当前位置:主页 > 医学论文 > 畜牧兽医论文 >

京海黄鸡成肌分化关键mRNAs,IncRNAs和miRNAs筛选

发布时间:2020-06-24 15:16
【摘要】:畜禽的产肉潜力与其肌纤维数量密切相关,而动物胚胎发育后期和动物出生后,肌纤维数量基本已固定。胚胎肌肉发生主要依赖于成肌细胞的增殖和分化,其增殖和分化的能力很大程度上能够决定动物出生后的肌纤维数量。为了探讨家禽骨骼肌发育的受调控情况,特别是由成肌细胞向肌管分化的过程,本研究以鸡为研究对象,以鸡原代成肌细胞为工具,利用RNA-seq技术对鸡原代成肌细胞分化过程中的mRNA、lncRNA和miRNA进行鉴定和分析,主要结果如下:研究一:分离培养鸡原代成肌细胞并诱导分化,利用RNA-seq技术分析成肌分化第0、1、3和5天的lncRNAs和mRNAs表达情况,结合生物信息学分析方法,鉴定在成肌分化过程中表达的lncRNAs,预测其可能的生物学功能。同时筛选成肌分化过程中的差异表达lncRNAs和mRNAs,进行K-means表达聚类分析。1、共鉴定出2,484条lncRNAs,其中包括2,285条基因间区长链非编码RNAs和199条反义长链非编码RNAs。这些lncRNAs在染色体上的分布具有明显的偏好性,1号染色体上分布最多(367)。与鸡已知的蛋白编码基因相比,lncRNAs具有更短的转录本、ORF长度以及更少的外显子数。2、选取lncRNA上下游10kb范围内的蛋白编码基因为其cis作用的靶基因,结果在1,530个lncRNAs附近共发现2,041个蛋白编码基因。功能富集分析显示,鸡原代成肌细胞分化过程中的lncRNAs在多条骨骼肌发育相关的通路中显著富集,如肌动蛋白细胞骨架调节、胰岛素信号通路、MAPK信号通路、FoxO信号通路以及黏着斑。3、以皮尔森相关系数为筛选依据(r0.95或r-0.95,p0.05),选择与lncRNAs显著相关的蛋白编码基因为其trans作用的靶基因,结果发现990个lncRNAs与7,436个蛋白编码基因显著相关,78,202对为正相关关系,27,724对为负相关关系。功能富集分析显示,鸡原代成肌细胞分化过程中的lncRNAs主要被富集在细胞周期、黏着斑、p53信号通路以及细胞外基质受体互作等生物学通路,参与成肌细胞增殖、分化和融合过程。4、在鸡原代成肌细胞分化过程中共筛选到906个差异表达lncRNAs和4,422差异表达mRNAs。功能富集分析显示,差异表达基因主要富集在骨骼肌分化、有丝分裂、细胞迁移和粘附等相关的生物学进程,同时发现多个成肌分化相关通路,如ECM受体互作、黏着斑、DNA复制、细胞粘附分子、细胞周期、肌动蛋白细胞骨架调控、PPAR信号通路等。5、对差异表达基因表达数据进行K-means聚类分析,最终将4,422个差异表达基因聚为4个类别(命名为K1、K2、K3和K4)。功能富集分析表明,K1可能在成肌细胞增殖或由增殖过渡到分化过程发挥重要作用;K4可能与成肌细胞分化启动或初始分化密切相关;K2和K3则可能与成肌细胞迁移、粘附以及融合有关。研究二:基于cis靶基因预测,联合差异表达基因数据,构建lncRNA-mRNA互作调控网络,筛选参与鸡骨骼肌发育调控的潜在候选因子;以鸡原代成肌细胞分化过程中的差异表达lncRNAs和差异表达mRNAs为数据源进行WGCNA分析,鉴定成肌分化过程中的功能模块,筛选调控鸡骨骼肌分化的重要候选因子。1、构建差异表达lncRNAs及其共表达cis作用靶基因间的互作网络。该网络中lncRNAs主要被富集在肌动蛋白细胞骨架调节、ErbB信号通路和胰岛素信号通路,参与骨骼肌分化、有丝分裂、细胞迁移和粘附等相关的生物学进程。SIX2、PAK3、HACD1、SULF1、SOCS1、MFW2、SIK1、CFL2、AC7C1、TNNI2等以及与它们关联的lncRNAs可被视为参与调控鸡骨骼肌发育的重要候选分子。2、WGCNA分析鉴定到6个与有丝分裂、肌细胞分化、肌动蛋白细胞骨架动态调节、能量代谢、细胞迁移和粘附等GO分类密切相关的基因模块。模块中高连通性枢纽基因可能对骨骼肌发育具有潜在的重要作用,包括TRIM55、DES、FAM65B、ACTC1、TNNI2、FEN1、AIF1L、ALDBGALT0000002581、NEK6、FAR-1 等。研究三:利用RNA-seq技术获得成肌分化过程中miRNA的表达谱。结合生物信息学分析方法,鉴定在成肌分化过程中表达的miRNAs,预测其可能的生物学功能。同时,整合差异表达miRNAs和mRNAs表达数据,辅以多种功能性分析和互作网络构建软件进行miRNA-mRNA联合分析,筛选参与鸡骨骼肌发育调控的潜在候选因子。1、共鉴定出712个miRNAs成熟体,对应584个miRNA前体,属于123个miRNAs家族,此外还鉴定到224个新miRNAs。2、鸡原代成肌细胞中miRNA的表达量普遍较低,其中TPM在1-10的miRNAs数目占总miRNAs数量的85.32%以上,大于10,000的miRNAs仅占1.4%左右。3、每个文库表达丰度前15共19个miRNAs的靶标通路分析表明,介导靶向抑制参与鸡原代成肌细胞分化调控的功能性miRNAome可能很小且趋于高表达。4、对成肌细胞不同分化阶段的miRNA表达进行差异表达分析,共鉴定出298个DEMs。相邻阶段DEMs功能富集分析显示,DEMs在骨骼肌发育、有丝分裂、细胞迁移和粘附相关的通路显著富集。5、构建差异表达miRNAs及其差异表达靶基因间的互作调控网络,筛选到多个参与鸡骨骼肌发育调控的潜在候选因子,如miR-206、miR-133b、miR-204、miR-214、miR-7、miR-7b、miR-146b-5p、miR-222b-5p、miR-10a-5p、miR-203a、miR-10b-5p、miR-34a-5p、miR-218-5p、CDK6、AOX1、FSTL1、SESN1、TIMP2 等。
【学位授予单位】:扬州大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2018
【分类号】:S831

