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猪带绦虫HSP70-4真核表达及其免疫佐剂效应研究

发布时间:2017-08-15 05:13

  本文关键词:猪带绦虫HSP70-4真核表达及其免疫佐剂效应研究


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【摘要】:猪囊尾蚴病是猪带绦虫的幼虫—囊尾蚴所引起的一种重要的人畜共患寄生虫病,被世界卫生组织列为17种最易被忽略的热带病之一。该病呈世界性分布,不仅给养殖业造成了巨大的损失,同时还威胁着人类的身体健康。虽然广谱抗蠕虫药吡喹酮、丙硫咪唑对猪囊尾蚴病有一定的治疗效果,但其副作用严重,长期使用还会产生耐药性。因此,疫苗的研究显得尤为重要。猪带绦虫六钩蚴TSOL18重组蛋白作为主要的候选抗原之一,具有较好的免疫保护力,但稳定性较差,分子量小(仅为16ku),对其免疫效果造成了一定影响。热休克蛋白70(Heat shock Protein70,HSP70)是一类在结构和功能上高度保守的蛋白,具有分子伴侣、抗原递呈、抗感染免疫、抑制细胞凋亡等作用,现已被广泛用作佐剂或抗原载体来增强疫苗的免疫保护力。为了提高猪带绦虫六钩蚴TSOL18重组蛋白的稳定性以及免疫保护力,我们开展了将猪带绦虫HSP70-4(TsHSP70-4)作为免疫佐剂的研究,目的是为猪带绦虫基因工程疫苗免疫佐剂的选择提供新的思路。研究取得了如下结果:1.参考GeneDB中猪带绦虫基因组注释信息,设计特异性引物,RT-PCR获得TsHSP70-4 ORF序列,全长为1953bp。根据毕赤酵母密码子偏好性,对TsHSP70-4基因密码子进行优化,连接载体pPIC9K,在毕赤酵母中进行高效表达,获得大小约为95kD的重组蛋白。Western-blot检测及质谱分析表明,获得的重组蛋白即为TsHSP70-4。2.将TsHSP70-4用柔性linker与猪带绦虫六钩蚴TSOL18的N端相连,在毕赤酵母中诱导表达,获得了大小约为115kD的融合蛋白TsHSP70-4-TSOL18。3.以TsHSP70-4作为佐剂,与TSOL18混合免疫(即TsHSP70-4+TSOL18免疫组)可以延长其在小鼠体内的作用时间;在免疫的第18天,该免疫组小鼠血清中IL-4、IFN-γ的浓度与TSOL18免疫组相比较,存在显著提高(P0.05);在第21天,该免疫组小鼠血清中IL-10的浓度与TSOL18免疫组比较,有明显增强(P0.01);在第21天和第28天,对全血T淋巴细胞亚群测定分析,该免疫组CD3+CD4+的百分率均有显著提高(P0.05)。由此可知,TsHSP70-4与TSOL18混合免疫,可以延长TSOL18在体内的滞留时间,增强机体的免疫应答能力,特别是体液免疫水平。4.用TsHSP70-4-TSOL18融合蛋白免疫小鼠,获得的免疫效果远低于TsHSP70-4+TSOL18免疫组和TSOL18免疫组。综合上述,TsHSP70-4可以作为TSOL18重组蛋白潜在的免疫佐剂。TsHSP70-4-TSOL18融合蛋白免疫效果较差,推测可能与融合的方向和方式有关,具体原因有待进一步研究。
【关键词】:猪带绦虫 猪囊尾蚴病 HSP70-4 真核表达 免疫佐剂
【学位授予单位】:中国农业科学院
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2016
【分类号】:S852.734
【目录】:
  • 摘要5-6
  • abstract6-11
  • 英文缩略表11-12
  • 第一章 引言12-20
  • 1.1 猪带绦虫概述12-14
  • 1.1.1 猪带绦虫及猪囊尾蚴病12
  • 1.1.2 猪囊尾蚴病免疫学诊断的研究进展12-13
  • 1.1.3 猪囊尾蚴病的治疗与预防13-14
  • 1.2 热休克蛋白70概述14-19
  • 1.2.1 热休克蛋白发现及分类14
  • 1.2.2 HSP70家族的结构特征及分类14-15
  • 1.2.3 HSP70的生物学功能15-17
  • 1.2.4 HSP70在寄生虫中的研究进展17-19
  • 1.3 研究目的与意义19-20
  • 第二章 TsHSP70-4 基因克隆及序列分析20-27
