解机制进行了系统研究。本研究首先获得了40株多重耐药的粪肠球菌,并以耐万古霉素的粪肠球菌(Vancomycin-resistant Enterococcus faecalis,VREF)N10为宿主菌从污水中分离并纯化得到了一株烈性噬菌体EF-P10,透射电镜显示其属于长尾噬菌体科,基因组类型鉴定表明EF-P10为双链DNA病毒。EF-P10对其宿主菌表现出了高效的杀菌活性,但裂解谱较窄。对EF-P10进行了全基因组测序,发现EF-P10全长为57 408 bp,具有127个开放阅读框,比对和分析结果表明ORF60所编码的蛋白为其裂解酶LysEF-P10。对LysEF-P10进行了原核表达与纯化,体外实验表明,LysEF-P10具有高效的杀菌活性,其裂解谱远远宽于亲本噬菌体。将粪肠球菌与LysEF-P10连续作用多代不会诱导细菌对LysEF-P10产生抗性,预示其有广阔的应用前景。随后,本研究对LysEF-P10的结构和功能进行了深入研究,通过氨基酸序列比对和分析可知,LysEF-P10包含一个N端CHAP结构域(LysEF-P10C)和C端的假定细胞壁结合结构域(LysEF-P10B)。为了验证各结构域的功能,分别对LysEF-P10C和LysEF-P10B进行了原核表达和纯化。体外杀菌实验表明单独的LysEF-P10C和LysEF-P10B都不具有杀菌活性,只有完整的全酶才具有活性。为了直观地看到与宿主菌结合的结构域,将LysEF-P10C、LysEF-P10B分别和GFP蛋白进行融合,得到LysEF-P10C-GFP和LysEF-P10B-GFP融合蛋白,并用激光共聚焦显微镜检测两个融合蛋白与粪肠球菌N10的结合能力,结果只有LysEF-P10B-GFP能与粪肠球菌N10发生特异性结合,表明LysEF-P10B是LysEF-P10中发挥结合作用的结构域。以金黄色葡萄球菌噬菌体裂解酶LysGH15的CHAP片段为模板,预测得到了置信度为100%的LysEF-P10C的3D结构,二者在结构上具有很高的同源性。通过序列比对和构建的3D结构模型,预测得到了LysEF-P10C中可能的关键氨基酸位点D20、D22、D31、C29、H90和N110,并将这些位点逐一单位点突变为丙氨酸。圆二色谱结果表明,突变前后蛋白的二级结构没有发生改变。体外杀菌活性表明,EDTA处理后LysEF-P10的活性全部丧失,回补Ca~(2+)活性恢复,这表明Ca~(2+)对维持LysEF-P10的杀菌活性是必需的;D20A、D22A和D31A突变体蛋白活性全部丧失,ICP-AES结果表明突变后Ca~(2+)含量显著降低,回补Ca~(2+)后突变体蛋白活性并没有恢复,这表明D20、D22和D31是结合Ca~(2+)的关键位点;C29A、H90A和N110A突变体蛋白的活性也全部丧失,但ICP-AES结果表明突变后Ca~(2+)含量没有显著变化,说明这三个位点是起催化作用的关键位点。本文进一步评价了LysEF-P10在体内的治疗效果、免疫原性、对肠道菌群的影响及其安全性。治疗实验表明,攻菌后1 h腹腔注射5.0μg LysEF-P10就可以100%保护感染致死剂量VREF的小鼠,且显著降低小鼠血液中的载菌量。免疫原性实验表明LysEF-P10可以诱导小鼠产生针对LysEF-P10的特异性抗体,一次性注射5.0μg LysEF-P10后的第三周抗体滴度达到最高(1:100),主要抗体类型为IgG。中和实验表明anti-LysEF-P10的抗体并不会影响LysEF-P10在体外的杀菌活性,同时体内实验也表明特异性抗体不会影响LysEF-P10在体内的治疗效果。为了评价LysEF-P10在体内应用时对肠道菌群的影响,对小鼠粪便中的细菌进行16S rRNA测序分析,结果表明,当给小鼠腹腔注射致死剂量的VREF 24 h后小鼠粪便中肠球菌属细菌的丰度显著升高,肠道菌群平衡状态受到干扰;攻菌后1 h用5.0μg LysEF-P10对其进行治疗,小鼠粪便中肠球菌属细菌的丰度显著降低,肠道菌群的失衡状态得到一定程度的恢复。单独腹腔注射100.0μg LysEF-P10也会在24 h内使小鼠粪便中肠球菌属细菌的丰度显著降低。对小鼠的安全性试验表明,即使腹腔注射大剂量LysEF-P10(5.0 mg)也不会对小鼠产生明显的副作用,表明LysEF-P10在体内应用时具有良好的安全性。综上所述,本研究为全面解析粪肠球菌噬菌体及其裂解酶的生物学特性以及LysEF-P10在治疗多重耐药粪肠球菌感染中应用打下了坚实的理论与实验基础。
