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猪繁殖与呼吸综合征病毒GP5蛋白的原核表达及多克隆抗体制备

发布时间:2021-11-08 09:44
  为体外表达猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)糖基化囊膜蛋白GP5,以及制备其多克隆抗体,以PRRSV PC疫苗株RNA为模板,应用RT-PCR扩增GP5基因,并克隆至原核表达载体pET-32a(+),构建重组表达载体pET-32a-GP5。经过酶切和测序鉴定后,将阳性重组质粒转化到大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞中,加入IPTG低温诱导表达。使用亲和层析法纯化PRRSV GP5蛋白。然后将纯化的蛋白免疫北京大耳白兔制备多克隆抗体,并进行酶联免疫吸附试验(ELISA)和间接免疫荧光分析(IFA)。结果显示,表达的PRRSV GP5原核蛋白以可溶性和包涵体两种形式存在,相对分子质量大约30 kDa;制备的GP5蛋白多克隆抗体ELISA效价可达1:64 000;IFA检测显示,制备的多克隆抗体能够识别PRRSV。重组PRRSV GP5蛋白及其多克隆抗体的成功制备为PRRSV血清学检测方法的建立提供了良好的生物学材料。 

【文章来源】:中国动物检疫. 2020,37(10)

【文章页数】:6 页

【部分图文】:

猪繁殖与呼吸综合征病毒GP5蛋白的原核表达及多克隆抗体制备


GP5基因PCR扩增结果

电泳图,电泳,质粒,蛋白


p ET-32a-GP5重组质粒双酶切电泳检测结果

考马斯亮蓝,蛋白,菌体


利用镍柱,对菌体裂解产物上清中的GP5蛋白进行纯化。SDS-PAGE电泳、考马斯亮蓝染色结果显示,含重组表达质粒p ET-32a-GP5的菌体在IPTG的诱导下表达出了一条约30 k Da的蛋白条带(图3),通过纯化、浓缩,获得了GP5蛋白。经BCA试剂盒测定该蛋白的终浓度为223.84μg/m L。2.3 GP5蛋白Western Blot检测

【参考文献】:
期刊论文
[1]猪繁殖与呼吸综合征病毒核衣壳蛋白的原核可溶性表达和间接ELISA抗体检测方法的初步建立[J]. 王俊,代军飞,马炳,丁耀忠,欧云文,刘永生,赵乐辉,张永光,张杰.  中国兽医科学. 2018(04)
[2]猪繁殖与呼吸综合征病毒GP5/M蛋白可溶性表达及免疫原性分析[J]. 郭玉堃,郭婉莹,明胜利,郭豫杰,杨国宇.  中国兽医学报. 2018(04)
[3]猪繁殖与呼吸综合征病毒GP5a蛋白在大肠埃希菌中的表达[J]. 徐彦召,王青,王秋霞,杭柏林,孙亚伟,胡建和.  中国兽医学报. 2016(03)
[4]PRRSV GP5抗原表位的串联表达及生物学活性鉴定[J]. 陈如敬,吴学敏,车勇良,王隆柏,刘玉涛,严山,魏宏,周伦江.  中国兽医学报. 2014(06)
[5]施马伦贝格病毒核衣壳蛋白的原核表达、纯化及多克隆抗体的制备[J]. 张永宁,吴绍强,吕继洲,冯春燕,王彩霞,袁向芬,邓俊花,林祥梅,Wernike Kerstin.  畜牧兽医学报. 2013(10)
[6]猪繁殖与呼吸综合征病毒GP5蛋白分段表达及其生物学功能的鉴定[J]. 刘岳,肖一红,崔然,刘宁宁,邱洪凯,周恩民.  中国预防兽医学报. 2011(04)
[7]从疑似PRRS流产胎儿分离PRRSV的研究[J]. 郭宝清,陈章水,刘文兴,崔益洙.  中国畜禽传染病. 1996(02)

硕士论文
[1]两株猪繁殖与呼吸综合征病毒弱毒全基因组序列比较分析[D]. 王业华.内蒙古农业大学 2016
[2]PRRSV GP5蛋白基因疫苗的构建及鉴定和三种分子佐剂的制备[D]. 姜丹丹.山东农业大学 2016
[3]Marc-145细胞内GP5表达对猪繁殖与呼吸综合征病毒感染的影响[D]. 张茂东.西北农林科技大学 2015
[4]基于母猪PRRS抗体水平确定仔猪疫苗首免日龄的研究[D]. 梁百里.湖南农业大学 2014
[5]PRRSV GP5基因亚克隆、原核表达及ELISA抗体检测方法的建立[D]. 李建辉.河北农业大学 2012
[6]PRRSV CH-1a株致弱过程中的遗传变异分析及CH-1R株全长cDNA分子克隆的构建[D]. 石文达.东北农业大学 2008



本文编号:3483487

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