硒对绵羊精原干细胞体外增殖与凋亡的影响
本文关键词:硒对绵羊精原干细胞体外增殖与凋亡的影响,,由笔耕文化传播整理发布。
【摘要】:本研究通过在绵羊精原干细胞(Spermatogonial Stem Cells, SSCs)培养体系中添加不同浓度的硒,一方面为建立绵羊SSCs体外培养体系提供理论依据,另一方面探究硒对绵羊SSCs体外增殖与凋亡的影响,以期为体外研究硒对精子发生过程的影响奠定基础。选取4-6月龄晋中当地绵羊作为试验对象,采用两步酶消化法并利用Percoll密度梯度分离和差异贴壁相结合的方法对绵羊SSCs进行纯化。试验共分5个组,分别向培养体系中添加不同浓度硒(0、2、4、8、16pmol/L),每个浓度设置5个重复,每隔48 h换液。绵羊SSCs接种到0.2%明胶预处理的24孔板和96孔板中培养。培养96 h,采用PLZF鉴定SSCs,以确定SSCs是否处于未分化状态;测定SSCs细胞活力、凋亡情况以及不同时间段不同硒浓度下SSCs内超氧自由基(ROS)水平变化情况;采用qRT-PCR和Western blotting技术分别检测细胞周期基因(CyclinB1、CDK1、p21、p27)和凋亡相关基因(p53、Bax、 Bcl-2、Caspase3/8) mRNA和蛋白的表达量。其试验结果及分析如下:(1)经鉴定,绵羊SSCs主要位于19%-35% Percoll梯度层中,采用差异贴壁法对其进一步纯化,SSCs纯度可达80%。(2)在绵羊SSCs的培养体系中添加不同浓度的硒,研究硒对绵羊SSCs生长状况的影响。培养96 h,用PLZF对其进行鉴定,发现大多数SSCs处于未分化状态;在不同硒处理组中SCCs均有不同程度的葡萄样增殖;硒浓度为2μmol/L时,细胞活率、增殖率显著高于其他处理组(P0.05):在硒处理组中,SSCs的细胞活率和增殖率随着硒浓度的升高而降低,凋亡率随着硒浓度的升高而增大。(3)研究硒对绵羊SSCs内ROS水平的影响。通过测定不同时间段(48 h、96 h)不同处理组SSCs内ROS变化情况,结果发现:在不同时间段,硒浓度为2μmol/L时,ROS水平最低,硒浓度16μmol/L时,ROS水平最高;在同一时间段不同硒处理组中,ROS水平随着硒浓度的升高而升高;在不同时间段同一硒浓度中,随着时间的延长,ROS水平逐渐升高。(4)进一步从分子水平上探究硒对绵羊SSCs体外增殖与凋亡的影响。经qRT-RCR和Western blotting检测分析,结果发现:在硒处理组中,CyclinB1、CDK1、Bcl-2 mRNA表达量随着硒浓度的升高而升高,而p53、p21、p27和Bax、Caspase3/8的mRNA表达量随着浓度的升高而降低。当硒浓度为2μmol/L时,CyclinB1和Bcl-2 mRNA表达量显著高于其他组(P0.05),p53、Bax和Caspase3/8 mRNA表达量显著低于其它硒处理组(P0.05),但CDK1、p21和p27 mRNA表达量与4μmol/L组差异不显著(P0.05);细胞周期关键蛋白(P53、P21、P27、CDK1、Bax)的表达趋势和mRNA表达量基本一致。在绵羊SSCs体外培养体系中添加适宜浓度的硒能够促进SSCs的增殖,相反,过量的硒则会抑制SSCs增殖或者促进凋亡,且本研究得出硒较适宜的添加量为2μmol/L;硒可能是通过改变绵羊SSCs内ROS水平和调节细胞周期和凋亡相关的关键调节分子的表达影响绵羊SSCs体外增殖与凋亡。
【关键词】:硒 精原干细胞 增殖 凋亡 绵羊
【学位授予单位】:山西农业大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2016
【分类号】:S826.5
【目录】:
- 摘要8-10
- 前言10-11
- 文献综述11-22