【学位授予单位】:吉林大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2019
【分类号】:S852.611
【相似文献】
相关期刊论文 前10条
1 吴利先,黄文祥;粪肠球菌sprE基因的功能研究[J];中华微生物学和免疫学杂志;2005年10期
2 陶源勇,成可经,,苏秀霞;从前房脓液中分离出L型粪肠球菌[J];上海医学检验杂志;1996年01期
3 张富华;李矛;韦智君;张建凤;;纳米银对多菌种生物膜中粪肠球菌的杀菌作用[J];实用口腔医学杂志;2017年03期
4 姜剑松;祈荣兴;;粪肠球菌肺脓肿1例[J];临床肺科杂志;2012年12期
5 杨跃飞;周守长;刘文博;王彦红;;鹧鸪源性粪肠球菌的分离与鉴定[J];中国兽医杂志;2009年02期
6 唐学智;杜田丰;石琦;丁晓晓;姚怡辰;曹颖光;;洗必泰溶液对不同时期粪肠球菌生物膜作用效果的实验研究[J];临床口腔医学杂志;2017年05期
7 王玉峰;于宁;刘晓军;秦晓东;鲁承;孙福亮;;熊源粪肠球菌小鼠感染模型的建立及其毒力基因的检测[J];畜牧与兽医;2019年09期
8 龚阿琼;王学东;周小辉;谭斌;;肠溶性粪肠球菌微胶囊制备的初步研究[J];国外畜牧学(猪与禽);2012年10期
9 屈跃军,白燕,郭照静;脑脊液中分离粪肠球菌一例报道[J];实用医技杂志;2005年03期
10 徐亚飞;曾新福;乐敏;李慧;刘金松;;粪肠球菌在水产养殖中的应用研究进展[J];饲料广角;2018年07期
相关会议论文 前10条
1 安玉亭;解生彬;王立波;俞晓鹏;;粪肠球菌的生物学特性及其在养殖业中的应用[A];中国畜牧兽医学会动物微生态学分会第五届第十三次全国学术研讨会论文集[C];2018年
2 尹伟;王姗姗;董明;牛卫东;;饥饿期粪肠球菌生物膜形成及药物敏感性研究[A];全国第八次牙体牙髓病学学术会议论文汇编[C];2011年
3 杜田丰;马净植;熊紫兰;卢新培;曹颖光;;载药等离子体对粪肠球菌生物膜的作用[A];全国第八次牙体牙髓病学学术会议论文汇编[C];2011年
4 高原;徐佳蕾;黄定明;;物理切削对粪肠球菌在根管内的粘附与定植的影响[A];中华口腔医学会第十一次全国牙体牙髓病学学术大会论文汇编[C];2018年
5 王娟;刘宇;吴爱慧;周荣斌;;粪肠球菌肺炎1例[A];2010全国中西医结合危重病、急救医学学术会议论文汇编[C];2010年
6 张金秀;黄晓晶;卢冰铃;;粪肠球菌再感染根尖周炎致多脏器损伤[A];2014年第九次全国牙体牙髓病学学术会议论文汇编[C];2014年
7 李博;张欣;刘娜;刘彦威;刘利强;刘建钗;;粪肠球菌SYBR Green Ⅰ荧光定量PCR检测方法的建立与应用[A];中国畜牧兽医学会兽医病理学分会第二十四次学术研讨会、中国病理生理学会动物病理生理学专业委员会第二十三次学术研讨会、中国实验动物学会实验病理学专业委员会第三次学术研讨会、中国兽医病理学家第三次学术研讨会论文集[C];2018年
8 黄卓;范伟;范兵;;中等静磁场及其与碱性溶液协同对粪肠球菌的作用[A];第十三次全国老年口腔医学学术年会论文汇编[C];2018年
9 王雪梅;王兰军;;死胎产妇宫腔分泌物中检出粪肠球菌[A];首届中国临床微生物学大会(宁波会议)暨《医学参考报》微生物学与免疫学论坛论文汇编[C];2010年
10 牛天明;布日额;吴金花;锡林高娃;朝洛蒙;王雪吟;;牛乳源粪肠球菌的分离鉴定及溶血素基因cyla的克隆[A];中国畜牧兽医学会动物微生态学分会第五届第十三次全国学术研讨会论文集[C];2018年
相关重要报纸文章 前1条
1 本文由香港麦迪信医学出版有限公司供稿;游动性DNA——细菌耐药的幕后黑手[N];医药经济报;2003年
相关博士学位论文 前8条
1 程梦s
本文编号:2698541
本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/dongwuyixue/2698541.html