  • 2.1 材料与方法20-21
  • 2.1.1 虫株、菌株及试剂20
  • 2.1.2 主要仪器20
  • 2.1.3 引物的设计与合成20
  • 2.1.4 猪带绦虫总RNA的提取20-21
  • 2.1.5 c DNA的合成21
  • 2.1.6 TsHSP70-4 基因的扩增21
  • 2.1.7 TsHSP70-4 生物信息学分析21
  • 2.2 实验结果21-26
  • 2.2.1 总RNA的提取21-22
  • 2.2.2 TsHSP70-4 基因的扩增与测序22-23
  • 2.2.3 TsHSP70-4 生物信息学分析23-26
  • 2.3 讨论26-27
  • 第三章 TsHSP70-4 真核表达27-33
  • 3.1 材料与方法27-29
  • 3.1.1 载体、菌株与试剂27
  • 3.1.2 主要仪器27
  • 3.1.3 重组质粒p PIC9K-TsHSP70-4 的构建27-28
  • 3.1.4 重组质粒p PIC9K-TsHSP70-4 线性化28
  • 3.1.5 酵母感受态细胞的制备28
  • 3.1.6 电击转化与菌落筛选28-29
  • 3.1.7 TsHSP70-4 重组蛋白的诱导表达29
  • 3.1.8 TsHSP70-4 重组蛋白的纯化与鉴定29
  • 3.2 实验结果29-32
  • 3.2.1 重组质粒p PIC9K-TsHSP70-4 线性化29-30
  • 3.2.2 TsHSP70-4 重组蛋白的诱导表达30-31
  • 3.2.3 TsHSP70-4 重组蛋白的纯化31
  • 3.2.4 纯化后的TsHSP70-4 的Western-blot及质谱鉴定31-32
  • 3.3 讨论32-33
  • 第四章 TsHSP704TSOL18真核表达33-39
  • 4.1 材料与方法33-34
  • 4.1.1 载体、菌株与试剂33
  • 4.1.2 主要仪器33
  • 4.1.3 重组质粒p PIC9K-TsHSP704TSOL18的构建33
  • 4.1.4 重组质粒p PIC9K-TsHSP704TSOL18线性化33-34
  • 4.1.5 酵母感受态细胞的制备34
  • 4.1.6 电击转化与菌落筛选34
  • 4.1.7 TsHSP704TSOL18重组蛋白的诱导表达34
  • 4.1.8 TsHSP704TSOL18重组蛋白的纯化与鉴定34
  • 4.2 实验结果34-37
  • 4.2.1 重组质粒p PIC9K-TsHSP704TSOL18线性化34-35
  • 4.2.2 TsHSP704TSOL18重组蛋白的诱导表达35-36
  • 4.2.3 TsHSP704TSOL18重组蛋白的纯化36
  • 4.2.4 TsHSP704TSOL18重组蛋白的Western-blot鉴定36-37
  • 4.3 讨论37-39
  • 第五章 TsHSP70-4 的免疫佐剂效应39-47
  • 5.1 材料与方法39-41
  • 5.1.1 主要试剂39
  • 5.1.2 主要仪器39
  • 5.1.3 实验动物39
  • 5.1.4 实验小鼠分组39-40
  • 5.1.5 实验小鼠免疫与采血40
  • 5.1.6 实验小鼠血清TSOL18抗体的检测40-41
  • 5.1.7 实验小鼠IL-2、IL-4、IL-10、IFN-γ 的检测41
  • 5.1.8 实验小鼠全血T淋巴细胞亚群的测定41
  • 5.2 实验结果41-45
  • 5.2.1 实验小鼠血清TSOL18抗体的检测41-42
  • 5.2.2 实验小鼠IL-2、IL-4、IL-10、IFN-γ 的检测42-44
  • 5.2.3 实验小鼠全血T淋巴细胞亚群的测定44-45
  • 5.3 讨论45-47
  • 第六章 全文结论47-48
  • 参考文献48-53
  • 致谢53-54
  • 作者简历54

【参考文献】

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本文编号:676401

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