VEGF、L-蛋氨酸对绒山羊次级毛囊外根鞘细胞增殖和分化的影响
本文关键词:VEGF、L-蛋氨酸对绒山羊次级毛囊外根鞘细胞增殖和分化的影响,由笔耕文化传播整理发布。
【摘要】:本研究旨在研究陕北白绒山羊毛囊外根鞘细胞的体外培养,并通过在培养液中分别添加VEGF和L-蛋氨酸,检测它们对次级毛囊外根鞘细胞的增殖、分化的影响,以及VEGF对次级毛囊外根鞘细胞中FGF5 mRNA表达量的影响,来阐述外根鞘细胞在次级毛囊周期中的作用,为进一步研究绒山羊次级毛囊发育机制提供理论支持。采集陕北白绒山羊体侧部皮肤,通过剪碎、消化、剥离等方法分离初、次级毛囊,再将分离出的毛囊消化得到外根鞘细胞,并置于在37℃、5%CO2饱和湿度条件下培养;选用第5代次级毛囊外根鞘细胞,分别添加不同浓度血管内皮生长因子(ascular endothelial growth factor,VEGF)和L-蛋氨酸,分别处理24 h、48 h,噻唑兰比色法(Methyl thiazolte trazoliu,MTT)检测VEGF和L-蛋氨酸对细胞活力的影响,EdU核酸标记技术检测VEGF和L-蛋氨酸对细胞增殖的影响;根据GenBank公布的山羊PCNA、K10和FGF5基因cDNA序列设计引物,通过实时荧光定量PCR(Real-time Quantitative PCR,q-PCR)技术检测上述三个基因在次级毛囊外根鞘细胞中的表达情况。主要研究结果如下:1.成功培养出了陕北白绒山羊初、次级毛囊外根鞘细胞,并利用细胞免疫荧光的方法检测到初级外根鞘细胞的标记基因CK17,以及次级毛囊外根鞘细胞的标记基因CK17和CK15,免疫荧光染色结果均呈阳性;对初、次级毛囊外根鞘细胞分别做了生长曲线,均为“S”型,初、次级毛囊外根鞘细胞在形态和体积上存在一定差异。2.在培养液中添加VEGF可以促进绒山羊次级毛囊外根鞘细胞的增殖,抑制细胞的分化,抑制细胞中FGF5基因的表达。当VEGF处理浓度达到100 ng/mL时,细胞活力(48 h)、增殖细胞数以及PCNA mRNA的表达量均达到最高,且均极显著高于对照组(P0.01),细胞活力(24 h)显著高于对照组(P0.05);VEGF处理24 h时的细胞活力和PCNA mRNA表达量的上升趋势高于48 h。随着浓度的增加,VEGF对细胞分化的抑制作用在增强,当浓度为100 ng/mL时,K10 mRNA的表达量最低;随着时间的增加,VEGF对细胞分化的抑制作用在增强,100 ng/mL组处理48 h时的表达量显著低于处理24 h(P0.05)。随着浓度的增加,FGF5 mRNA在100 ng/mL组时表达量最低,并推测VEGF可以通过抑制FGF5的表达促进毛囊生长。3.在培养液中添加L-蛋氨酸抑制绒山羊次级毛囊外根鞘细胞的增殖和分化。处理24 h时,随着浓度的增殖,L-蛋氨酸对细胞增殖的抑制作用在增强,120μg/mL时抑制作用最强,但无显著差异;处理48 h时,随着浓度的增加,L-蛋氨酸对细胞增殖的抑制作用先上升后下降,100μg/mL时抑制作用最为显著,极显著高于对照组(P0.01),而80μg/mL时PCNA mRNA的表达量最低,无显著差异;48 h各组的次级毛囊外根鞘细胞的细胞活力均低于24 h。处理24 h时,随着浓度的增加,K10 mRNA的表达量也呈下降趋势,120μg/mL组表达量最低,无显著差异;处理48 h时,K10 mRNA的表达量也先下降后上升,80μg/mL组表达量最低,无显著差异;过高浓度的L-蛋氨酸(120μg/mL)对次级毛囊外根鞘细胞增殖和分化的抑制效果均有所减弱。综合以上试验结果,表明首次成功的培养出了陕北白绒山羊初、次级毛囊外根鞘细胞;VEGF能够促进次级毛囊外根鞘细胞的增殖,抑制细胞的分化,且抑制次级毛囊外根鞘细胞中FGF5基因的表达;L-蛋氨酸抑制对次级毛囊外根鞘细胞的增殖和分化。
【关键词】:陕北白绒山羊 次级毛囊 外根鞘细胞 VEGF L-蛋氨酸
【学位授予单位】:西北农林科技大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2016
【分类号】:S827
【目录】:
- 摘要6-8
- ABSTRACT8-12
- 第一章 毛囊发育研究进展12-22
- 1.1 毛囊的基本结构12-14
- 1.2 毛囊的发育及调控14-16
- 1.3 毛囊的周期及相关分子调控16-18
- 1.4 VEGF在毛囊中作用的研究进展18-19
- 1.5 L-蛋氨酸对毛囊发育的影响19-20
- 1.6 本研究的目的和意义20-22
- 第二章 绒山羊毛囊外根鞘细胞的体外培养22-29
- 2.1 材料与方法22-24
- 2.1.1 材料22-23
- 2.1.2 试验方法23-24
- 2.2 结果与分析24-27
- 2.2.1 绒山羊毛囊外根鞘细胞的体外培养24-25