【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 穆尚强;孙爽;王宇;梅继文;;膝关节骨性关节炎患者关节液miRNAs表达变化及意义[J];山东医药;2016年48期

2 丁莹;雷小丽;孙旦;李玉琴;储矗;陈正荣;季伟;周卫芳;;肺炎支原体肺炎外周血miRNAs差异表达谱的筛选与验证[J];临床儿科杂志;2017年02期

3 王阁;毛必静;;miRNAs参与肝细胞肝癌发生机制的探索与临床应用的挑战[J];世界华人消化杂志;2016年33期

4 MIAO Xiang-yang;;Recent advances in understanding the role of miRNAs in exosomes and their therapeutic potential[J];Journal of Integrative Agriculture;2017年04期

5 孙海霞;张洪钦;刘波泉;;支气管哮喘患者血清相关miRNAs的检测及其意义[J];中国医药导报;2017年13期

6 徐坤;徐宝占;杨钟会;吴树亮;初明;;miRNAs在脊髓损伤中作用的研究进展[J];现代生物医学进展;2017年11期

7 黄振华;叶子;蒋鹏;肖孝勇;李茜;詹红;;miRNAs在急性心肌梗死诊断中的研究进展[J];岭南心血管病杂志;2017年03期

8 田艳;冼乐武;韦伊尔;;吉非替尼诱导前后肺癌干细胞miRNAs的表达差异[J];广东医学;2017年09期

9 杨倩;刘兰心;黄荷凤;;多囊卵巢综合征患者卵泡液外泌体的提取鉴定及其miRNAs的提取和检测[J];上海交通大学学报(医学版);2017年08期

10 郭江;高胜涛;权素玉;南雪梅;卜登攀;;miRNAs对热应激畜禽调控的分子机制[J];动物营养学报;2016年03期

相关会议论文 前10条

1 钱荷英;李刚;何庆玲;罗旭芳;赵国栋;徐安英;;蓖麻蚕核型多角体病毒的miRNAs生物信息学预测及初步验证[A];第十二届家(柞)蚕遗传育种暨良种繁育学术研讨会论文集(摘要汇编)[C];2016年

2 郭志云;;Systematic integrating experimental data in the construction of Myc-miRNAs regulatory networks[A];第八届全国医学生物化学与分子生物学第五届全国临床应用生物化学与分子生物学2013华东六省一市生物化学与分子生物学联合学术研讨会论文汇编[C];2013年

3 魏长平;李祥瑞;张云慧;朱勋;张方梅;刘怀;阎维巍;李亚萍;王健;程登发;;六种miRNAs在麦长管蚜不同发育时期的表达谱分析[A];植保科技创新与农业精准扶贫——中国植物保护学会2016年学术年会论文集[C];2016年

