当前位置:主页 > 医学论文 > 急救学论文 >

通过抑制ERK上调Nrf2-ARE信号通路促进创伤性脑损伤后神经功能恢复

发布时间:2020-10-30 18:38
   目的:创伤性脑损伤是由锐器或突然的暴力作用于头部造成的一种后天型脑组织器质性损伤。创伤性脑损伤包括首次和二次损伤,首次损伤后便立即伴随着继发性损伤,它是造成中枢神经损伤不易修复的重要因素。核因子E2相关因子2(Nucleus factor E2-related factor,Nrf2)在许多神经退行性病变中具有神经保护作用。前期研究抑制ERK信号通路可以改善神经功能,但对于Nrf2-ARE信号通路与细胞外调节激酶(Extracellular signal-regulated kinases,ERK)信号通路之间的相关性并没有详细的报道。因此,我们以黑质纹状体通路损伤为模型来研究二者之间的相关性。我们推测通过抑制ERK可以活化Nrf2信号通路并抑制氧化应激,从而促进脑损伤后神经功能的恢复。研究方法:随机选取雄性昆明小鼠分为假手术组,黑质纹状体通路损伤组(traumatic brain injury,TBI),TBI+莱菔硫烷(sulforaphane,SFN)给药组,TBI+U0126(ERK抑制剂)给药组。以黑质纹状体通路损伤为模型,损伤后立即进行腹腔注射SFN(5mg/kg),为防止二次损伤立即将U0126(3μg/μL)行损伤原位给药。利用Western blot检测Nrf2在损伤周围组织细胞质细胞核中的表达,以及HO-1,NQO1,p-ERK和GFAP在损伤前后及给药后蛋白表达量;利用免疫荧光组化-检测损伤周围星形胶质细胞标志物GFAP以及Nrf2在星形胶质细胞中的定位表达;利用超氧化物歧化酶试剂盒检测损伤前后及给药后SOD活力值以查看氧化应激水平;通过动物行为学实验如抓力实验,以及神经功能评分检测损伤后给予SFN,U0126,对神经功能恢复的影响。结果:1.我们应用Western blot和免疫荧光组化检测了损伤后1,4,7,和14天后损伤周围星形胶质细胞标志物GFAP的表达,损伤后4天时GFAP达到峰值,4天时损伤周围的星形胶质细胞胞体肥大(hypertrophy),突起缩短变粗。2.我们观测到假手术组中Nrf2表达较低,只存在于星形胶质细胞的胞质中,损伤后Nrf2信号通路激活,核内表达上升,胞质内减少,SFN激动剂治疗后入核增多,胞质内明显有降低趋势。3.U0126给药后核内Nrf2表达略高于损伤组,胞质内表达略低于损伤组,说明U0126给药后对Nrf2入核有促进作用。4.损伤后HO-1,NQO1表达略升高,SFN给药后表达明显增加,U0126给药后HO-1,NQO1表达也高于损伤组。5.损伤后p-ERK表达明显增加,SFN给药后表达减少,U0126给药后明显抑制了p-ERK的表达。6.损伤后SOD表达明显减少,SFN,U0126给药后表达明显上升。7.行为学结果发现,SFN和U0126降低了神经功能评分,并加强了小鼠的抓力。结论:SFN,U0126给药后加强了Nrf2信号通路激活,使Ⅱ相解毒酶HO-1,NQO1,超氧化物歧化酶的表达升高,有效抵抗氧化应激促进了神经功能恢复,且通过抑制ERK减少了反应性胶质细胞增殖活化。因此抑制ERK信号通路能够上调Nrf2表达,加强内源性抗氧化系统促进神经功能恢复。
【学位单位】:中国医科大学
【学位级别】:硕士
【学位年份】:2019
【中图分类】:R651.15
【部分图文】:

后下,损伤后,星形胶质细胞活化,脑损伤后


中国医科大学硕士学位论文3 结果3.1 脑损伤后星形胶质细胞活化首先我们应用 Western blot 和免疫荧光组化检测了损伤后 1,4,7,和 14 天后损伤周围星形胶质细胞标志物GFAP的表达,损伤后4天时GFAP达到峰值(图1),4 天时损伤周围胞体肥大,突起缩短变粗(图 2)。

分布情况,给药,胞质,胞核


图 3 损伤及给药组 Nrf2 在胞质胞核分布情况图 3 为 Western blot 检测 Nrf2 在损伤组和给药组,胞质胞核分布的表达情况; * P ≤ 0.05,*** P ≤ 0.001,与假手术组比较,# P ≤ 0.05, ## P ≤ 0.01,### P ≤ 0.001 表示与损伤组比较;所有结果均用 x±s 表示。

