致病性E.coli O1对犊牛肠黏膜免疫屏障及肠道菌群的影响

发布时间：2021-10-30 21:45

　　本试验以致病性E.coli O1诱发犊牛腹泻为研究对象,研究E.coli O1诱发犊牛腹泻对肠道黏膜免疫屏障及肠道菌群的影响,为犊牛健康养殖及预防致病性大肠杆菌性腹泻病提供参考依据。试验一:选取56头刚出生体重在40～43kg之间的公犊牛,将其随机分为试验组和对照组,每组28头。对照组未接菌,采用常规哺乳,试验组在相同哺乳的基础上经口服100 mL活菌数为2.5×1011 CFU/mL的致病性E.coli O1菌悬液建立动物腹泻模型,整个试验期为10 d。采用ELISA法检测犊牛血清和组织中肠黏膜免疫屏障相关的指标。结果表明,致病性E.coli O1诱发犊牛腹泻能够显著提高血清DAO和ET水平（P＜0.05）,显著降低犊牛肠道Occludin、Claudin-1和ZO-1水平（P＜0.05）;显著提高犊牛血清促炎细胞因子TNF-α、IL-6、IL-1β、IL-1和IL-2水平（P＜0.05）,显著降低抗炎免疫因子IL-10、IL-4和TGF-β水平（P＜0.05）;显著降低IgA和IgM水平（P＜0.05）,而且有降低IgG的趋势,但差异不显著（P＞0.05）;显著降低ITF水平（P＜... 

【文章来源】：内蒙古农业大学内蒙古自治区

【文章页数】：66 页

【学位级别】：硕士

【部分图文】：

图１肠道屏陣组成（参照Ｎａｔｉｖｉｄａｄ等⑴】）??Ｆｉｇ．ｌ?Ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ?ｂａｒｒｉｅｒ?ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ??

４Ｓｈ?７２ｈ?Ｓｄ?ｍ?１２ｈ?２４ｈ?８６ｈ?ｍ?７２ｈ?６ｄ?１０ｄ??＿?Ｍ?时阚??７８〇ｉ?？对照组??４〇１?＋对照组１８１?令对照组?普试验组??＾?＊试＿?，?＊?ｓｎ，?＾?Ｉ??２５－Ｌ，—？１１—？，—１一＂Ｉ一－ｒ－?７６＿Ｌ１１￣Ｉ一￣Ｉ￣Ｉ一￣Ｉ一－ｒ－?１２Ｈ?２４ｈ?３￥ｈ?４８ｈ?７２ｈ?５ｄ?１０ｄ??伽?２４ｈ?拗?４８ｈ?７２ｈ?Ｗ?１０ｄ?１２ｈ?２４ｈ?Ｍｈ?４８ｈ?７２ｈ?５ｄ?１０ｄ?时问??ｍ?时Ｎ??图４血清细胞因子随时间变化趋势??Ｆｉｇ．４?Ｃｈａｎｇｅｓ?ｉｎ?ｓｅｒｕｍ?ｃｙｔｏｋｉｎｅｓ?ｏｖｅｒ?ｔｉｍｅ??注：０．０１＜尸￥０．０５标记为＊，０．００１＜尸￥０．０１标记为＊＊，尸￥０．００１标记为＿，代表显著性。??由表５和图５可知，试验组ＩＬ－１和ＩＬ－２浓度在整个试验期每个采样时间点与对??照组相比均具有统计学意义（户＜０．０５）。试验组ＩＬ－１浓度先降低后升高，与对照组??变化趋势相似，在同一时间点均显著高于对照组（Ｐ＜〇．〇５）。试验组和对照组ＩＬ－２??

照组?１４７．４２±３．２６ｂ?２９８．６２±２０．６０ｂ??试验组?１７５．７４±１３．６１ａ?３５１．７０±１５．６３ａ??注．？同一时间，与对照组比较，数据Ｗ标小写字母不同表示差异显著（ＰＣＯ．ＯＳ）；小写字母相同表示差异不显著（Ｐ??＞０．０５）。??４０Ｄ?？对照ｍ??２〇〇ｉ?？对照组＊１?＾夺试验绀??ｉ；；；；?ｉ??１２ｈ?２４ｈ?３Ｅｈ?４８ｈ?７２ｈ?６ｄ?１０ｄ?１２ｈ?２４ｈ?Ｊ？ｈ?４＊ｈ?７Ｊｈ?６ｄ?１０ｄ??Ｗ问?ＷＭ??图５血清细胞因子随时间变化趋势??Ｆｉｇ．５?Ｃｈａｎｇｅｓ?ｉｎ?ｓｅｒｕｍ?ｃｙｔｏｋｉｎｅｓ?ｏｖｅｒ?ｔｉｍｅ??注：０．０１?＜?Ｐ?＜?０．０５标记为＊，０．００１?＜户彡０．０１标记为＊＊，户彡０．００１标记为林＊，代表显著性。??２．３Ａ２致病性￡．ｃｏ／／?０１对犊牛回肠组织细胞因子的影响??由表６和图６可知，试验组ＩＬ－４浓度逐渐降低，在整个试验期每个采样时间点??与对照组相比均具有统计学意义（Ｐ＜〇．〇５）。试验组ＩＬ－６浓度随时间变化逐渐升高，??在同一时间均显著高于对照组（Ｐ＜〇．〇５）。试验组ＩＬ－１０浓度在同一个时间点均显著??低于对照组（ＰＣ０．０５），随时间变化呈现逐渐升高的趋势。??


本文编号：3467482