let-7b过表达通过MAP3K1靶基因调节绵羊FGC的凋亡与增殖
发布时间:2021-09-05 19:25
MicroRNA(miRNA)在卵泡发育的每个阶段中都有差异表达。许多miRNA介导生殖内分泌功能,特别是卵母细胞成熟和卵泡形成过程,并通过其靶基因调节卵泡闭锁,从而调节卵母细胞凋亡。影响绵羊绵羊卵泡颗粒细胞(Follicle Granulosa Cells,FGC)的凋亡的因素众多,迄今为止,还不确定let-7家族是否通过MAP3K1介导FGC的凋亡。本研究旨在研究let-7b对FGC凋亡和发育作用及机理。收集原代绵羊FGC,分别用不同浓度胎牛血清(Fetal Bovine Serum,FBS)(0%、7%、10%、12%、15%、18%、20%),M199基础培养基和DMEM培养基体外培养绵羊FGC,用CCK-8试剂盒检测其对绵羊FGS增殖的影响,探究体外培养绵羊FGC的最适FBS浓度和最适基础培养基;再用CCK-8试剂盒检测探究不同浓度促卵泡激素(Follicle-Stimulating Hormone,FSH)(0、5、10、20、30、40 IU/mL)以及不同浓度褪黑素(Melatonin,MT)(0、5、10、20、30、40 ng/mL)对绵羊FGC体外增殖影响。用le...
【文章来源】:西北民族大学甘肃省
【文章页数】:64 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
原代绵羊FGC培养M199培养液、12%胎牛血清培养24h后,400×;FGC贴壁生长,贴壁伸展不均,细胞呈三角形或梭形,立体感强,,数量较少
西北民族大学生命科学与工程学院2020届硕士研究生学位论文32图2-2M199和DMED基础培养基以及不同浓度的血清对FGC体外培养的影响与FBS-0M199组相比,*P<0.05,与FBS-0M199组相比,**P<0.01;与FBS-0DMEM组相比,#P<0.05,与FBS-0DMEM组相比,##P<0.01;Figure2-2EffectsofM199andDMEDbasicmediumanddifferentconcentrationsofserumoninvitrocultureoffolliculargranulecellsComparedwithFBS-0M199group,*P<0.05,comparedwithFBS-0M199group,**P<0.01;ComparedwithFBS-0DMEMgroup,#P<0.05,comparedwithFBS-0DMEMgroup,##P<0.01;FSH对FGC体外培养的生存率的影响图2-3不同浓度FSH对FGC体外培养的影响Figure2-3EffectofdifferentconcentrationsofFSHoninvitrocultureoffolliculargranulecells对比培养液中含有不同浓度FSH以及不同时间对FGC的影响,24h后,随着培养液中FSH的浓度升高,FGC的增殖活性增大,并在FSH-4时增值达到最2.3
西北民族大学生命科学与工程学院2020届硕士研究生学位论文32图2-2M199和DMED基础培养基以及不同浓度的血清对FGC体外培养的影响与FBS-0M199组相比,*P<0.05,与FBS-0M199组相比,**P<0.01;与FBS-0DMEM组相比,#P<0.05,与FBS-0DMEM组相比,##P<0.01;Figure2-2EffectsofM199andDMEDbasicmediumanddifferentconcentrationsofserumoninvitrocultureoffolliculargranulecellsComparedwithFBS-0M199group,*P<0.05,comparedwithFBS-0M199group,**P<0.01;ComparedwithFBS-0DMEMgroup,#P<0.05,comparedwithFBS-0DMEMgroup,##P<0.01;FSH对FGC体外培养的生存率的影响图2-3不同浓度FSH对FGC体外培养的影响Figure2-3EffectofdifferentconcentrationsofFSHoninvitrocultureoffolliculargranulecells对比培养液中含有不同浓度FSH以及不同时间对FGC的影响,24h后,随着培养液中FSH的浓度升高,FGC的增殖活性增大,并在FSH-4时增值达到最2.3
【参考文献】:
期刊论文
[1]褪黑素对HT-2毒素诱导的牛卵巢颗粒细胞内质网应激与自噬的影响[J]. 杨方晓,李莲,赵若含,王根林. 南京农业大学学报. 2020(01)
[2]哺乳动物卵巢卵泡发育调控机制研究进展[J]. 张焱,张华. 生理学报. 2020(01)
[3]西藏绵羊颗粒细胞的体外培养[J]. 田孟芳,卢晓丽,程志鹏,任子利,孙磊,赵彦玲. 高原农业. 2019(05)
[4]卵泡发生与发育的调控[J]. 乔竞谊,徐轲,孙青原. 实用妇产科杂志. 2019(05)
[5]猪卵巢发育的组织学变化及卵泡闭锁规律研究[J]. 梁学超,蒋明,罗玉茹,张为民,卿素珠. 畜牧兽医学报. 2017(10)
[6]猪卵巢颗粒细胞分离培养及细胞生物学特性研究[J]. 闫益波,李文刚,焦福林,吴志娟,胡广英,周胜花,隋朝,岳磊,任毅菲. 山西农业科学. 2016(06)
[7]哺乳动物原始卵泡的形成和发育及影响因素[J]. 许蒙蒙,车龙,徐盛玉,吴德. 畜牧兽医学报. 2015(01)
[8]哺乳动物卵巢卵泡膜细胞功能的研究进展[J]. 何珲,姜冬梅,康波,马容. 畜牧兽医学报. 2013(09)
[9]颗粒细胞对卵泡发育的影响[J]. 金艳梅. 中国畜牧兽医. 2010(08)
[10]MicroRNA let-7与肺癌关系的研究进展[J]. 任为正,叶鸿飞,赵健,姜安丽. 中国肿瘤生物治疗杂志. 2009(04)
博士论文
[1]RBP-4通过miRNAs影响猪卵泡颗粒细胞增殖的研究[D]. 饶家辉.吉林大学 2019
[2]褪黑素在延缓昆明小鼠卵巢衰老中的作用研究[D]. 宋超.西北农林科技大学 2019
[3]褪黑素对猪卵泡发育与闭锁的影响研究[D]. 贺亚媚.西北农林科技大学 2017
[4]FSH调控猪卵泡颗粒细胞自噬的分子机制研究[D]. 高晖.中国农业大学 2016
[5]卵巢功能衰退的比较蛋白质组学及相关蛋白差异表达的研究[D]. 张利群.吉林大学 2014
[6]褪黑素对猪腔前卵泡体外发育的影响及机制研究[D]. 蒲勇.安徽农业大学 2014
[7]MicroRNAs在始基卵泡募集过程中的表达模式和调控机制的研究[D]. 杨书红.华中科技大学 2012
硕士论文
[1]E2与FSH对水牛卵泡颗粒细胞/内膜细胞增殖和凋亡的影响[D]. 文冬梅.广西大学 2019
[2]FRBI对卵巢及卵母细胞发育的作用和机理研究[D]. 赖露菊.西北民族大学 2019
[3]Wnt/β-catenin协同褪黑素、PI3K信号通路对猪卵巢颗粒细胞发育的影响[D]. 杨有福.西北农林科技大学 2018
[4]促卵泡刺激素通过调控颗粒细胞分泌干细胞因子促进卵泡发育成熟的研究[D]. 郑梦雪.宁夏医科大学 2017
[5]FSH及WNT信号通路对绵羊卵泡颗粒细胞功能的影响[D]. 赵妙妙.山西农业大学 2016
本文编号:3385942
【文章来源】:西北民族大学甘肃省
【文章页数】:64 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
原代绵羊FGC培养M199培养液、12%胎牛血清培养24h后,400×;FGC贴壁生长,贴壁伸展不均,细胞呈三角形或梭形,立体感强,,数量较少
西北民族大学生命科学与工程学院2020届硕士研究生学位论文32图2-2M199和DMED基础培养基以及不同浓度的血清对FGC体外培养的影响与FBS-0M199组相比,*P<0.05,与FBS-0M199组相比,**P<0.01;与FBS-0DMEM组相比,#P<0.05,与FBS-0DMEM组相比,##P<0.01;Figure2-2EffectsofM199andDMEDbasicmediumanddifferentconcentrationsofserumoninvitrocultureoffolliculargranulecellsComparedwithFBS-0M199group,*P<0.05,comparedwithFBS-0M199group,**P<0.01;ComparedwithFBS-0DMEMgroup,#P<0.05,comparedwithFBS-0DMEMgroup,##P<0.01;FSH对FGC体外培养的生存率的影响图2-3不同浓度FSH对FGC体外培养的影响Figure2-3EffectofdifferentconcentrationsofFSHoninvitrocultureoffolliculargranulecells对比培养液中含有不同浓度FSH以及不同时间对FGC的影响,24h后,随着培养液中FSH的浓度升高,FGC的增殖活性增大,并在FSH-4时增值达到最2.3