4 ;A potential role for Chlamydomonas miRNAs in response to environmental changes[A];中国遗传学会植物遗传和基因组学专业委员会2009年学术研讨会论文摘要汇编[C];2009年

5 ;Cell-free miRNAs may indicate diagnosis and docetaxel sensitivity of tumor cells in malignant effusions[A];2011医学科学前沿论坛第十二届全国肿瘤药理与化疗学术会议论文集[C];2011年

6 ;Cell-free miRNAs may indicate diagnosis and docetaxel sensitivity of tumor cells in malignant effusions[A];中华医学会肿瘤学分会第七届全国中青年肿瘤学术会议——中华医学会肿瘤学分会“中华肿瘤 明日之星”大型评选活动暨中青年委员全国遴选论文汇编[C];2011年

7 李兴;凌宏艳;胡弼;;MiRNAs与胰岛素抵抗[A];中南地区第八届生理学学术大会论文摘要汇编[C];2012年

8 ;miRNAs involved in Tau expression of BMSCs induced neurons[A];中国神经科学学会第九届全国学术会议暨第五次会员代表大会论文摘要集[C];2011年

9 Ping Xuan;Maozu Guo;Yangchao Huang;;MaturePred:Efficient Identification of MicroRNAs within Novel Plant Pre-miRNAs[A];第五届全国生物信息学与系统生物学学术大会论文集[C];2012年

10 Zhen-Dong Xiao;Li-Ting Diao;Jian-Hua Yang;Hui Xu;Mian-Bo Huang;Yong-Jin Deng;Hui Zhou;Liang-Hu Qu;;Systematical identification of cis-elements orchestrating the expressions of miRNAs in humans[A];生命的分子机器及其调控网络——2012年全国生物化学与分子生物学学术大会摘要集[C];2012年

相关重要报纸文章 前1条

1 记者 常丽君;除了XY,决定性别还有另一种关键基因[N];科技日报;2014年

相关博士学位论文 前10条

1 李婷婷;京海黄鸡成肌分化关键mRNAs,IncRNAs和miRNAs筛选[D];扬州大学;2018年

2 李小英;基于相似性网络的疾病miRNAs预测方法研究及应用[D];湖南大学;2018年

3 栗振义;紫花苜蓿对低磷胁迫的响应及相关miRNAs的功能分析[D];中国农业科学院;2018年

4 苗楠;性别差异表达miRNAs在鸡胚性腺发育早期的潜在功能研究[D];华中农业大学;2016年

5 陈毅鹏;酒精性肝病特异性miRNAs表达谱及下游调控基因研究[D];浙江大学;2014年

6 于鹏;miRNAs对骨髓间充质干细胞分化的影响[D];北京协和医学院;2013年

7 廖荣霞;造血干细胞发育相关miRNAs的筛选及其功能初步研究[D];第三军医大学;2007年

8 陈兆锋;胃癌相关miRNAs的筛选及其与胃癌发生发展的关系[D];兰州大学;2013年

9 张媛;结直肠癌中miRNAs表达谱的研究[D];延边大学;2012年

10 董小欢;miRNAs在叶酸缺乏诱导自噬中可能的调控机制研究[D];北京协和医学院;2014年

相关硕士学位论文 前10条

1 王凯;苹果miRNAs调控靶标基因参与寄主与苹果树腐烂病菌互作分析[D];西北农林科技大学;2018年

2 张颖;牛精子miRNAs对核移植胚胎发育的影响[D];西北农林科技大学;2018年

3 李金璐;Osa-miR535,Osa-miR160a等5个miRNAs调控稻瘟病抗性以及水稻农艺性状的初步研究[D];四川农业大学;2017年

4 王洪;小麦开花期穗部miRNAs及其靶基因的鉴定与分析[D];南京农业大学;2015年

5 王鹏俊;猪体内玉米miRNAs的检测及其潜在靶基因的预测和鉴定[D];四川农业大学;2017年

6 盛仁杰;基于微流控液滴的单细胞内多种miRNAs的定量检测及其用于相关疾病诊断的研究[D];山东师范大学;2018年

7 薛唯潇;非小细胞肺癌血清miR-1228-3p和miR-181a-5p的差异表达及其临床意义[D];山东大学;2018年

8 赵怀宁;桑椹花青素合成相关miRNAs的鉴定及其功能研究[D];山东农业大学;2018年

9 童延;六价铬暴露诱发DNA损伤反应相关miRNAs筛选及功能研究[D];浙江省医学科学院;2018年

10 曹雅倩;水稻miRNAs靶基因验证瞬时表达系统的构建及应用[D];中国农业科学院;2018年



本文编号:2728032

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/dongwuyixue/2728032.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户3d9dc***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com