分布情况,星形胶质细胞,给药,胞核


图 3 损伤及给药组 Nrf2 在胞质胞核分布情况图 3 为 Western blot 检测 Nrf2 在损伤组和给药组,胞质胞核分布的表达情况; * P ≤ 0.05,*** P ≤ 0.001,与假手术组比较,# P ≤ 0.05, ## P ≤ 0.01,### P ≤ 0.001 表示与损伤组比较;所有结果均用 x±s 表示。
【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 范久亿;李军;丁士刚;;Wnt信号通路在结直肠侧向发育型肿瘤中的研究进展[J];胃肠病学;2018年11期

2 王雪;张评浒;;Ras/Raf/MEK/ERK信号通路参与自噬调控作用的研究进展[J];中国药科大学学报;2017年01期

3 许莹萍;王菲菲;李大金;王凌;;雌激素-雌激素受体信号通路对趋化因子的调控作用研究进展[J];生殖医学杂志;2017年09期

4 苏依拉其木格;;Hedgehog信号通路在肺癌中的研究进展[J];健康之路;2016年09期

5 滕振平;邢飞跃;;细胞外信号调节激酶1/2信号通路对B淋巴细胞的影响[J];中国药物与临床;2007年01期

6 杜婵;姜保国;;许旺细胞增殖和分化过程中的信号通路[J];中国组织工程研究与临床康复;2007年03期

7 史琳琳;赵锋;高学军;李庆章;;乳蛋白合成信号通路的研究进展[J];中国畜牧兽医;2013年01期

8 舒扬;向敏;;Wnt信号通路在中枢神经系统中的作用及相关机制[J];江苏医药;2018年08期

9 刘晓光;陈佩杰;肖卫华;;Wnt信号通路在骨骼肌损伤修复过程中的作用及机制研究[J];生命的化学;2018年05期

10 刘艳芳;吴志远;;分子信号通路在瘢痕疙瘩中的研究进展[J];海南医学;2017年07期


相关博士学位论文 前10条

1 王宝龙;低剂量铬暴露促进前列腺癌细胞增殖进展的机制探索[D];天津医科大学;2018年

2 胡奕;RACK1调控NF-κB信号通路在幽门螺杆菌感染致癌中的作用及机制[D];南昌大学;2019年

3 何颖;BMSCs恶性转化中基因表达谱和DNA甲基化谱关联分析及NOTCH信号通路的作用[D];南昌大学;2019年

4 陈玲丽;RhoA/ROCK信号通路在氟致小鼠智力损伤中的作用及其机制[D];山西农业大学;2018年

5 刘佳;miR-338-3p通过调控AKT信号通路抑制皮肤炎症及肺癌发展的研究[D];东北林业大学;2018年

6 张辉;Erythropoietin信号通路对成体大鼠脊髓内源性神经干细胞增殖分化作用的实验研究[D];安徽医科大学;2018年

7 吴慧;活性多肽的表达及功能研究[D];国防科学技术大学;2017年

8 韩晶晶;Nrf2信号通路在急性移植物抗宿主病中的作用及机制研究[D];苏州大学;2018年

9 朱建伟;MAPK/纤调蛋白信号通路在氧化应激介导慢性胰腺炎纤维化中的机制研究[D];中国人民解放军海军军医大学;2018年

10 孙海涛;NF-κB P65通过Wnt信号通路调控HSCs活化的分子机制及鳖甲寡肽I-C-F-6的干预作用[D];南方医科大学;2018年


相关硕士学位论文 前10条

1 周婷;高糖诱导SHSY-5Y细胞过表达GIGYF1对IGF1R信号通路的影响[D];重庆医科大学;2019年

2 金莲花;LPS/TLR4信号通路对肝星状细胞活化及增殖的作用机制[D];延边大学;2019年

3 耿鹤;HA-CD44st-TGF-β信号通路对乳腺癌细胞株MCF-7侵袭能力的影响[D];蚌埠医学院;2019年

4 俞倩;Smo介导的Hedgehog信号通路以阶段特异性方式调控脊髓少突胶质细胞的发育[D];杭州师范大学;2019年

5 杨碧娟;新型菲啶类Wnt信号通路激动剂的设计合成和构效关系研究[D];云南大学;2018年

6 崔悦悦;白藜芦醇通过脂联素信号通路调节猪脂肪沉积的机制研究[D];广西大学;2019年

7 胡舒;卵形鲳鲹TLR3信号通路相关基因的克隆与表达分析[D];广西大学;2019年

8 张翔;乙型肝炎病毒相关蛋白介导Hedgehog信号通路的异常激活并促进肝细胞癌细胞的恶性表型[D];南昌大学;2019年

9 银臻;阻断SHH信号通路对MDS细胞增殖抑制与诱导凋亡的实验研究[D];新疆医科大学;2019年

10 尹训强;MiRNA靶向STAT信号通路调控DC分化在URSA中的作用与机制[D];济南大学;2019年



本文编号:2862852

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/jjyx/2862852.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户4c5e2***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com