西北民族大学生命科学与工程学院2020届硕士研究生学位论文32图2-2M199和DMED基础培养基以及不同浓度的血清对FGC体外培养的影响与FBS-0M199组相比,*P<0.05,与FBS-0M199组相比,**P<0.01;与FBS-0DMEM组相比,#P<0.05,与FBS-0DMEM组相比,##P<0.01;Figure2-2EffectsofM199andDMEDbasicmediumanddifferentconcentrationsofserumoninvitrocultureoffolliculargranulecellsComparedwithFBS-0M199group,*P<0.05,comparedwithFBS-0M199group,**P<0.01;ComparedwithFBS-0DMEMgroup,#P<0.05,comparedwithFBS-0DMEMgroup,##P<0.01;FSH对FGC体外培养的生存率的影响图2-3不同浓度FSH对FGC体外培养的影响Figure2-3EffectofdifferentconcentrationsofFSHoninvitrocultureoffolliculargranulecells对比培养液中含有不同浓度FSH以及不同时间对FGC的影响,24h后,随着培养液中FSH的浓度升高,FGC的增殖活性增大,并在FSH-4时增值达到最2.3
【参考文献】:
期刊论文
[1]褪黑素对HT-2毒素诱导的牛卵巢颗粒细胞内质网应激与自噬的影响[J]. 杨方晓,李莲,赵若含,王根林. 南京农业大学学报. 2020(01)
[2]哺乳动物卵巢卵泡发育调控机制研究进展[J]. 张焱,张华. 生理学报. 2020(01)
[3]西藏绵羊颗粒细胞的体外培养[J]. 田孟芳,卢晓丽,程志鹏,任子利,孙磊,赵彦玲. 高原农业. 2019(05)
[4]卵泡发生与发育的调控[J]. 乔竞谊,徐轲,孙青原. 实用妇产科杂志. 2019(05)
[5]猪卵巢发育的组织学变化及卵泡闭锁规律研究[J]. 梁学超,蒋明,罗玉茹,张为民,卿素珠. 畜牧兽医学报. 2017(10)
[6]猪卵巢颗粒细胞分离培养及细胞生物学特性研究[J]. 闫益波,李文刚,焦福林,吴志娟,胡广英,周胜花,隋朝,岳磊,任毅菲. 山西农业科学. 2016(06)
[7]哺乳动物原始卵泡的形成和发育及影响因素[J]. 许蒙蒙,车龙,徐盛玉,吴德. 畜牧兽医学报. 2015(01)
[8]哺乳动物卵巢卵泡膜细胞功能的研究进展[J]. 何珲,姜冬梅,康波,马容. 畜牧兽医学报. 2013(09)
[9]颗粒细胞对卵泡发育的影响[J]. 金艳梅. 中国畜牧兽医. 2010(08)
[10]MicroRNA let-7与肺癌关系的研究进展[J]. 任为正,叶鸿飞,赵健,姜安丽. 中国肿瘤生物治疗杂志. 2009(04)
博士论文
[1]RBP-4通过miRNAs影响猪卵泡颗粒细胞增殖的研究[D]. 饶家辉.吉林大学 2019
[2]褪黑素在延缓昆明小鼠卵巢衰老中的作用研究[D]. 宋超.西北农林科技大学 2019
[3]褪黑素对猪卵泡发育与闭锁的影响研究[D]. 贺亚媚.西北农林科技大学 2017
[4]FSH调控猪卵泡颗粒细胞自噬的分子机制研究[D]. 高晖.中国农业大学 2016
[5]卵巢功能衰退的比较蛋白质组学及相关蛋白差异表达的研究[D]. 张利群.吉林大学 2014
[6]褪黑素对猪腔前卵泡体外发育的影响及机制研究[D]. 蒲勇.安徽农业大学 2014
[7]MicroRNAs在始基卵泡募集过程中的表达模式和调控机制的研究[D]. 杨书红.华中科技大学 2012
硕士论文
[1]E2与FSH对水牛卵泡颗粒细胞/内膜细胞增殖和凋亡的影响[D]. 文冬梅.广西大学 2019
[2]FRBI对卵巢及卵母细胞发育的作用和机理研究[D]. 赖露菊.西北民族大学 2019
[3]Wnt/β-catenin协同褪黑素、PI3K信号通路对猪卵巢颗粒细胞发育的影响[D]. 杨有福.西北农林科技大学 2018
[4]促卵泡刺激素通过调控颗粒细胞分泌干细胞因子促进卵泡发育成熟的研究[D]. 郑梦雪.宁夏医科大学 2017
[5]FSH及WNT信号通路对绵羊卵泡颗粒细胞功能的影响[D]. 赵妙妙.山西农业大学 2016
本文编号:3385942
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