- 1 精原干细胞与精子发生11-12
- 1.1 精原干细胞概念及其来源11
- 1.2 精子发生11-12
- 2 精原干细胞的生物学特性12-15
- 2.1 精原干细胞形态及其在曲精细管中的分布12-13
- 2.2 精原干细胞的凋亡13-14
- 2.3 精原干细胞表面分子标记14-15
- 3 精原干细胞的分离纯化与体外培养影响因素15-19
- 3.1 精原干细胞的分离纯化15-17
- 3.1.1 精原干细胞的分离方法16
- 3.1.2 精原干细胞的纯化方法16-17
- 3.2 精原干细胞体外培养的影响因素17-19
- 3.2.1 温度18
- 3.2.2 基础培养基18
- 3.2.3 饲养层18-19
- 3.2.4 清19
- 3.2.5 生长因子19
- 4 硒对精子发生的作用19-21
- 4.1 微量元素硒的简介19-20
- 4.2 硒的抗氧化作用20
- 4.3 硒与精子发生20-21
- 5 本研究意义21-22
- 材料与方法22-32
- 1 试验材料22-24
- 1.1 试验动物22
- 1.2 主要试剂22
- 1.3 溶液配置22-23
- 1.4 主要仪器设备23-24
- 2 试验方法24-30
- 2.1 样品采集24
- 2.2 绵羊睾丸切片制作24
- 2.3 H-E染色24
- 2.4 免疫荧光24-25
- 2.5 绵羊精原干细胞的分离25
- 2.6 绵羊精原干细胞的纯化25
- 2.7 绵羊精原干细胞纯度的计算25-26
- 2.8 绵羊精原干细胞计数26
- 2.9 绵羊精原干细胞的培养26
- 2.10 培养96h绵羊精原干细胞的鉴定26-27
- 2.11 绵羊精原干细胞细胞增殖的检测27
- 2.12 氧自由基(ROS)检测27
- 2.13 绵羊精原干细胞的收集27
- 2.14 绵羊精原干细胞活率、凋亡率检测27
- 2.15 绵羊精原干细胞凋亡染色27-28
- 2.16 细胞周期和细胞凋亡关键基因mRNA水平的检测28-30
- 2.16.1 引物设计28
- 2.16.2 精原干细胞总RNA提取28-29
- 2.16.3 总RNA质量的鉴定29
- 2.16.4 cDNA的合成29
- 2.16.5 qRT-PCR29-30
- 2.17 细胞周期和凋亡关键蛋白检测30
- 3 数据处理与统计分析30-32
- 结果与分析32-48
- 1 绵羊睾丸组织形态观察及PLZF染色效果32
- 2 绵羊精原干细胞的分离32-34
- 3 差异贴壁纯化前后绵羊精原干细胞纯度的比较34
- 4 硒对绵羊精原干细胞体外生长的影响34-35
- 5 培养96h后绵羊精原干细胞PLZF鉴定结果35-37
- 6 硒对绵羊精原干细胞细胞活力、凋亡的影响37-38
- 7 硒对绵羊精原干细胞增殖的影响38-39
- 8 硒对氧自由基(ROS)水平的影响39-40
- 9 不同硒浓度下绵羊精原干细胞凋亡染色结果40-41
- 10 硒对绵羊精原干细胞周期和凋亡相关基因表达的影响41-46
- 10.1 内参基因18S和细胞周期及凋亡基因的扩增曲线及熔解曲线41-43
- 10.2 不同处理组绵羊精原干细胞内P21、P27、CyclinB1、CDK1 mRNA的表达差异43-45
- 10.3 不同处理组绵羊精原干细胞内P53、Bax、Bcl-2、Caspase3/8 mRNA的表达差异45-46
- 11 硒对细胞周期和凋亡关键蛋白表达水平的影响46-48
- 讨论48-52
- 结论52-53
- 参考文献53-60
- 附录 在读期间研究成果及获奖情况60-62
- Abstract62-64
- 致谢64
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