- 2.2.2 初级毛囊和次级毛囊外根鞘细胞的鉴定25-26
- 2.2.3 初级毛囊和次级毛囊外根鞘细胞生长曲线26-27
- 2.3 讨论27-28
- 2.4 小结28-29
- 第三章 VEGF对次级毛囊外根鞘细胞增殖和分化的影响29-37
- 3.1 材料与方法29-31
- 3.1.1 材料29
- 3.1.2 试验方法29-31
- 3.2 结果分析31-34
- 3.2.1 MTT法检测次级毛囊外根鞘细胞的增殖31
- 3.2.2 EdU检测次级毛囊外根鞘细胞的增殖31-32
- 3.2.3 PCNA、K10基因在次级毛囊外根鞘细胞中的表达32-33
- 3.2.4 FGF5基因在次级毛囊外根鞘细胞中的表达33-34
- 3.3 讨论34-35
- 3.4 小结35-37
- 第四章 L-蛋氨酸对次级毛囊外根鞘细胞增殖和分化的影响37-43
- 4.1 材料与方法37-38
- 4.1.1 材料37
- 4.1.2 试验方法37-38
- 4.2 结果分析38-41
- 4.2.1 MTT法检测次级毛囊外根鞘细胞的增殖38-39
- 4.2.2 EdU检测次级毛囊外根鞘细胞的增殖39-40
- 4.2.3 PCNA、K10基因在次级毛囊外根鞘细胞中的表达40-41
- 4.3 讨论41-42
- 4.4 小结42-43
- 第五章 结论43-44
- 5.1 结论43
- 5.2 创新点43
- 5.3 展望43-44
- 参考文献44-50
- 附录50-53
- 致谢53-54
- 作者简介54
【相似文献】
中国期刊全文数据库 前10条
1 吴瑜瑜;岳耀敬;郭婷婷;王天翔;郭健;李桂英;韩吉龙;杨敏;刘建斌;孙晓萍;李范文;何玉琴;杨博辉;;中国超细毛羊(甘肃型)胎儿皮肤毛囊发育及其形态结构[J];中国农业科学;2013年09期
2 李莹;刘正中;葛铭;;中草药对小鼠毛囊发育的影响[J];中兽医医药杂志;2014年01期
3 殷金凤;倪蓉;王庆增;孙伟;丁家桐;张有法;陈玲;吴文忠;周洪;;湖羊BMP7基因遗传多态、表达及与羔皮毛囊性状的关联[J];中国农业科学;2014年09期
4 张若竹;李娜;郁枫;;内蒙古绒山羊次级毛囊及其毛囊群结构的形态发生规律研究[J];家畜生态学报;2013年09期
5 李玉荣;范文斌;李长青;尹俊;张燕军;李金泉;;内蒙古绒山羊次级毛囊组织形态周期性变化研究[J];中国农业科学;2008年11期
6 李玉荣;范文斌;李长青;尹俊;张燕军;李金泉;;内蒙古绒山羊次级毛囊组织形态周期性变化研究[J];畜牧与饲料科学;2010年Z1期
7 王若军;山羊绒增产技术研究现状[J];草食家畜;1993年04期
8 李瑶;孙远;鲍忠省;王丽君;刘璐璐;高光;吴伟;;Wnt5a基因在鹅皮肤中的定量定位表达特性[J];吉林农业大学学报;2014年04期
9 贺延玉;罗玉柱;程李香;王继卿;刘秀;;河西绒山羊次级毛囊超微结构的周期性变化[J];中国农业科学;2012年13期
10 席海燕;周欢敏;郑琰;;绒山羊生长期次级毛囊cDNA消减文库的构建及其序列分析[J];中国农业科学;2009年10期
中国博士学位论文全文数据库 前2条
1 席海燕;绒山羊皮肤干细胞定位、迁移及次级毛囊生长期差异表达基因文库的构建与筛选[D];内蒙古农业大学;2009年
2 袁超;绒山羊次级毛囊周期性变化相关microRNA的鉴定及miR-125b在毛乳头细胞中的功能研究[D];西北农林科技大学;2014年
中国硕士学位论文全文数据库 前8条
1 赵帅;细毛羊次级毛囊形态发生诱导期转录组差异表达分析[D];甘肃农业大学;2015年
2 刘善博;细毛羊次级毛囊形态发生诱导期差异表达LncRNA靶基因的鉴定与功能分析[D];甘肃农业大学;2016年
3 张婧婧;VEGF、L-蛋氨酸对绒山羊次级毛囊外根鞘细胞增殖和分化的影响[D];西北农林科技大学;2016年
4 张若竹;绒山羊胚胎次级毛囊的形态发生规律和毛囊群的结构特点[D];西北农林科技大学;2013年
5 李娜;成年绒山羊次级毛囊生长与周期的季节性调控特点研究[D];西北农林科技大学;2013年
6 江玮;绒山羊皮肤毛囊发育不同时期初级、次级毛囊比较转录组学研究[D];内蒙古农业大学;2015年
7 舒国涛;辽宁绒山羊次级毛囊年周期变化规律及其相关生物钟基因研究[D];中国农业科学院;2014年
8 岳静;不同年龄牦牛皮肤的组织结构观察[D];甘肃农业大学;2013年
本文关键词:VEGF、L-蛋氨酸对绒山羊次级毛囊外根鞘细胞增殖和分化的影响,,由笔耕文化传播整理发布。
本文编号:383200
本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/dongwuyixue/383200.html